牛旭龍 馮萬軍 馬金虎 邢國芳

（山西農(nóng)業(yè)大學(xué)農(nóng)學(xué)院，太谷 030801）

植物長鏈非編碼RNA功能研究進展

牛旭龍 馮萬軍 馬金虎 邢國芳

（山西農(nóng)業(yè)大學(xué)農(nóng)學(xué)院，太谷 030801）

長鏈非編碼RNA（long non-coding RNA，lncRNA）是新近發(fā)現(xiàn)的基因表達調(diào)控因子，其廣泛參與植物生長發(fā)育過程的調(diào)節(jié)，并可對環(huán)境脅迫作出響應(yīng)。就lncRNA的產(chǎn)生與分類方法、植物中已報道的lncRNA及其對植物不同器官發(fā)育過程的影響、lncRNA與小RNA的關(guān)系、有關(guān)lncRNA的研究方法及目前研究中面臨的問題進行了介紹。

植物lncRNA；生物學(xué)功能；研究方法；miRNA

經(jīng)典的中心法則中認(rèn)為基因一般的表達過程為經(jīng)DNA轉(zhuǎn)錄生成RNA，再翻譯為蛋白質(zhì)，最終實現(xiàn)生物學(xué)功能。其中，RNA分子被認(rèn)為是在這一過程中攜帶信息的唯一信使。但是，自克里克提出該理論以來，中心法則已經(jīng)過了極大發(fā)展，RNA分子的角色也有了很大變化，研究證實在轉(zhuǎn)錄過程中它不僅是一個中間媒介，而且也是具有調(diào)節(jié)基因表達功能的分子。海量的基因組序列數(shù)據(jù)證實：DNA上編碼蛋白質(zhì)的區(qū)域（也就是通常說的基因）只占人類和其他高等動植物基因組的極小部分，在人體中僅有不到3%的序列編碼蛋白質(zhì)，基因組的絕大部分都不編碼蛋白質(zhì)和多肽［1］。此外，即使在具有較小基因組的模式植物擬南芥中，具有編碼蛋白質(zhì)功能的基因組序列也僅占整個基因組的50%以下［2］。在過去幾十年的現(xiàn)代生物學(xué)研究中，人們的思路維持在一個“基因-mRNA-蛋白質(zhì)-功能”的定式，從而有意無意地忽視了對基因組中非編碼RNA的研究。

實際上，真核生物中存在多種非編碼RNA，如轉(zhuǎn)運RNA（tRNAs）、核糖體RNA（rRNAs）、小核RNA（snRNAs）、 小RNA（siRNAs和microRNAs）及長鏈非編碼RNA（long non-coding RNA，lncRNAs）［3］。其中，lncRNA的長度一般在200-100 000 nt之間，占所有非編碼RNA的80%以上［4］。目前，有關(guān)小RNA的研究報道較多，部分小RNA在轉(zhuǎn)錄和轉(zhuǎn)錄后的調(diào)控功能已基本清楚，然而有關(guān)lncRNA功能的研究仍較少。另外在技術(shù)上，由于lncRNA的構(gòu)成單元是核苷酸，某些RNA的改變，不足以改變它的主要功能，因此使得lncRNA很難被傳統(tǒng)的遺傳學(xué)方法所發(fā)現(xiàn)。近年來，隨著基因組測序和基因芯片技術(shù)的發(fā)展，更多新的lncRNA的發(fā)現(xiàn)及其調(diào)控功能的研究已經(jīng)成為目前生命科學(xué)領(lǐng)域的研究熱點之一。因此，本文將對這一領(lǐng)域的最新研究進展作一綜述，旨在為后人的研究提供思路與方法。

