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        2株依賴海水細菌的分離培養(yǎng)和鑒定

        2015-07-18 04:49:28余中華等
        熱帶農(nóng)業(yè)科學(xué) 2015年6期
        關(guān)鍵詞:細菌

        余中華等

        摘 要 為提高海洋微生物的可培養(yǎng)性,采用海水需求實驗分離海洋細菌的方法,分離出9株嚴格依賴海水生長的細菌。通過16S rDNA測序及同源性分析發(fā)現(xiàn):菌株HB10001(=CGMCC 1.10781T)與Spongiibacter tropicus DSM19543T的16S rDNA序列同源性最高,為96.3%,其(G+C)含量為66.7 mol%;菌株HB10303與Paenibacillus. agaridevorans DSM1355T的16S rDNA序列同源性最高,為98.4%,其(G+C)含量為45.5 mol%。

        關(guān)鍵詞 依賴海水;細菌;分離培養(yǎng)

        分類號 Q933

        Isolation and Characterization of Seawater Required Bacteria

        YU Zhonghua1,2) LIU Jiayang1) CHEN Fujia1) BAO Shixiang2)

        (1 Huanghuai University, Zhengzhou, Henan 450000, China

        2 Institute of Tropical Biosciences and Biotechnolog Key Laboratory of Ministry

        of Agriculture for Tropical Biotechnology, CATAS, Haikou, Hainan 571101, China)

        Abstract In order to increase the cultivability of seawater-required bacteria, 9 strains were isolated for their seawater requirements. strain HB10001(=CGMCC 1.10781T) had the highest sequence similarity with Spongiibacter tropicus DSM19543T(96.3%). The G+C content is 66.7 mol%. Strain HB10303 had the highest sequence similarity with Paenibacillus agaridevorans DSM1355T(98.4%). The G+C content is 45.5 mol%.

        Keywords seawater required ; bacteria ; isolation

        海洋微生物對海水中鹽的組分和濃度有不同程度的依賴性,因此,在設(shè)計培養(yǎng)基時,需要考慮海鹽對海洋微生物生長的影響[1]。有些海洋微生物的培養(yǎng)離不開海水,所以在培養(yǎng)基中添加海水是必不可少的。Mincer[2]發(fā)現(xiàn)的海孢菌Marinospora spp.和鹽孢菌Salinispora spp.只能在海水配制的培養(yǎng)基上生長。Han等[3]從阿穆爾斯基海灣中分離到的Salinibacterium amurskyense gen. nov. sp. nov是Microbacteriaceae的一個新屬。這類菌株能耐受濃度高達10%的NaCl,不過NaCl對其生長則并非必需,說明該菌株對海洋環(huán)境有良好的適應(yīng)性。Tsueng等[4]對海水中的陽離子及離子強度對Salinispora的3個種S. pacifica,S. arenicola和S. tropica生長的影響進行了初步研究,結(jié)果表明,鈣離子和二價鎂離子及某些特定的離子強度對于Salinispora spp.的生長是必需的。Zhang等[5]采用5種不同培養(yǎng)基,分別對5種海綿中可培養(yǎng)放線菌進行分離,證明培養(yǎng)基對可培養(yǎng)微生物的數(shù)量有顯著影響;其中,在無機鹽成分最為豐富的M3培養(yǎng)基上分離到的菌群也具有最大的多樣性。

        本研究針對海洋細菌的特殊生存進化環(huán)境,通過在R2A寡營養(yǎng)培養(yǎng)基中添加海水、純水及NaCl溶液模擬海洋環(huán)境,提高海洋微生物的可培養(yǎng)性,最大程度地分離培養(yǎng)依賴海水的細菌,并分離出新的未培養(yǎng)細菌。同時,利用多相分類方法對分離出來的細菌進行系統(tǒng)分類和鑒定,探明它們的種屬特性和系統(tǒng)發(fā)育學(xué)地位,進一步豐富海洋微生物資源庫,以期為后期新基因、新化合物研究奠定基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        1.1.1 海洋細菌分離培養(yǎng)基

        R2A培養(yǎng)基(海水):0.05 g細菌學(xué)蛋白胨,0.05 g酵母粉,0.05 g可溶性淀粉,0.05 g葡萄糖,0.05 g酸水解酪素,0.03 g丙酮酸鈉,1.5 g瓊脂粉,100 mL海水,pH 6.8。

