陳曉鵬,胡永成,方成,張麗娟,張榮信,黃文敬
(1.天津醫(yī)科大學(xué)研究生院,天津 300070;2.天津市天津醫(yī)院骨與軟組織腫瘤科,天津 300211)
血紅素氧化酶1在ADSCs增殖、凋亡和成骨分化的作用
陳曉鵬1,胡永成2,方成1,張麗娟1,張榮信1,黃文敬1
(1.天津醫(yī)科大學(xué)研究生院,天津 300070;2.天津市天津醫(yī)院骨與軟組織腫瘤科,天津 300211)
目的:探討應(yīng)用慢病毒介導(dǎo)血紅素氧化酶1(HO-1)基因轉(zhuǎn)染誘導(dǎo)脂肪來源基質(zhì)干細(xì)胞(ADSCs)后對(duì)細(xì)胞增殖、凋亡和成骨分化的影響。方法:取健康10周齡SD大鼠雙側(cè)腹股溝脂肪,分離、培養(yǎng)ADSCs,觀察第3代細(xì)胞形態(tài)并進(jìn)行成骨和成脂分化研究,流式分析細(xì)胞表面標(biāo)記物,確立分離細(xì)胞為ADSCs。利用基因重組技術(shù)構(gòu)建HO-1基因重組慢病毒載體,并以Polybrene(8 μg/mL)介導(dǎo)慢病毒轉(zhuǎn)染ADSCs,倒置顯微鏡下觀察轉(zhuǎn)染細(xì)胞熒光表達(dá)優(yōu)化轉(zhuǎn)染復(fù)數(shù),Western blot檢測(cè)HO-1蛋白表達(dá)。設(shè)HO-1轉(zhuǎn)染組(A組)、空載體轉(zhuǎn)染組(B組)和未轉(zhuǎn)染組(C組);MTT,流式分析和茜素紅鈣結(jié)節(jié)染色分別檢測(cè)各組增殖、凋亡和成骨分化情況。結(jié)果:分離獲得的ADSCs具有多向分化潛能:CD29(+)、CD44(+)、CD90(+)、CD31(-)、CD45(-);經(jīng)菌液PCR和Western blot鑒定HO-1基因重組慢病毒載體構(gòu)建成功,與B、C組相比,A組具有較高的細(xì)胞活性(P<0.05),無血清培養(yǎng)基中較低的凋亡率(P<0.05),并增加細(xì)胞鈣化基質(zhì)形成的量(P<0.05)。結(jié)論:成功構(gòu)建HO-1基因重組慢病毒表達(dá)載體并轉(zhuǎn)染大鼠ADSCs,HO-1基因轉(zhuǎn)染入ADSCs后表達(dá)HO-1蛋白成功,HO-1轉(zhuǎn)染后可以發(fā)揮對(duì)ADSCs促增殖、抗凋亡和促成骨分化的作用。
脂肪基質(zhì)干細(xì)胞;血紅素氧化酶1;慢病毒載體;成骨分化
骨組織工程為骨缺損修復(fù)提供了一種有效的方法,其中脂肪基質(zhì)干細(xì)胞(adipose-derived stromal cells,ADSCs)因取材方便、易獲得,具有多種定向分化潛能的特點(diǎn)成為骨組織工程良好的種子細(xì)胞[1]。近年來國(guó)內(nèi)外學(xué)者對(duì)ADSCs成骨分化及其促進(jìn)骨缺損修復(fù)等功能進(jìn)行了大量研究。但單純的ADSCs植入體內(nèi)后細(xì)胞大量凋亡,且ADSCs較骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(bone mesenchymal stem cells,BMSCs)有脂肪分化的潛能[2]。血紅素氧化酶-1(heme oxygenase-1,HO-1)是血紅素代謝的限速酶,因其可以通過一種或幾種代謝產(chǎn)物發(fā)揮抗凋亡、抗炎等作用而受到重視[3]。將HO-1基因修飾ADSCs有望克服以上不足,更好地發(fā)揮血管新生和成骨分化的促進(jìn)作用。因此,我們構(gòu)建了攜帶HO-1基因的慢病毒,將其感染ADSCs,長(zhǎng)期傳代,獲得持續(xù)穩(wěn)定表達(dá),并對(duì)其生物學(xué)特性進(jìn)行觀察。
1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物及主要試劑、儀器10周齡清潔雄性SD大鼠8只,體質(zhì)量200~300 g,購(gòu)自中國(guó)人民解放軍軍事科學(xué)研究院。
FBS(HyClone公司,美國(guó));L-DMEM培養(yǎng)基(GIBCO公司,美國(guó));雙抗(青霉素-鏈霉素,GIBCO公司,美國(guó));聚凝胺(polybrene),I型膠原酶,抗壞血酸,地塞米松,β-甘油磷酸鈉,甲基黃嘌呤(IBMX),吲哚美辛(Sigma公司,美國(guó));磷酸鹽緩沖液(PBS),茜素紅(生工,中國(guó))。慢病毒載體pZsGGFP、包裝質(zhì)粒packA、packB、packC,293T細(xì)胞由天津醫(yī)科大學(xué)免疫炎癥實(shí)驗(yàn)室張榮信教授惠贈(zèng);質(zhì)粒pUC57-HO-1由金唯智(蘇州,中國(guó))合成,Plasmid抽提試劑盒(Qiagen公司,德國(guó)),大鼠HO-1抗體(Santa Cruz生物公司,美國(guó)),CD29-PE,CD31-APC,CD44-PE,CD45-FITC,CD90-FITC(BD eBioscience,美國(guó))。Plus-20離心超濾裝置(Millipore公司,美國(guó));倒置熒光顯微鏡(Olympus公司,日本);Accuri C6流式細(xì)胞儀(BD,加拿大)。