1 lncRNA的產(chǎn)生及分類

類似于其他大多數(shù)RNA，lncRNA 也由RNA 聚合酶II 轉(zhuǎn)錄而來。然而，最新發(fā)現(xiàn)了一些lncRNA卻由RNA 聚合酶 III轉(zhuǎn)錄，這與tRNA 和 5S RNA轉(zhuǎn)錄過程相似［5］，另外還有一些lncRNA是經(jīng)RNA 聚合酶V轉(zhuǎn)錄產(chǎn)生［6］。大量的動物基因組測序結(jié)果顯示，lncRNA具有典型的RNA特征，如5'端帽子結(jié)構(gòu)和多聚腺苷酸尾巴等。大多數(shù)lncRNA分布在細(xì)胞核內(nèi)，也有少數(shù)位于細(xì)胞質(zhì)組分里［7］。

lncRNA具有類型多、作用模式多和數(shù)量多的“三多”特點。因此，有關(guān)lncRNA的分類方法也有多種。根據(jù)其在基因組轉(zhuǎn)錄的位置lncRNA可分為3類：天然反義轉(zhuǎn)錄（NATs）、基因間lncRNA（lincRNA）和內(nèi)含子lncRNA［8］（圖1）。天然反義轉(zhuǎn)錄（NATs）是一組編碼蛋白質(zhì)或非編碼蛋白質(zhì)的RNAs與其他（有義）轉(zhuǎn)錄物具有互補序列可以調(diào)節(jié)有義鏈的表達［9］。NATs最早在病毒和原核生物中發(fā)現(xiàn)。根據(jù)來源NATs可以分為兩類：順式NATs（cis-NATs）和反式NATs（trans-NATs）［10，11］。cis-NATs由基因組相同位點的反義鏈轉(zhuǎn)錄產(chǎn)生，互補區(qū)在兩個基因的重疊部分，重疊長且完全互補，通常以“一對一”的方式調(diào)節(jié)有義鏈的表達［12］。而 trans-NATs則是在不同位點轉(zhuǎn)錄產(chǎn)生的正義和反義轉(zhuǎn)錄本，可與多個轉(zhuǎn)錄本部分互補，如部分trans-NATs后期加工可形成 microRNA或siRNA［13］?，F(xiàn)在已有多種方法用于NATs的鑒定，如基因表達的連續(xù)分析、cDNA序列分析、Northern雜交、鏈特異性RT-PCR及電子雜交和基因芯片等，并對多種生物的NATs進行了較為詳細(xì)的研究。NATs在基因組中普遍存在，在植物中占7%-9%，動物中除了線蟲較少，在其他動物中可達到5%-30%［14］?；蜷glncRNA（lincRNA）廣泛參與哺乳動物細(xì)胞免疫監(jiān)視、周期調(diào)控、胚胎干細(xì)胞多能性分化等多種生物學(xué)過程［15］。利用染色質(zhì)分離技術(shù)（chromatin isolation by RNA purification，CHIRP）在全基因組內(nèi)發(fā)現(xiàn)眾多的lincRNA結(jié)合于特定的序列上，并且證實lincRNA在不同物種間具有高度的保守性，為進一步研究奠定了基礎(chǔ)［16］。內(nèi)含子lncRNA與表觀遺傳有密切聯(lián)系，一個典型的內(nèi)含子lncRNA- ANRASSF1通過招募PRC2到RASSF1A啟動子上，降低RASSF1A的表達并增加細(xì)胞增殖，為描述其他內(nèi)含子lncRNAs作用的位置特異性與表觀遺傳調(diào)節(jié)提供了依據(jù)［17］。

圖1 LncRNA三種類型

如根據(jù)其功能差異將其分成兩類：一類影響細(xì)胞發(fā)育進程，這類lncRNA通過反式作用、形成干擾RNA或直接與基因組DNA或蛋白互作調(diào)控細(xì)胞信號轉(zhuǎn)導(dǎo)或蛋白/轉(zhuǎn)錄水平；第二類是通過調(diào)控轉(zhuǎn)錄、剪切或相鄰基因的表達起作用［18］。而參照其與蛋白質(zhì)編碼基因的位置關(guān)系，可將它們分為正義lncRNA、反義lncRNA、雙向lncRNA、基因內(nèi)lncRNA和基因間lncRNA等5類［19］。