        R2A培養(yǎng)基(純水):0.05 g細菌學(xué)蛋白胨,0.05 g酵母粉,0.05 g可溶性淀粉,0.05 g葡萄糖,0.05 g 酸水解酪素,0.03 g丙酮酸鈉,1.5 g瓊脂粉,100 mL純水,pH 6.8。

        R2A培養(yǎng)基(NaCl):0.05 g細菌學(xué)蛋白胨,0.05 g酵母粉,0.05 g可溶性淀粉,0.05 g葡萄糖,0.05 g 酸水解酪素,0.03 g丙酮酸鈉,1.5 g瓊脂粉,100 mL 2%NaCl溶液,pH 6.8。

        1.1.2 待測菌株

        HB10001,HB10303分離自海南省三亞市三亞灣海水和海南省昌江縣海泥(表1)。

        1.2 方法

        1.2.1 海水、海綿、海泥樣品采集

        于2011年9~10月分別在海南省和廣東省采集樣品用于海洋微生物分離。樣品信息詳見表1。

        1.2.2 依賴海水細菌的分離方法

        將采回的海綿、海底沉積泥樣品加入一定比例的無菌海水,勻漿后,備用。配制R2A海水和R2A純水平板培養(yǎng)基。將處理好的樣品稀釋至10-3涂布在R2A海水平板上,培養(yǎng)7 d后,首先進行菌落形態(tài)和菌落個數(shù)統(tǒng)計,然后將R2A海水平板上長出的可見菌落挑出在新的R2A海水平板培養(yǎng)基上重新劃線培養(yǎng),以獲得純菌株。再將獲得的純菌株進行進一步的海水需求試驗。

        1.2.3 海水需求試驗

        純化后的細菌測定步驟:用滅菌接種環(huán)從R2A(海水)培養(yǎng)基上挑取一定量的菌落,分別接種于R2A(純水),R2A(海水)以及R2A(NaCl)3種培養(yǎng)基中培養(yǎng)1~4周。采用顯微鏡觀察其生長情況。如果只在海水R2A培養(yǎng)基中觀察到菌落生長,則說明其需要海水才能正常生長。

        統(tǒng)計R2A(純水),R2A(海水)以及R2A(NaCl)平板培養(yǎng)基分離海水、海綿樣品的菌落數(shù);統(tǒng)計海水需求試驗結(jié)果,記錄嚴格依賴海水和不需要依賴海水的菌株數(shù),并統(tǒng)計其在總體分離細菌中所占比例。將嚴格需求海水的細菌作為目標(biāo)菌,進行下一步測序研究。

        1.2.4 培養(yǎng)特征分析

        采用R2A(海水)培養(yǎng)基,將純化的于對數(shù)生長期的成熟菌株HB10001,重新接種在R2A(海水)培養(yǎng)基上,于25℃溫箱中培養(yǎng)7~14 d,并觀察記錄菌落形態(tài)、大小、干濕情況、顏色特征和生長狀況等。

        1.2.5 顯微形態(tài)特征分析

        將接種純化后的待測菌培養(yǎng)7~14 d后,選取生長較好的菌落,用滅菌接種環(huán)將菌落挑取到無菌離心管中,冷凍干燥。再將凍干呈粉狀的待測菌貼于有導(dǎo)電膠帶的電鏡樣品底座上,鍍膜處理(純金膜)。最后采用掃描電鏡觀察,并選取較好的待測菌密度以及清晰的視野進行拍照保存。