1.2 大鼠ADSCs分離、培養(yǎng)及鑒定
1.2.1 大鼠ADSCs分離、培養(yǎng)無菌條件下取脂肪組織置入無菌離心管中,PBS沖洗3遍,剔除血管、筋膜組織后剪碎,0.1%Ⅰ型膠原酶37℃震蕩消化1 h,等體積DMEM/體積分?jǐn)?shù)10%的FBS中和,采用密度梯度離心法分離培養(yǎng)大鼠ADSCs,1 000 r/min,離心5 min,0.22 μm篩網(wǎng)過濾,1 000 r/min,離心5 min,棄上清,DMEM培養(yǎng)基重懸細(xì)胞,將細(xì)胞接種于培養(yǎng)瓶中,用DMEM培養(yǎng)基含10%的FBS和1%雙抗培養(yǎng)。48 h后換液,除去未貼壁的細(xì)胞。細(xì)胞生長(zhǎng)至80%~90%融合狀態(tài)時(shí),0.05%胰蛋白酶-0.02% EDTA消化傳代。取生長(zhǎng)狀態(tài)良好的第3~5代細(xì)胞用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。
1.2.2 大鼠ADSCs鑒定倒置顯微鏡下觀察ADSCs形態(tài)及其生長(zhǎng)變化;在成骨(DMEM,5%FBS,1%雙抗,0.1 μmol/L地塞米松+50 μmol/L抗壞血酸+10 mmol/L β-甘油磷酸鈉)和成脂(DMEM,5% FBS,1%雙抗,10 mg/L胰島素+1 μmol/L地塞米松、100 μmol/L吲哚美辛、500 μmol/L的甲基黃嘌呤)培養(yǎng)基上誘導(dǎo)21 d培養(yǎng)ADSCs,每3 d換液,觀察其多分化潛能;流式細(xì)胞儀分析ADSCs表面CD29、 CD44、CD90、CD31、CD45分子的表達(dá)。
1.3 HO-1慢病毒表達(dá)載體構(gòu)建及HO-1慢病毒獲取
1.3.1 PCR法獲得HO-1基因片段從Genebank中提取大鼠HO-1基因(NM_012580)編碼區(qū)序列,根據(jù)慢病毒表達(dá)載體pZsG酶切位點(diǎn)要求,由金維智公司將HO-1基因合成在質(zhì)粒pUC57-HO-1中。將pUC57-HO-1和pZsG分別進(jìn)行NotⅠ和BamHⅠ雙酶切,1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),目的條帶以膠回收試劑盒回收。
1.3.2 HO-1基因片段與慢病毒載體pZsG重組
切膠回收產(chǎn)物定向連接經(jīng)大腸桿菌轉(zhuǎn)化,對(duì)長(zhǎng)出的克隆進(jìn)行PCR鑒定,共挑選5個(gè)克隆。引物序列:上游引物5′-ATGGAGCGCCCACAGCTCG-3′,下游引物5′-ACTGCCACGGTCGCCAACAG-3′,其中PCR鑒定為陽(yáng)性的克隆,證明HO-1已經(jīng)定向連入pZsG,命名為pZsG-HO-1。
1.3.3 慢病毒載體大量抽提按照Plasmid抽提試劑盒操作手冊(cè)步驟分別抽提慢病毒載體質(zhì)粒:pZsG-GFP、pZsG-HO-1、packA、packB和packC。保證所提質(zhì)粒DNA的吸光度(A260/A200)值為1.8~2.0,-20℃保存。
1.3.4 慢病毒包裝取生長(zhǎng)狀態(tài)良好的293T細(xì)胞,包裝前按細(xì)胞密度1×105/mL接種于含完全培養(yǎng)基的10 cm培養(yǎng)皿中,待細(xì)胞融合率約70%時(shí),開始包裝。包裝前1 h更換無血清培養(yǎng)基,將上述表達(dá)質(zhì)粒與包裝質(zhì)粒按1∶3∶1∶1的質(zhì)量比混合,再添加3倍體積的PEI,混勻后37℃孵育20 min,分別加入滿足包裝要求的293T細(xì)胞中。48 h和72 h后收集病毒上清,-80℃保存?zhèn)溆谩?/p>
1.4 HO-1重組慢病毒載體轉(zhuǎn)染ADSCs取第3代大鼠ADSCs,待細(xì)胞生長(zhǎng)達(dá)70%~80%融合后棄上清,加入10 mL的慢病毒液和8 μg/mL的聚凝胺(polybrene),置于37℃、5%CO2及飽和濕度孵育箱中孵育,6 h后全量換液,更換完全培養(yǎng)基,轉(zhuǎn)染24、48、72 h后根據(jù)空載體表達(dá)綠色熒光的特點(diǎn),采用倒置熒光顯微鏡觀察不同感染復(fù)數(shù)(multiplicity of infection,MOI)10、15、20、30、50、100下慢病毒的感染效率,選擇熒光表達(dá)效率最高、細(xì)胞生長(zhǎng)狀態(tài)最佳的MOI值作為最佳MOI值進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。Western blot驗(yàn)證HO-1重組慢病毒載體轉(zhuǎn)染ADSCs后表達(dá)情況。