2 不同植物中篩選到的lncRNA

動物中的lncRNA研究主要集中在人、大鼠和線蟲上，利用lncRNA沉默與定位分析（combined knockdown and localization analysis of noncoding RNAs，c-KLAN）、RNA免疫沉淀法（RNA-immunoprecipatation，RIP）、CHART（capture hybridization of RNA target）和ChRIP（chromatin RNA immunoprecipatation）等可對lncRNA進行功能缺失和細(xì)胞定位，通過研究lncRNA與蛋白質(zhì)、DNA和RNA相互作用，探討其功能與作用機制。

與動物相比，對于植物中l(wèi)ncRNA的研究才剛剛開始?，F(xiàn)在仍主要依賴全基因組 cDNA文庫、微陣列和RNA測序等高通量的技術(shù)對lncRNA進行全基因組范圍的篩選。迄今為止，僅在少數(shù)幾種植物中鑒定出lncRNA，涉及擬南芥、玉米、水稻和大豆等［20，21］。目前在植物中篩選到超過9 000個lncRNAs，占總lncRNA的1%，其中部分lncRNA的生物學(xué)功能已經(jīng)相對清楚，如Liu等［22］采用tilling array技術(shù)，在擬南芥中發(fā)現(xiàn)了6 480個基因間轉(zhuǎn)錄本，其中2 708個lncRNAs可通過實驗被檢測到，一些lncRNA基因表現(xiàn)出較強的器官表達特異性，而其他的則與生物/非生物脅迫響應(yīng)相關(guān)。與此同時，Zhang等［23］利用40個RNA-Seq數(shù)據(jù)集對水稻全基因組進行分析后，最終篩選到2 063個lncRNAs，其中大部分在水稻生殖過程中表現(xiàn)出特異性，進一步的功能分析顯示，一些lncRNA可造成生殖缺陷。除擬南芥和水稻外，Zhang還對玉米自交系B73和Mo17進行正反交實驗，分析了胚乳中所有等位基因表達情況，最終找到38個在胚乳中表達的lncRNA與基因印記有關(guān)。其中，有25個來源于母本，而其余13個來自父本。另外，Boerner等［24］鑒別出了玉米全長cDNA序列中包含的潛在lncRNA，結(jié)果顯示，玉米基因組的基因和基因間位點序列中廣泛存在非編碼RNA的模板區(qū)域，同時推測它們可能通過多種RNA介導(dǎo)機制來調(diào)節(jié)其他基因的表達。綜上所述，植物中存在有大量lncRNA，這可能與植物在生長發(fā)育和應(yīng)激反應(yīng)過程中存在復(fù)雜的分子調(diào)控網(wǎng)絡(luò)有關(guān)。

3 植物中l(wèi)ncRNA的功能

3.1 lncRNA影響植物生長發(fā)育

在植物中，lncRNA廣泛存在并參與生長發(fā)育進程的調(diào)節(jié)。研究表明，lncRNA 對植物發(fā)育的影響已滲透到根系、花器官建成及花粉發(fā)育等各個方面。研究表明很多l(xiāng)ncRNA在生物體發(fā)育的特定階段產(chǎn)生，具有組織或細(xì)胞特異性［25］，在轉(zhuǎn)錄水平、轉(zhuǎn)錄后水平及表觀遺傳等方面調(diào)控基因的表達。

春化作用是環(huán)境控制的表觀遺傳學(xué)開關(guān)，研究證實，冬季的低溫可以沉默開花阻遏基因FLC（FLOWERING LOCUS C）進而使植物在春季開花。原因在于長時間低溫處理可誘導(dǎo)春化不敏感基因（VIN3）的表達，進而形成PRC2復(fù)合物，使開花阻遏基因H3K27me3處組蛋白大量被修飾，從而降低FLC基因表達水平。Swiezewski等［26］分析了擬南芥單核苷酸序列多態(tài)性，最終在基因組FLC基因所在的兩條鏈50 kb的相鄰區(qū)域找到兩個lncRNA并分別將其命名為COLDAIR和COOLAIR。這兩個lncRNA均可與PRC2蛋白復(fù)合體結(jié)合，從而造成FLC染色質(zhì)組蛋白甲基化， 最終促進植物開花。這種低溫春化過程發(fā)生在植株營養(yǎng)生長階段， 而開花結(jié)實過程在其后， 因此春化效應(yīng)通過細(xì)胞有絲分裂傳遞， 并不傳遞給子代。