        1.2.6 生理特征分析

        均參考Smibert和Krieg[6]的方法,包括革蘭氏染色,菌株運動性試驗,耐鹽范圍,生長pH值范圍,生長溫度范圍。

        1.2.7 分子分類研究

        總DNA提取、16S rDNA基因擴增與系統(tǒng)發(fā)育分析:采用Saito和Miura[7]報道的方法提取和純化細菌DNA。PCR擴增條件:93℃、預(yù)變性2 min;再于93℃變性30 s,52℃退火60 s,72℃延伸2 min,共35個循環(huán):72℃ 延伸10 min。采用1%瓊脂糖凝膠對PCR產(chǎn)物電泳檢測。將PCR擴增產(chǎn)物交給上海生工工程有限公司測序后,獲得的菌株16S rDNA序列,通過GenBank中的Blast程序與核酸數(shù)據(jù)進行對比,分析得出相似性(http://ncbi.nlm.nih.gov/blast)[8]。選取系統(tǒng)中比對結(jié)果相似性高的菌株及其序列,采用Clustal X2.0軟件包進行多序列匹配排列,Mega3.1軟件包中的Kimura-parameter 方法計算進化距離,neighbor-joining[9]方法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹,100次隨機抽樣,以自引導(dǎo)值(Bootstrap)評估系統(tǒng)發(fā)育樹的置信度[10]。

        (G+C)mol%含量的測定:采用Mesbah報道的方法,用高效液相色譜分析基因組DNA(G+C)mol%[11]。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 依賴海水細菌的分離培養(yǎng)

        2.1.1 菌落計數(shù)

        在稀釋梯度為10-3的情況下,通過平板計數(shù)發(fā)現(xiàn),R2A海水培養(yǎng)基,無論是在菌落形態(tài)多樣性上,還是菌落個數(shù)的統(tǒng)計上,都較其他2種培養(yǎng)基更優(yōu)(圖1,表2)。結(jié)果表明,R2A海水培養(yǎng)基上的菌落直徑在0.2~2 mm,形狀以圓形為主,邊緣規(guī)則,顏色以白色和透明無色為主,有黃色,藍色和綠色的菌落。

        2.1.2 海水需求實驗

        結(jié)果表明,經(jīng)過劃線純化后的267株細菌中,有9株嚴格依賴海水的細菌(圖2),編號分別為:HB09009,HB09010,HB09012,HB10001,HB10301,HB10302,HB10303,HB10304,HB10305。觀察菌株HB10001、HB10303在海水、純水及NaCl 3種R2A培養(yǎng)基上的生長狀況發(fā)現(xiàn):HB10001、HB10303在最適溫度25℃下,經(jīng)過1~4周培養(yǎng),HB10001在純水及2% NaCl的R2A培養(yǎng)基上無生長,只在海水R2A培養(yǎng)基上生長,且生長狀況良好;HB10303僅能在海水R2A培養(yǎng)基上生長,且生長狀況不好,說明培養(yǎng)基有待進一步優(yōu)化。

        2.2 菌株HB10001和HB10303的鑒定

        2.2.1 培養(yǎng)特征分析

        菌株HB10001培養(yǎng)特征:生長緩慢,在R2A固體培養(yǎng)基平板上劃線培養(yǎng)6 d左右可見菌落,培養(yǎng)10 d左右可見成熟、清晰的菌落形態(tài)為扁平的圓形小菌落,菌落直徑為0.1~0.3 mm;菌落成乳黃色、半透明、表面光滑、邊沿不規(guī)則,無基內(nèi)菌絲。

        菌株HB10303培養(yǎng)特征:生長緩慢,在R2A固體培養(yǎng)基劃線培養(yǎng)10~15 d可見菌落,培養(yǎng)20 d以上可見成熟、清晰的菌落形態(tài)為扁平的圓形小菌落,直徑為0.5 mm;菌落呈白色半透明狀,表面光滑,邊沿規(guī)則,無基內(nèi)菌絲 。

        2.2.2 顯微形態(tài)特征分析

        菌株HB10001顯微形態(tài)特征:兩頭尖的長桿狀,不產(chǎn)生孢子,無鞭毛。大小范圍:長徑為100~300 μm,短徑為10 μm。

        菌株HB10303顯微形態(tài)特征:長桿狀。大小范圍:短徑0.5~1.4 μm,長徑2~8 μm(圖3)。

        2.3 生理特征

        菌株HB10001為革蘭氏陰性細菌,無運動性。在海水存在的情況下,能在0~4% NaCl范圍內(nèi)生長,最適為3%。能在pH值5.5~7.5的范圍內(nèi)生長,最適pH 6.8。能在溫度為8~38℃的范圍內(nèi)生長,最適生長溫度為25~38℃。