1.5 觀測(cè)指標(biāo)
1.5.1 MTT法檢測(cè)轉(zhuǎn)染后ADSCs生長(zhǎng)情況根據(jù)處理方法不同分為3組:A組(HO-1基因重組慢病毒載體轉(zhuǎn)染ADSCs)、B組(pZsG-GFP慢病毒載體轉(zhuǎn)染ADSCs)、C組(未轉(zhuǎn)染ADSCs),每組設(shè)3個(gè)復(fù)孔。取生長(zhǎng)狀態(tài)良好不同組的第3代ADSCs,經(jīng)消化離心重懸細(xì)胞后計(jì)數(shù),按細(xì)胞密度1×103個(gè)/孔接種于96孔板中,于37℃、5%CO2及飽和濕度孵育箱中培養(yǎng),隔天換液1次。分別于轉(zhuǎn)染后1、2、3、4、5、6、7 d進(jìn)行MTT檢測(cè),在酶聯(lián)免疫儀上490 nm下測(cè)定吸光度值(OD)。
隨著我國(guó)生活水平和醫(yī)療水平的提高,老年人的平均壽命不斷延長(zhǎng),相對(duì)的老年人的可勞動(dòng)年齡也不斷延長(zhǎng)。老年人豐富的勞動(dòng)經(jīng)驗(yàn)和較于年輕人更敬業(yè)的勞動(dòng)精神是其具有的最核心的競(jìng)爭(zhēng)力。創(chuàng)造有利于老年人力資源開發(fā)的政策環(huán)境,充分開發(fā)老年人力資源,大力開展老年教育,不斷更新老年人的知識(shí),鼓勵(lì)活到老學(xué)到老,使老年人適應(yīng)新科技的不斷創(chuàng)新,從而為其創(chuàng)造參與社會(huì)勞動(dòng)的有利條件。并且在老齡人工作經(jīng)驗(yàn)和技能指導(dǎo)優(yōu)勢(shì)的工作領(lǐng)域上,適當(dāng)延長(zhǎng)老齡人的退休年齡增加勞動(dòng)力的供給,充分發(fā)揮利用老年勞動(dòng)力資源,彌補(bǔ)我國(guó)勞動(dòng)力數(shù)量的減少所帶來的劣勢(shì)。
1.5.2 流式細(xì)胞儀分析HO-1高表達(dá)對(duì)ADSCs抗凋亡的影響實(shí)驗(yàn)分組同1.5.1。按細(xì)胞密度1×105個(gè)/孔接種于6孔板中,當(dāng)細(xì)胞貼壁后更換無血清培養(yǎng)基,培養(yǎng)3 d后收集各組細(xì)胞。根據(jù)凋亡試劑盒(三箭,天津)要求進(jìn)行染色,C6流式分析儀分析各組細(xì)胞凋亡情況。
1.5.3 轉(zhuǎn)染后ADSCs成骨分化觀察實(shí)驗(yàn)分組同1.5.1。茜素紅染色:將3組細(xì)胞按細(xì)胞密度5×104個(gè)/孔接種于6孔板中,成骨培養(yǎng)基中培養(yǎng)3周后,PBS沖洗3次,每次5 min,無水甲醇固定10 min后,雙蒸水沖洗3次,每次5 min,加入pH 7.4的1%茜素紅染液,于37℃恒溫箱中孵育40 min,雙蒸水沖洗3次,倒置相差顯微鏡下觀察鈣結(jié)節(jié)形成情況。
2.1 大鼠ADSCs形態(tài)學(xué)觀察及鑒定原代細(xì)胞培養(yǎng)48 h后,倒置顯微鏡下可見細(xì)胞呈長(zhǎng)梭形貼壁生長(zhǎng);成骨誘導(dǎo)3周后茜素紅染色可見多數(shù)細(xì)胞胞質(zhì)中有紅色顆?;虼笃t色沉淀。成脂誘導(dǎo)3周后油紅O染色可見細(xì)胞內(nèi)有紅色脂滴。流式細(xì)胞儀檢測(cè)示細(xì)胞表面標(biāo)志物CD29(+)、CD44(+)、CD90(+)、CD31(-)、CD45(-)(圖1)。
2.2 含HO-1的慢病毒表達(dá)載體構(gòu)建HO-1基因片段經(jīng)限制性內(nèi)切酶NotⅠ和BamHⅠ酶切后可獲得長(zhǎng)度為869 bp的片段產(chǎn)物(圖2A)。隨機(jī)挑選5個(gè)單克隆菌落行PCR鑒定,其中2、3、4為陽(yáng)性,片段大小約為900 bp(圖2B)。與Genbank中的參考序列一致,提示成功構(gòu)建HO-1基因慢病毒載體。
圖1 ADSCs形態(tài)學(xué)、多向分化潛能及表面標(biāo)記物鑒定Fig 1 Identification of ADSCs from morphology,multi-differentiation and surface marker
圖2 慢病毒表達(dá)載體pZsG-HO-1的構(gòu)建Fig2 Construction of lentiviral pZsG-HO-1 plasmid
2.3 重組慢病毒的感染效率及目的基因的表達(dá)