Ding等［27］發(fā)現(xiàn)水稻光敏不育系（PGMS）受一個長為1 236個堿基的lncRNA調(diào)節(jié)，并稱之為LDMAR（long-day-specific male-fertility-associated RNA ），長日照條件下，足夠的LDMAR 轉(zhuǎn)錄量是維持正常花粉發(fā)育所必需的，但由于一個單堿基突變造成LDMAR 二級結(jié)構(gòu)改變，導(dǎo)致LDMAR 在長日照下轉(zhuǎn)錄量降低，造成正處于發(fā)育的花藥提前程序化死亡，出現(xiàn)不育性狀。另外有研究表明，光溫敏核不育系在P/TMS12-1位點編碼一個獨特的非編碼RNA，進而加工成一個21 nt的小RNA——osa-smR5864w，從而導(dǎo)致粳稻農(nóng)墾58S（NK58S）和秈稻培矮64S雄性不育性狀的出現(xiàn)［28］。對比兩個研究結(jié)果發(fā)現(xiàn)，在雄性不育系的12號染色體22258571位點存在C-G堿基顛換，這可能與自發(fā)突變引起的單核苷酸多態(tài)性（SNP）改變了LDMAR的二級結(jié)構(gòu)，最終造成雄性不育性狀的出現(xiàn)。另外，在玉米中也發(fā)現(xiàn)了一些參與生長發(fā)育的lncRNA。如Dai等和Ma等［29，30］從玉米成熟花粉cDNA文庫中克隆到Zm401，該基因在花粉發(fā)育過程中特異表達，參與花藥的發(fā)育進程。前期我們發(fā)現(xiàn)一個在玉米雜交種與親本間差異表達的lncRNA-ZmUHR，其在根尖、幼穗等部位集中表達，并且表現(xiàn)為雜種上調(diào)，在47個與ZmUHR基因序列相一致的siRNAs中，有41個在雜種中特異表達。認(rèn)為一些siRNAs在雜種中的差異表達可能是由于其前提轉(zhuǎn)錄水平的改變引起的［31］。

3.2 lncRNA在植物對環(huán)境脅迫響應(yīng)中發(fā)揮作用

研究表明，許多l(xiāng)ncRNAs對不同的逆境也有響應(yīng)，包括一些生物和非生物脅迫［26，32-34］。如對擬南芥研究發(fā)現(xiàn)，經(jīng)過2 h或10 h干旱、低溫、高鹽或脫落酸處理后，有1 832個lncRNAs表達水平發(fā)生明顯變化。同時研究還發(fā)現(xiàn)，能提高植物抗病能力的延伸因子elf18基因（EF-Tu）能夠促進一些lincRNAs（intergenic lncRNAs）的表達［22］。與擬南芥的研究結(jié)果相似，在小麥中有125個lncRNAs對白粉病和高溫脅迫有響應(yīng)［31］。上述研究結(jié)果表明，植物lncRNA可能通過多種途徑來承受環(huán)境壓力，進而使植物更好地應(yīng)對生物和非生物脅迫，這為人們進一步了解它們的生物學(xué)功能積累了豐富的資料。

