徐令東　陳萌　張華等

摘要： 采用福美雙誘導建立肉雞脛骨軟骨發(fā)育不良（tibial dyschondroplasia，TD）模型，研究甲狀旁腺素相關(guān)肽-印第安刺猬蛋白（PTHrP-Ihh）信號軸在肉雞發(fā)生脛骨軟骨發(fā)育不良中的調(diào)控機制。100羽1日齡健康Ross308肉雞經(jīng)1周預飼后，隨機分為2組，對照組飼以基礎日糧，試驗組在飼喂8、9 d時飼以基礎日糧并添加100 mg/kg福美雙，之后繼續(xù)飼以基礎日糧；于15日齡時采集組織樣本，進行檢測。結(jié)果顯示，與對照組比較，試驗組體質(zhì)量極顯著降低，但TD 發(fā)生率極顯著升高；脛骨與肱骨的骨長度、骨密度，脛骨與股骨的骨強度均顯著或極顯著降低，而肱骨的骨指數(shù)顯著增強；TD肉雞脛骨生長板軟骨組織Ihh、PTHrP的mRNA表達極顯著下降，ColⅩmRNA表達極顯著上升。試驗表明，PTHrP-Ihh信號軸調(diào)控紊亂，會影響生長板軟骨細胞的分化和ColX表達，導致肉雞形成脛骨軟骨發(fā)育不良。

關(guān)鍵詞： 脛骨軟骨發(fā)育不良；肉雞；PTHrP-Ihh信號軸

中圖分類號： S858 31 文獻標志碼： A

文章編號：1002-1302（2015）08-0202-03

現(xiàn)代肉雞品種的選育過程中，注重肉雞快速增質(zhì)量的選育方式對肉雞的生理機能產(chǎn)生了顯著的影響，同時導致腿病，尤其是脛骨軟骨發(fā)育不良（ tibial dyschondroplasia，TD）的發(fā)病率顯著增加，不僅影響動物福利，同時也帶來了較大的經(jīng)濟損失 [1]。脛骨軟骨發(fā)育不良是現(xiàn)代肉雞養(yǎng)殖業(yè)最常見、危害最嚴重的骨骼疾病之一，該病以在脛骨近端生長板下形成無血管、未鈣化、不透明的軟骨栓為主要特征。TD的發(fā)病機理十分復雜，近年來研究表明，軟骨細胞的增殖、分化、凋亡失控進而導致軟骨內(nèi)成骨異?？赡苁荰D發(fā)生的重要原因之一，然而相關(guān)機理至今尚未清楚 [2]。甲狀旁腺素相關(guān)肽（parathyroid hormone-related peptide，PTHrP）-印第安刺猬蛋白（Indian hedgehog，Ihh）信號軸是軟骨內(nèi)成骨過程中調(diào)節(jié)軟骨和成骨細胞增殖、分化、肥大、礦化的重要調(diào)控軸，其在肉雞TD發(fā)生中的作用尚未見報道。本試驗通過飼料中添加福美雙的方法，誘導建立肉雞TD模型，研究肉雞脛骨形生長板 PTHrp-Ihh 信號軸和相關(guān)因子的變化及其相互作用關(guān)系，為探明肉雞TD 發(fā)生的機理提供依據(jù)。

1 材料與方法

1 1 試驗儀器

X射線機（北京萬東醫(yī)療裝備股份有限公司）；BS-300生化分析儀（邁瑞公司）；LR10K PLUS骨強度測定儀（Lloyd Instruments Ltd ，英國）；RM2235軟組織切片機（Leica，德國）；H5505光學顯微鏡（Nikon，日本）；自動生化分析儀（Selectar E，荷蘭）；MICROTEK5600透射式掃描儀（上海中晶科技有限公司）。

1 2 試驗材料

福美雙，購于南京壽德試驗器材有限公司；血漿鈣、磷、堿性磷酸酶生化檢測試劑盒，購于邁瑞公司；cDNA Synthesis Kit （M-MLV Version）、SYBR Premix Ex Taq TM試劑盒、蛋白分子量標準，購于寶生物工程（大連）有限公司。

1 3 試驗動物

100羽1日齡Rose308肉雞購自南京長蘆孵化場，隨機分為試驗組、對照組，每組5個重復，每個重復10羽雞。嚴格控制雞舍的溫濕度，最初2 d溫度維持在35 ℃，之后在1周內(nèi)逐漸降到21 ℃，并一直維持該溫度直到試驗結(jié)束?？諝鉂穸染S持在45%左右。每天光照23 h，暗處理1 h。飼喂滁州正大生產(chǎn)的商品雛雞料（代謝能13 39 MJ/kg，粗蛋白230%）。試驗期間自由采食和飲水，對照組飼喂基礎日糧；試驗組飼喂基礎日糧7 d后，飼喂基礎日糧中添加 100 mg/kg 福美雙的日糧，飼喂2 d后停止飼喂，繼續(xù)飼以基礎日糧直至試驗結(jié)束。試驗為期15 d。

1 4 試驗方法

1 4 1 樣品的采集 在15日齡時，每組隨機挑選30羽雞，對每羽雞進行編號、稱質(zhì)量、心臟采血后處死。血液于37 ℃靜置30 min，然后于2 500 g離心收集血清，檢測血漿中鈣、磷、堿性磷酸酶的水平；將每羽雞左側(cè)的肱骨、股骨、脛骨取下分別裝入各自的自封袋中，-20 ℃保存?zhèn)溆?，用于骨長、骨指數(shù)、骨密度、骨強度測定；每個處理隨機選取5羽雞，剝?nèi)∮覀?cè)脛骨，分離生長板，液氮速凍后，-20 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

1 4 2 肉雞TD發(fā)病率的測定 取右脛骨，縱切，參照TD評分標準 [3]判定TD發(fā)病程度。以每組3個重復發(fā)病率的平均值為每組的發(fā)病率，并統(tǒng)計其差異。

1 4 3 骨生長發(fā)育指標的測定

1 4 3 1 骨指數(shù)和骨長度的檢測 檢測前，將每根骨頭解凍過夜，刮除骨頭上所有的軟組織。對每根骨頭稱質(zhì)量并用游標卡尺測其長度。骨指數(shù)的計算公式是：骨指數(shù)=骨質(zhì)量（g）/體質(zhì)量（kg） [4]。

1 4 3 2 骨放射密度的檢測 將肱骨、股骨、脛骨樣本與16級鋁階（英國Roslin研究所饋贈）置于同一暗盒上，拍片（富士醫(yī)用X線膠片，25 4cm×30 5cm）。肱骨、股骨、脛骨采用前后位拍攝，攝片條件：焦點膠片距80 cm，球管電壓與毫安秒分別為44kV、3 88mAs [5]。所攝X線片掃描后，用 NIH Image J 1 32j圖像處理系統(tǒng)分析掃描圖像。骨骼樣本的放射密度用毫米鋁階厚度（mm Al）表示。

1 4 3 3 骨強度的檢測 用三點彎曲試驗檢測骨強度 [6]。在骨骼樣本的中點處標記，用游標卡尺測量每根骨樣本此處的直徑。根據(jù)骨骼樣本長度確定跨距。用骨強度測定儀測定骨骼強度。預載荷速度設為3 mm/min，骨骼斷裂時停止。通過NEXYGEN PLUS軟件分析曲線的最高點即為骨強度（單位為N）。