慢病毒感染ADSCs 96 h后,熒光倒置顯微鏡下觀察綠色熒光,結(jié)果顯示:當(dāng)MOI值為10、15時(shí)可見不足50%熒光表達(dá);當(dāng)MOI值為20時(shí),可見大部分(90%)ADSCs表達(dá)綠色熒光。當(dāng)MOI值為30時(shí)并不能有效增加熒光表達(dá),且隨著MOI值的增加,細(xì)胞生長(zhǎng)狀態(tài)較差,出現(xiàn)漂浮細(xì)胞,提示對(duì)大鼠ADSCs而言,MOI為20時(shí)為慢病毒的最佳感染復(fù)數(shù),慢病毒感染ADSCs細(xì)胞達(dá)到90%以上的感染效率,符合基因治療對(duì)載體的要求(圖3)。Western blot結(jié)果表明,實(shí)驗(yàn)組HO-1蛋白水平顯著高于空載體組(P<0.05),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(圖4)。
圖3 不同梯度慢病毒MOI轉(zhuǎn)染ADSCs后熒光表達(dá)Fig 3The fluorescence of ADSCs transfected with the gradient MOI of lentivirus
圖4 Western blot檢測(cè)慢病毒介導(dǎo)HO-1轉(zhuǎn)染ADSCsFig 4HO-1 expression in ADSCs mediated by lentivirus and evidenced by Western blot
2.4 MTT法檢測(cè)轉(zhuǎn)染后ADSCs活性MTT法顯示:轉(zhuǎn)染后2 d開始,A組細(xì)胞生長(zhǎng)良好,OD值比較有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);而空載體組和未轉(zhuǎn)染組細(xì)胞生長(zhǎng)無明顯變化,OD比較差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。隨著培養(yǎng)時(shí)間延長(zhǎng),各組細(xì)胞生長(zhǎng)呈上升趨勢(shì),其中A 組OD值顯著優(yōu)于B組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)(圖5)。
2.5 流式細(xì)胞技術(shù)分析轉(zhuǎn)染后ADSCs凋亡流式細(xì)胞儀檢測(cè)結(jié)果(表1)表明,A組細(xì)胞凋亡率較B組和C組明顯減少,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);而B組與C組之間比較差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,表明HO-1重組基因高表達(dá)可以降低ADSCs在無血清條件下的凋亡率,對(duì)細(xì)胞發(fā)揮保護(hù)效應(yīng)。
圖5 MTT檢測(cè)不同轉(zhuǎn)染組ADSCs的細(xì)胞活性Fig 5ADSCs viability of ADSCs in different transfection groups measured by MTT
表1 不同轉(zhuǎn)染組在無血清培養(yǎng)基下的凋亡率(%)Tab 1 The apoptosis rate of ADSCs in different groups in the medium without serum(%)
2.6 茜素紅鈣基質(zhì)染色轉(zhuǎn)染后3周,A組可見較多細(xì)胞出現(xiàn)大量片狀融合褐色礦化結(jié)節(jié)(圖6);Image J軟件分析顯示,A組礦化結(jié)節(jié)形成區(qū)域較B組和C組明顯增多,差別有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);而B組及C組比較,差異均無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。
圖6 茜素紅染色分析不同轉(zhuǎn)染組鈣基質(zhì)形成情況Fig 6Calcium deposition of different groups stained by alizarin red
ADSCs具有多向分化潛能,為組織工程骨構(gòu)建增加了細(xì)胞成分,是目前骨組織工程的研究熱點(diǎn),本研究中成功分離提取了ADSCs[1]。骨缺損局部微環(huán)境常面臨低氧、氧化應(yīng)激的損傷,不利于細(xì)胞存活,使得植入體內(nèi)的細(xì)胞早期凋亡率增加,1~2周內(nèi)細(xì)胞在支架上逐漸消失,4周后全部消失[4]。ADSCs聯(lián)合支架植入體內(nèi)達(dá)不到骨修復(fù)的效果[5]。同時(shí)植入體內(nèi)的種子細(xì)胞缺乏有效的刺激使其達(dá)到骨修復(fù)的目的。近年來,在心血管領(lǐng)域廣泛應(yīng)用的HO-1通過代謝血紅素產(chǎn)生CO、膽綠素、二價(jià)鐵離子,可以發(fā)揮抗炎、抗凋亡等細(xì)胞保護(hù)作用,將其引入骨組織工程可能利于骨修復(fù)[6]。