除了大規(guī)模鑒定脅迫響應(yīng)lncRNAs外，其中幾個lncRNAs的生物學(xué)功能及作用機理也相對清楚。如COLDAIR和COOLAIR這兩個與生殖發(fā)育過程有關(guān)的lncRNAs，它們響應(yīng)寒冷天氣能誘導(dǎo)擬南芥開花［26，34］。此外，IPS1和AT4受磷饑餓誘導(dǎo)表達，通過阻礙miR399對其靶基因磷酸酯酶轉(zhuǎn)錄調(diào)控因子PHO2的抑制作用實現(xiàn)功能［35］。另有一個lncRNA——Npc536在擬南芥根和葉中受磷饑餓和鹽脅迫后誘導(dǎo)上調(diào)表達，Npc536超表達后可以促進根系生長，從而使擬南芥適應(yīng)磷饑餓和鹽脅迫環(huán)境［36］。PHO1在植物體內(nèi)起平衡體內(nèi)磷酸鹽的重要作用。研究發(fā)現(xiàn)在水稻基因組中含有3個PHO1的同源基因，與擬南芥中僅有的兩個參與磷從根部向地上部運轉(zhuǎn)的基因AtPHO1和AtPHO1；H1不同，水稻的3個PHO1能產(chǎn)生天然順式反義轉(zhuǎn)錄本。在磷酸鹽缺失的情況下，水稻PHO1；2表達量增加，PHO1；2蛋白濃度也隨之增加，然而PHO1；2的mRNA豐度卻沒有變化。多聚核糖體分析顯示，PHO1；2和反義NAT有激活核糖體轉(zhuǎn)錄的功能，揭示了lncRNA如何不依賴提高mRNA 表達量影響蛋白質(zhì)水平［37］。

還需要注意的是，類病毒是一類使植物發(fā)病的lncRNAs，由一個246-400個核苷酸單鏈環(huán)狀分子組成。由于類病毒進入宿主細(xì)胞后需要改變了lncRNA調(diào)控的區(qū)域化，了解類病毒條區(qū)域化的機制可能為深入了解細(xì)胞器如何運輸外源和內(nèi)源lncRNA提供思路［38］。

3.3 植物中l(wèi)ncRNA與小RNA的關(guān)系

作為一種新型的起調(diào)控作用的RNA，lncRNA可以以長鏈的形式直接在RNA水平上發(fā)揮功能，也可以形成短的microRNA（miRNA）和 small interfering RNA（siRNA）這兩種主要的小分子RNA，影響生物體的各項生命活動［13］。長久以來，對于植物中l(wèi)ncRNA的功能研究主要集中在模式植物擬南芥上。lncRNA基因TAS3的轉(zhuǎn)基因的結(jié)果表明，超表達TAS3使得擬南芥?zhèn)雀扉L，轉(zhuǎn)基因植株體內(nèi)TAS3切割形成的miR390基因的靶基因，tasiARFs的轉(zhuǎn)錄水平顯著提高，而miR390突變體中ta-siARFs表達則顯著降低，表明這些lncRNAs是miRNA的前體。在人類和其他物種的基因組中一些lncRNA序列也是短非編碼RNA的前體。通過分析擬南芥全長cDNA文庫發(fā)現(xiàn)，76條新的lncRNAs和不同類型的小RNA前體npcRNAs，如miRNA、tasiRNA和24 nt的siRNA［32，39］。RT-PCR分析表明，npc83 是miR869a的前體，它在DCL4 突變體中積累。另外，在水稻中研究發(fā)現(xiàn)，p/tms12-1 是一個非編碼RNA基因，它的原始轉(zhuǎn)錄本經(jīng)過至少兩次加工產(chǎn)生一個小RNA，與正常水稻品種相比，溫敏不育水稻在該小RNA序列內(nèi)存在一個單堿基突變，該突變影響了小RNA的表達水平，進而可能與靶基因互作而導(dǎo)致雄性不育［28］。