        菌株HB10303為革蘭氏陰性細菌,無運動性。在海水存在的情況下,能在0~3% NaCl范圍內(nèi)生長,最適為1%。能在pH值5.5~7.5的范圍內(nèi)生長,最適pH 7.2。能在溫度為8~45℃的范圍內(nèi)生長,最適生長溫度為15℃。

        2.4 分子指征分析

        2.4.1 基因組DNA(G+C)mol%含量

        對2株新分離的菌落進行(G+C)mol%含量分析發(fā)現(xiàn),菌株HB10001的(G+C)mol%為66.7%,菌株HB10303的(G+C)mol%為45.5%。

        2.4.2 16S rDNA序列測定及系統(tǒng)發(fā)育分析

        菌株HB10001和菌株HB10303 16S rDNA序列全長分別為1 424 、1459 bp,將16S rDNA序列拼接后的結(jié)果與EzTaxon server(http://www.eztaxon.org/)(Chun et al.,2007)中相關(guān)菌進行Blast比對,并將該結(jié)果在Genbank數(shù)據(jù)庫中進行登陸注冊,菌株HB10001的登錄號為HM068370。參照序列比對后的結(jié)果,選取同源性高的標(biāo)準(zhǔn)菌株,利用ClustalX(Version1.8)軟件進行排序,選用Mega 3.1軟件中的neighbor-joining方法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(圖4、5)

        3 討論與結(jié)論

        現(xiàn)今有關(guān)真正的海洋微生物的定義仍有爭論,普遍認為,分離自海洋環(huán)境,正常生長需要海水,并可在寡營養(yǎng)、低溫條件下生長的微生物可視為嚴格的海洋微生物。然而,有些分離自海洋的微生物,其生長不一定需要海水,只需要加入適當(dāng)?shù)柠}離子,就可產(chǎn)生不同于陸棲微生物的代謝產(chǎn)物,或者擁有某些特殊的生理性質(zhì),也被視為海洋微生物。與陸棲細菌相比,海洋細菌普遍耐鹽,最適鹽度在2%~4%,也可以利用海洋微生物的特殊耐鹽度篩選真正的海洋細菌。本研究采用的分離依賴海水細菌的方法,是用于篩選出嚴格需求海水的細菌。此類細菌在普通的淡水寡營養(yǎng)培養(yǎng)基或者加入一定量Na+的情況下,都不能正常生長。本研究發(fā)現(xiàn),在傳統(tǒng)的寡營養(yǎng)培養(yǎng)基中,添加海水可提高海洋微生物的可培養(yǎng)性。所獲得的9株菌則是常規(guī)傳統(tǒng)培養(yǎng)基分離所忽略的類群。

        細菌的多相分類研究經(jīng)歷了長期不斷的發(fā)展和提高。早期主要以形態(tài)特征、培養(yǎng)特征及生理生化特征等分類學(xué)特征對其進行描述分類。但傳統(tǒng)分類系統(tǒng)不能確切說明遺傳進化地位和關(guān)系?,F(xiàn)今分子生物學(xué)技術(shù)在現(xiàn)代分類學(xué)中已占主導(dǎo)地位。一般認為,16S rDNA 序列同源性大于95%的菌可歸為同一屬,大于97% 可視為同一種。因此,在菌株鑒定時,16S rDNA 序列同源性低于 95%的菌可考慮建立新屬,低于 97% 的建立新種時必須測定DNA-DNA 雜交率。本實驗得到的菌株HB10001,與其16S rDNA序列同源性最高的是Spongiibacter tropicus DSM19543T(96.3%),因此需要測定 DNA-DNA 雜交率來確定是否為新種。HB10303與Paenibacillus. agaridevorans DSM1355T(98.4%)的16S rDNA序列同源性最高,則需要通過進一步的多相分類來鑒定。

        同時,菌株HB10001、HB10303分離自中國南海,都只能在海水培養(yǎng)基中形成正常的菌落,離開海水,均不能生長。此外,通過耐鹽試驗發(fā)現(xiàn),HB10001耐鹽范圍為0~4%,HB10303耐鹽范圍為0~3%。綜合菌株來源、低溫適應(yīng)性、菌株嚴格依賴海水生長、鹽耐受性,認為菌株HB10001,HB10303為海洋細菌。

        參考文獻

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