李 波,王 娟,楊 洋,范 玲*
(1 新疆農(nóng)業(yè)科學(xué)院 核技術(shù)生物技術(shù)研究所,烏魯木齊830091;2 新疆農(nóng)業(yè)科學(xué)院 經(jīng)濟(jì)作物研究所,烏魯木齊830091)
蛋白質(zhì)組研究是一種分子生物學(xué)研究方法,并在棉花纖維發(fā)育機(jī)制研究方面已取得較大進(jìn)展,但利用蛋白質(zhì)組學(xué)技術(shù)研究棉花纖維發(fā)育的報道很少。與基因組學(xué)的遺傳標(biāo)記相比,由于蛋白質(zhì)組學(xué)的研究對象是基因表達(dá)的產(chǎn)物,是介于基因型和表型之間的特性,因而蛋白質(zhì)組學(xué)標(biāo)記是聯(lián)系基因多樣性和表型多樣性的紐帶,具有獨(dú)特的意義。
棉纖維是由胚珠表皮細(xì)胞發(fā)育而形成的單細(xì)胞纖維,起始分化后迅速伸長,一般不再分裂,最終纖維長度可達(dá)細(xì)胞纖維直徑數(shù)千倍[1]。棉花纖維形成和發(fā)育過程可分為:纖維原始細(xì)胞分化和突起(起始期)、初生壁伸長、次生壁增厚和脫水成熟4個相互重疊的時期[2-3]。在每個發(fā)育時期棉纖維都具有不同的內(nèi)容和特點(diǎn),分別決定著纖維的不同性狀,但相鄰時期沒有截然區(qū)分的界限,并且有所重疊[3]。Graves等[4-5]最早利用雙向電泳研究了棉花胚珠或纖維的蛋白差異圖譜,分別比較了-3DPA(開花后天數(shù))、-2DPA 和2DPA 胚珠的差異,從而確定了棉纖維起始發(fā)育的開始。Turley[6]利用雙向電泳技術(shù),在離體培養(yǎng)時產(chǎn)生纖維的胚珠中發(fā)現(xiàn)了5個特異表達(dá)蛋白。Ferguson 等[7]比較了纖維發(fā)育伸長期棉纖維的蛋白質(zhì)圖譜,發(fā)現(xiàn)了46個差異表達(dá)的蛋白質(zhì)點(diǎn),并鑒定了其中2個蛋白質(zhì)點(diǎn)。近年來,中國棉花研究者也利用雙向電泳研究蛋白質(zhì)與棉纖維發(fā)育的關(guān)系。劉康等[8]和徐子健等[9]對棉花纖維蛋白質(zhì)的提取方法和雙向電泳條件等進(jìn)行了初步探索和改良。有研究者比較了5~25DPA 棉花胚珠和纖維2-DE圖譜差異發(fā)現(xiàn),在整個纖維發(fā)育中大約有1 600個蛋白點(diǎn)處于穩(wěn)定表達(dá)水平[10-11]。
棉纖維蛋白質(zhì)組中有相當(dāng)多的蛋白質(zhì)是隨不同發(fā)育階段而差異表達(dá),這些差異表達(dá)的蛋白質(zhì)與不同時期纖維的各種變化密切相關(guān)。研究這些差異表達(dá)蛋白質(zhì)的功能及其與纖維發(fā)育之間的關(guān)系,有利于闡述棉纖維伸長和次生壁增厚的分子調(diào)控機(jī)制。本研究以陸地棉遺傳標(biāo)準(zhǔn)系‘徐州142’為實(shí)驗(yàn)材料,采取5、10、15、20、25和30DPA 分別代表細(xì)胞分化期、初生壁伸長高峰期、初生壁合成向次生壁合成轉(zhuǎn)變前期、中期、末期以及次生壁增厚期等6個不同時期的棉纖維,比較不同時期棉纖維蛋白質(zhì)組2-DE圖譜,對其可能的功能進(jìn)行討論,以了解不同發(fā)育階段差異表達(dá)蛋白質(zhì)及其功能與纖維發(fā)育之間的關(guān)系,為棉花產(chǎn)量和品質(zhì)的改良提供理論依據(jù)。
供試材料為陸地棉‘徐州142’(Gossypium hirsutum L.cv.Xuzhou 142),種植于新疆農(nóng)業(yè)科學(xué)院瑪納斯試驗(yàn)基地,取5、10、15、20、25和30DPA 棉鈴,剝除棉籽置-70 ℃冰箱備用。
1.2.1 不同階段棉纖維蛋白的提取 取棉花纖維,去除棉籽,于液氮中迅速研磨成細(xì)粉狀,加入3倍體積的蛋白提取緩沖液[500 mmol/L Tris-HCl(pH 8.0),50 mmol/L EDTA,700 mmol/L 蔗 糖,2%PVP-40,1mmol/L PMSF],漩渦,在冰浴上靜置10 min;加入等體積Tris飽和酚,溶液在室溫下混勻10min;4 ℃、12 000×g離心10min,將酚相轉(zhuǎn)移至新的離心管中,加入等體積蛋白提取緩沖液,漩渦,在冰浴上靜置3min后離心;取酚相,在酚相中加入5倍體積的甲醇-醋酸銨,-20 ℃過夜,進(jìn)行蛋白沉淀;4 ℃、12 000×g離心10min,收集沉淀,用甲醇-醋酸銨溶液洗滌3次,然后用冷丙酮洗滌1次,真空干燥蛋白,-70 ℃冰箱保存?zhèn)溆茫?2-13]。