與蛋白為基礎(chǔ)的治療相比,攜帶基因成本低、效率高,1996年第一次嘗試基因治療應(yīng)用于骨組織工程以來,基因治療在骨組織工程中得到了廣泛地研究[7]。為了更好地將目的基因與靶細(xì)胞整合,達(dá)到基因治療的目的,基因載體的選擇尤為關(guān)鍵。慢病毒載體能夠攜帶目的基因與靶細(xì)胞基因組整合,使得目的基因能夠長(zhǎng)期穩(wěn)定表達(dá),且具有不易誘導(dǎo)宿主免疫反應(yīng)等優(yōu)點(diǎn)[8]。更重要的是,慢病毒載體可轉(zhuǎn)染分裂細(xì)胞及非分裂細(xì)胞,攜帶基因片段容量較大[9]。因此,我們研究中選擇慢病毒表達(dá)載體作為目的基因的攜帶工具。
本實(shí)驗(yàn)將通過NotⅠ和BamHⅠ酶切獲得的大鼠HO-1基因片段與經(jīng)相同酶切的慢病毒表達(dá)載體pZsG連接后轉(zhuǎn)化入E.coli DH5α感受態(tài)細(xì)胞,并通過酶切電泳分析儀和設(shè)計(jì)特異性引物進(jìn)行菌液PCR對(duì)重組DNA進(jìn)行鑒定,結(jié)果與GenBank中序列大體一致,初步驗(yàn)證構(gòu)建的重組質(zhì)粒目的基因片段為大鼠HO-1基因。此外,Western blot證明HO-1基因已經(jīng)成功轉(zhuǎn)染ADSCs并出現(xiàn)蛋白水平表達(dá),表明慢病毒介導(dǎo)HO-1成功導(dǎo)入ADSCs中,建立HO-1/ADSCs模型。
骨生成過程涉及細(xì)胞增殖、細(xì)胞趨化、基質(zhì)合成和成骨分化[10]。細(xì)胞活性是細(xì)胞發(fā)揮功能的關(guān)鍵,該實(shí)驗(yàn)證實(shí)轉(zhuǎn)染HO-1基因后可維持較高的細(xì)胞活性,與HO-1在內(nèi)皮細(xì)胞發(fā)揮的作用一致[3],而血管平滑肌細(xì)胞中高水平的HO-1可以抑制細(xì)胞增殖[11],HO-1這種細(xì)胞選擇性更有利于血管新生,但其作用機(jī)制仍不清楚,需要進(jìn)一步研究。另外,HO-1在內(nèi)皮細(xì)胞中還具有抗凋亡的特性,將其作為生長(zhǎng)因子引入骨組織工程的種子細(xì)胞可能更有利。在四肢骨缺損常面臨缺血微環(huán)境,造成植入體內(nèi)的ADSCs處于營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)不足、低氧等應(yīng)激狀態(tài)[12],該實(shí)驗(yàn)通過體外采用無血清條件來模擬體內(nèi)環(huán)境,證實(shí)HO-1轉(zhuǎn)染組具有相對(duì)較低的細(xì)胞凋亡率,與之前很多關(guān)于保護(hù)心肌免受缺血再灌注損傷的研究一致[13]。良好的細(xì)胞活性和無血清狀態(tài)下的抗凋亡效應(yīng),二者相輔相成共同保證參與骨生成的細(xì)胞數(shù)量。同時(shí),該研究中還證實(shí)轉(zhuǎn)染HO-1組可以促進(jìn)礦化基質(zhì)的合成,提示HO-1具有直接的促成骨效應(yīng)[3,14]。有趣的是,Zwerina等[15]研究發(fā)現(xiàn)HO-1可以調(diào)節(jié)破骨細(xì)胞生成和骨吸收,提示HO-1也可以參與骨重建過程,可能在骨修復(fù)的不同階段發(fā)揮不同的效應(yīng)。
綜上,HO-1在ADSCs可以發(fā)揮促增殖、抗凋亡的特性,同時(shí),在適當(dāng)?shù)恼T導(dǎo)環(huán)境下可以促進(jìn)成骨分化,慢病毒介導(dǎo)HO-1轉(zhuǎn)染ADSCs有望作為種子細(xì)胞應(yīng)用于骨組織工程。
[1]Zuk P.Adipose-derived stem cells in tissue regeneration:a review [J].ISRN Stem Cells,2013,DOI:10.1155/2013/713959
[2]Lotfy A,Salama M,Zahran F,et al.Characterization of mesenchymal stem cells derived from rat bone marrow and adipose tissue:a comparative study[J].Int J Stem Cells,2014,7(2):135
[3]Kim Y M,Pae H O,Park J E,et al.Heme oxygenase in the regulation of vascular biology:from molecular mechanisms to therapeutic opportunities[J].Antioxid Redox Signal,2011,14(1):137