最新研究發(fā)現(xiàn)，在擬南芥和水稻中，一些lncRNA可以作為小RNA的內(nèi)源誘捕靶標(biāo)（eTM），如 miR160、miR166、miR156、miR159和 miR172，能夠有效抑制這些小RNA的功能實現(xiàn)，進一步研究發(fā)現(xiàn)，miR160和miR166的內(nèi)源誘捕靶標(biāo)在調(diào)控植物發(fā)育方面發(fā)揮重要的作用。通過突變體研究發(fā)現(xiàn)擬南芥的lncRNA-AT4調(diào)控植物對低磷脅迫逆境的適應(yīng)是通過長鏈的形式直接與miR399結(jié)合，降低miR399的表達，而 miR399通過靶向作用調(diào)控下游基因PHO2（UBC24）的表達，從而維持植物體的磷穩(wěn)態(tài)［37］。在植物中，IPS1是一個廣泛存在的受磷饑餓誘導(dǎo)的lncRNA，在植物的根和芽中特異表達，IPS1含有與miR399互補配對的基序，但是這種互補配對被一個位于miR399的剪切位點的錯配環(huán)打斷，從而阻礙miR399剪切IPS1，同時也使得miR399被螯合，并且兩者的結(jié)合比miR399與其底物的結(jié)合更有競爭性。因此，當(dāng)IPS1過量表達后，大量的miR399與IPS1配對，只有少數(shù)miR399與靶基因PHO2的mRNA配對，導(dǎo)致靶基因mRNA的大量積累，最終表現(xiàn)為枝條中磷含量的降低［35］。這種miRNA抑制機制稱為靶基因模擬。靶基因模擬提供了一種新的分析miRNA功能的方法。

4 lncRNA的研究方法

近期，研究人員越來越重視lncRNA，認(rèn)為lncRNA在基因表達調(diào)控中發(fā)揮重要作用，廣泛參與生物體的生長、發(fā)育、衰老等生理過程［40］。lnc-RNAs調(diào)節(jié)機制多樣，包括作為小RNA為前體［41］，介導(dǎo)染色質(zhì)重塑［17］，順式激活鄰近基因［42，43］，作為多蛋白復(fù)合物的支架［44］及反式作用于靶基因座［42］。為揭示lncRNA的分子作用機制，人們借助多種分子生物學(xué)研究方法，如微陣列（microarray）、RNA-seq、Northern 印跡（Northern blot）、實時熒光定量逆轉(zhuǎn)錄-聚合酶鏈反應(yīng)（Real time quantitative reverse transcription-polymerase chain reaction，qRTPCR）、熒光原位雜交（Fluorescence in situ hybridization，F(xiàn)ISH）和RNA干擾（RNA interference，RNAi）等分子生物學(xué)技術(shù)篩選到一些lncRNA［16］。然而對植物中l(wèi)ncRNA的研究仍處于初級階段，目前l(fā)ncRNA的研究主要集中在依賴生物信息學(xué)技術(shù)預(yù)測lncRNA，以挖掘其中l(wèi)ncRNA的序列、結(jié)構(gòu)、表達及功能等信息。使用生物信息學(xué)方法對RNA-seq測序結(jié)果進行預(yù)測，根據(jù)預(yù)測結(jié)果進行RNAi和RIP等lncRNA功能驗證實驗，可以避免功能研究實驗的盲目性，從而節(jié)約大量實驗成本［45］。如Qi等［46］在模擬干旱條件下，利用RNA-seq技術(shù)并結(jié)合麥金尼斯篩選長鏈非編碼RNA的方法對谷子進行全基因組系統(tǒng)地識別，最終確定了584條lncRNAs（494 lincRNAs和 90 NATS）。其中兩個干旱調(diào)控NATs-Si003758m和Si038715m。Si003758m與植物氧化脅迫耐性相關(guān)，在PEG誘導(dǎo)的干旱條件下，Si003758m的正義和反義轉(zhuǎn)錄物均顯著增加，Si038715m編碼羥脯氨酸糖蛋白（HRGP），它是植物細(xì)胞壁的重要組成成分，在植物發(fā)育過程中起關(guān)鍵作用［47］，也能提高植物的抗病性［48，49］