1.2.2 蛋白質(zhì)濃度測定 蛋白質(zhì)濃度測定參考Bradford[14]的方法。在595nm下測定吸光度值A(chǔ)595,重復(fù)3次求吸光度平均值,制作標(biāo)準(zhǔn)曲線,計(jì)算樣品蛋白質(zhì)含量。
1.2.3 雙向電泳 采用Protean IEF Cell等電聚焦系統(tǒng)(Bio-Rad),條件略有改變,取適量蛋白樣品加裂解液至總體積為400μL,沿IPG 膠條槽緩慢均勻加入,將IPG 膠條膠面朝下覆蓋在樣品上,在膠面上加少許礦物油,置于Protean IEF Cell型電泳儀上,20℃恒溫進(jìn)行,50V 主動水化12h后,250V 30min;500V1h;1 000V30 min;5 000 V1h,10 000V5h;最后穩(wěn)壓在10 000V 進(jìn)行等電聚焦,總電壓時間積為60 000Vh時結(jié)束電泳。第一向等電聚焦結(jié)束后,將IPG 膠條放于2.5mL 膠條平衡緩沖液I中振蕩平衡15min,再轉(zhuǎn)入2.5mL 膠條平衡緩沖液II中振蕩平衡15min。
用PROTEAN XL(Bio-Rad)垂直電泳系統(tǒng)進(jìn)行第二向電泳。平衡完后將膠條轉(zhuǎn)移到12%SDSPAGE凝膠上,用瓊脂糖封膠,以120 V 電壓進(jìn)行電泳,待溴酚藍(lán)移至凝膠底部時停止電泳。電泳結(jié)束后,用考馬斯亮藍(lán)染色方法[8]進(jìn)行凝膠染色。
表1 實(shí)驗(yàn)中所用的引物序列Table1 Primer sequences applied in this study
1.2.4 RNA提取與cDNA第一鏈合成 采用熱硼酸-蛋白酶K 法提取各時期棉纖維的總RNA。利用反轉(zhuǎn)錄酶反轉(zhuǎn)錄合成cDNA 第一鏈,首先將RNA與隨機(jī)引物混合,在PCR 儀上72 ℃變性5min后,及時暫停冰上依次后續(xù)組分,混勻后于25 ℃復(fù)性5 min,42 ℃延伸60min,70 ℃加熱15min 使反轉(zhuǎn)錄酶失活,cDNA 產(chǎn)物于-20 ℃保存。
1.2.5 半定量RT-PCR 利用半定量RT-PCR 方法,以5、10、15、20和25DPA 棉花纖維反轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物為模板,檢測GhMDH、GhSAM、GhPGK1、GhCSD和GhFB在10 和25DPA 棉纖維中的表達(dá)情況。根據(jù)Mascot搜索結(jié)果,利用DNAMAN6.0軟件根據(jù)目的蛋白的核苷酸序列進(jìn)行引物設(shè)計(jì)。引物序列和退火溫度如表1。以GhUBI(登錄號AY18997)作為內(nèi)標(biāo)基因,擴(kuò)增引物為GhUBI-F和GhUBI-R。GhUBI與目的基因同機(jī)分管擴(kuò)增。20μL 體系中含cDNA(20ng/μL)1μL,2×Mix 10μL,引物(25 μmol/L)0.5μL,ddH2O 8μL。擴(kuò)增條件為:94 ℃預(yù)變性4min;94℃變性30s,60℃復(fù)性45s,72℃延伸1min,共28個循環(huán);72 ℃延伸10min。PCR產(chǎn)物置1%瓊脂糖中電泳,用紫外凝膠成像儀(Bio-Rad)觀察結(jié)果。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
利用Bradford法,根據(jù)BSA 標(biāo)準(zhǔn)曲線,計(jì)算蛋白的百分含量。結(jié)果表明,在棉纖維發(fā)育過程中,蛋白的百分含量呈動態(tài)變化(圖1)。在5DPA 棉花纖維中,總蛋白含量最高達(dá)到11.7%,其后隨著發(fā)育時期的發(fā)展,總蛋白含量逐漸降低。這一結(jié)果與棉纖維發(fā)育過程中生理變化相關(guān),在棉纖維快速延伸階段(5~15 DPA)和次生壁增厚階段(20~30 DPA),纖維迅速增加,蛋白含量降低。
圖1 棉纖維發(fā)育過程中總蛋白百分含量的動態(tài)變化Fig.1 The dynamic variation analysis during the cotton fiber development