[4]Gamblin A L,Brennan M A,Renaud A,et al.Bone tissue formation with human mesenchymal stem cells and biphasic Calcium phosphate ceramics:the local implication of osteoclasts and macrophages[J].Biomaterials,2014,35(36):9660
[5]Shi J J,Zhang X,Zhu J X,et al.Nanoparticle delivery of the bone morphogenetic protein 4 gene to adipose-derived stem cells promotes articular cartilage repair in vitro and in vivo[J]. Arthroscopy,2013,29(12):2001
[6]陳曉鵬,胡永成,方成,等.血紅素氧化酶1在骨組織工程中的應(yīng)用分析研究進(jìn)展[J].中國(guó)修復(fù)重建外科雜志,2013,27(10):1256
[7]Kimelman Bleich N,Kallai I,Lieberman J R,et al.Gene therapy approaches to regenerating bone[J].Adv Drug Deliv Rev,2012,64 (12):1320
[8]Varma N,Janic B,Ali M,et al.Lentiviral based gene transduction and promoter studies in human hematopoietic stem cells(hHSCs)[J]. J Stem Cells Regen Med,2011,7(1):41
[9]Ngai S C,Rosli R,Nordin N,et al.Lentivirus vector driven by polybiquitin C promoter without woodchuck posttranscriptional regulatory element and central polypurine tract generates low level and short-lived reporter gene expression[J].Gene,2012,498(2): 231
[10]Gurkan U A,Gargac J,Akkus O.The sequential production profiles of growth factors and their relations to bone volume in ossifying bone marrow explants[J].Tissue Eng Part A,2010,16(7):2295
[11]Li Volti G,Wang J S,Traganos F,et al.Differential effect of heme oxygenase-1inendothelialandsmoothmusclecellcycle progression[J].Biochem Biophys Res Commun,2002,296(5):1077
[12]Wagers A J.The stem cell niche in regenerative medicine[J].Cell Stem Cell,2012,10(4):362
[13]Yang J J,Yang X,Liu Z Q,et al.Transplantation of adipose tissuederived stem cells overexpressing heme oxygenase-1 improves functions and remodeling of infarcted myocardium in rabbits[J]. Tohoku J Exp Med,2012,226(3):231
[14]Vanella L,Kim D H,Asprinio D,et al.HO-1 expression increases mesenchymal stem cell-derived osteoblasts but decreases adipocyte lineage[J].Bone,2010,46(1):236
[15]Zwerina J,Tzima S,Hayer S,et al.Heme oxygenase 1(HO-1)regulates osteoclastogenesis and bone resorption[J].FASEB J,2005,19(14):2011
(2015-03-03收稿)