5 結(jié)語

借助于深度測序技術(shù)的進步和生物信息學(xué)手段，有關(guān)植物lncRNA的研究已經(jīng)取得長足發(fā)展，可以預(yù)見，在不久的將來有關(guān)lncRNA的生物學(xué)功能鑒定的報道將出現(xiàn)井噴現(xiàn)象。但由于目前有關(guān)lncRNA的研究仍處于起步階段，因此面臨許多亟待解決的問題：（1）lncRNA的界定仍存在爭議。目前仍然依賴于是否具有開放閱讀框這一結(jié)構(gòu)特征來判斷轉(zhuǎn)錄產(chǎn)生的RNA是編碼還是非編碼RNA，實際上研究發(fā)現(xiàn)一些lncRNA包含ORF，而該ORF編碼與某些已知基因編碼蛋白質(zhì)的同源序列。另外，從長度上對lncRNA進行劃分的方法也存在較大爭議，lncRNA 是一般被認(rèn)為長度大于 200 nt，這一標(biāo)準(zhǔn)作為界定lncRNA過于武斷，因為小于200 nt的非編碼RNA中很多既不屬于小RNA（small RNA）也不屬于結(jié)構(gòu)RNA（structural RNA），對其所屬類別仍不是很清晰。（2）對其描述也不夠全面，很難使初學(xué)者很快了解lncRNA的信息，交叉借鑒的可能性較小。lncRNA生物學(xué)功能的闡明并非易事。（3）lncRNA尚無統(tǒng)一的命名原則：一方面，如何區(qū)分功能性和非功能性非編碼轉(zhuǎn)錄物依然存在困難；另一方面，由于lncRNA種類和功能的多樣性，致使不同的lncRNA研究結(jié)果之間借鑒意義并不大。（4）對lncRNA的鑒定存在困難，在技術(shù)上，由于lncRNA的構(gòu)成單元是核苷酸，某些RNA的改變，不足以改變它的主要功能，因此使得lncRNA很難被傳統(tǒng)的遺傳學(xué)方法發(fā)現(xiàn)。（5）用于 lncRNA 研究的技術(shù)多是一些高通量的方法，如何避免轉(zhuǎn)錄干擾是一個巨大挑戰(zhàn)，而且大量的lncRNA信息獲得后人們不能有效的進行結(jié)構(gòu)和功能的分析。主要是因為相關(guān)數(shù)據(jù)庫依然很少，有關(guān)算法也因?qū)ncRNA信息的認(rèn)識不夠而在算法上有所匱乏。因此，需要建立更多更有效的方法用于系統(tǒng)地研究lncRNA的結(jié)構(gòu)和功能。

綜合來看，目前人們對lncRNA的了解只是冰山一角。人產(chǎn)對于植物中l(wèi)ncRNA的認(rèn)識過程，目前已從lncRNA的篩選過渡到對其基因功能的注釋和作用機制的研究，鑒于有關(guān)動物lncRNA的信息更加豐富，值得我們借鑒。此外，針對lncRNA 的結(jié)構(gòu)特征和作用機制的數(shù)據(jù)信息，建立新的研究技術(shù)體系將是未來一個重要的研究方向。

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（責(zé)任編輯 狄艷紅）

Research Progress on Biological Functions of Long Non-coding RNA in Plants

Niu Xulong Feng Wanjun Ma Jinhu Xing Guofang
（College of Agriculture，Shanxi Agricultural University，Taigu 030801）

Long non-coding RNAs（lncRNAs）as newly discovered regulators for gene expression， participate in a wide range of biological processes in plants， and also could response to environmental stresses. In this review， we summarize the generation and classification of lncRNAs， the discovered lncRNAs in plants， their effects on the development processes of different organs in plants， as well as the relationship between lncRNA and small RNA， research methods， and issues in the current studies of lncRNAs.

plant lncRNA；biological function；research methods；miRNA

10.13560/j.cnki.biotech.bull.1985.2015.06.001

2014-06-06

國家自然科學(xué)基金項目（31200914），山西省青年科學(xué)基金項目（2012021023-4），中國博士后科學(xué)基金項目（2012M520600），山西省高等學(xué)?？萍紕?chuàng)新項目（2015145）

牛旭龍，男，碩士，研究方向：玉米功能基因組學(xué)；E-mail：ycyznxl@163.com

邢國芳，女，博士，副教授，研究方向：功能基因組及抗逆脅迫；E-mail：xingguofang9596@sina.com