Effect of proliferation,apoptosis and osteogenic differentiation of ADSCs transduced with heme oxygenase-1
CHEN Xiao-peng1,HU Yong-cheng2,F(xiàn)ANG Cheng1,ZHANG Li-juan1,ZHANG Rong-xin1,HUANG Wen-jing1
(1.Graduate School,Tianjin Medical University,Tianjin 300070,China;2.Department of Bone and Soft Tissue Tumors,Tianjin Hospital,Tianjin 300211,China)
Objective:To investigate the proliferation,apoptosis and osteogenic differentiation effect of heme oxygenase-1(HO-1)overexpression mediated by lentivirus on adipose-derived stromal cells(ADSCs).Methods:Fat tissue was harvested from inguinal area of 10-week-old SD rats,after which ADSCs were isolated and cultured.The morphology of third passages were observed,the multidifferentiation effect and surface markers were investigated to identify ADSCs.The lentivirus vector containing HO-1 gene was constructed through genetic recombination.ADSCs were transfected by lenvirus with polybrene(8 μg/mL).The multiplicity of infection was optimized and HO-1 expression in ADSCs was tested by Western blot.Cells were divided into three groups:ADSCs transfected with Lenti-HO-1 (group A),ADSCs transfected with empty vector(group B)and ADSCs(C group).The proliferation,apoptosis and osteogenic differentiation effect were investigated by MTT assay,flow cytometry and alizarin red staining.Results:ADSCs had a multi-differentiation character,CD29(+),CD44(+),CD90(+),CD31(-),CD45(-).The lentivirus containing HO-1 was constructed successfully evidenced by bacteria PCR and Western blot.Compared with group B and C,cells of group A had a better viability(P<0.05),exhibited anti-apoptotic effect(P<0.05)and more osteogenic differentiation(P<0.05).Conclusion:The lenvirus vector containing HO-1 gene is successfully constructed,and HO-1 could express in ADSCs transfected with Lenti-HO-1.HO-1 expression could enhance pro-viability and anti-apoptotic effect,and it could stimulate osteogenic differentiation of ADSCs.
adipose-derived stromal cells;heme oxygenase-1;lentivirus;osteogenic differentiation
Q81
A
1006-8147(2015)05-0379-06
天津市自然科學(xué)基金資助項(xiàng)目(12JCYBJC16400),天津市衛(wèi)生局科技基金資助項(xiàng)目(2011KY24)
陳曉鵬(1987-),男,碩士在讀,研究方向:骨損傷修復(fù);通信作者:胡永成,E-mail:yongcheng.hu@yahoo.com。