圖2 不同時期棉纖維總蛋白的SDS-PAGE分析Fig.2 The dynamic variation analysis during the cotton fiber development
利用飽和酚-甲醇醋酸銨法,分別提取6個不同時期棉纖維總蛋白,并利用SDS-PAGE凝膠電泳進(jìn)行檢測,結(jié)果(圖2)顯示,這6個時期都可提取出蛋白,且在分子量50kD左右蛋白含量較多,條帶較亮。
6個不同時期棉纖維蛋白質(zhì)組的2-DE 圖譜共檢測到1 000多個蛋白質(zhì)點(diǎn)。根據(jù)質(zhì)譜鑒定結(jié)果,比較了6個樣品2-DE 圖譜中15個差異點(diǎn)(圖3)。在NCBI上進(jìn)行數(shù)據(jù)查詢,分別是F-box家族蛋白、肌動蛋白、β-微管蛋白、F1-ATP 合成酶、ATP 酶β亞基、膜聯(lián)蛋白、磷酸甘油酸酯激酶I、胞質(zhì)蘋果酸脫氫酶、S-腺苷-L-高半胱氨酸水解酶、谷氨酰胺合成酶、Cu/Zn超氧化物歧化酶、profilin、4-香豆酸輔酶A 連接酶。選取5個在不同樣品中表達(dá)量差異明顯的蛋白質(zhì)點(diǎn)進(jìn)行分析。結(jié)果表明,蛋白質(zhì)在不同發(fā)育時期的表達(dá)有所不同,蛋白點(diǎn)1只在20~30 DPA 時期表達(dá),蛋白點(diǎn)14只在15~30DPA 時期表達(dá),其它3個蛋白點(diǎn)在不同發(fā)育時期表達(dá)量都不同,說明不同發(fā)育時期纖維的蛋白質(zhì)在不同時期表達(dá)量不同,其中一部分蛋白在特定時期不表達(dá),這是蛋白質(zhì)以適應(yīng)不同纖維發(fā)育時期纖維細(xì)胞活動的需要。
利用PDQuest 8.0.1 軟 件 對 其 中5 個 差 異 點(diǎn)進(jìn)行分析,結(jié)果顯示,胞質(zhì)蘋果酸脫氫酶(GhMDH)存在于棉纖維發(fā)育的各個時期,并且隨著纖維的發(fā)育表達(dá)量升高;S-腺苷-L-高半胱氨酸水解酶(Gh-SAM)同樣存在于棉花纖維發(fā)育的各個階段,其在15DPA 表達(dá)量最高;胞質(zhì)磷酸甘油酸酯激酶I也存在于整個棉纖維發(fā)育階段,在10DPA 時表達(dá)量最高(GhPGK1),之后隨著時間的增加蛋白的表達(dá)量逐漸減少;Cu/Zn 超氧化物歧化酶(GhCSD)從15 DPA 開始表達(dá),并且隨著纖維的發(fā)育含量逐漸增加;F-box家族蛋白(GhFB)在棉纖維的伸長期未見表達(dá),其于20DPA 開始表達(dá),含量隨著時間的增加而升高(圖4)。
利用qRT-PCR 方法,分析5 種蛋白基因在棉纖維發(fā)育不同時期的表達(dá)情況(圖5)。S-腺苷-L-高半胱氨酸水解酶基因(GhSAM)在10DPA 棉花纖維中表達(dá)量相對較高;胞質(zhì)磷酸甘油酸酯激酶I基因(GhPGK1)在2 0DPA棉纖維中表達(dá)量相對較高;Cu/Zn 超氧化物歧化酶基因(GhCSD)在15 DPA 棉纖維中表達(dá)量相對較高;胞質(zhì)蘋果酸脫氫酶基因(GhMDH)和F-box家族蛋白基因(GhFB)在25DPA 棉纖維中表達(dá)量最高。
圖3 不同發(fā)育時期棉花纖維蛋白的2-DE圖譜分析Fig.3 The 2-DE analysis during the different cotton fiber development stages
圖4 部分差異蛋白在不同發(fā)育階段的表達(dá)量Fig.4 The protein expression quantity analysis during the cotton fiber development stages
圖5 棉纖維不同發(fā)育時期部分基因的qRT-PCR表達(dá)分析Fig.5 The genes expression analysis at the different cotton fiber development stages
纖維生長是棉花發(fā)育周期中一個主要的過程,尤其是在次生壁增厚階段產(chǎn)生94%左右的纖維素。之前研究中,利用MADLI-TOF-MS 對延伸初期(10DPA)和次生壁合成中期(25DPA)的差異蛋白進(jìn)行了初步鑒定。根據(jù)鑒定結(jié)果,對6個不同發(fā)育階段的棉纖維蛋白進(jìn)行2-DE 分析,并對部分蛋白進(jìn)行了蛋白水平和轉(zhuǎn)錄水平上的比較。
胞質(zhì)蘋果酸脫氫酶(MDH)是蘋果酸代謝過程中的關(guān)鍵酶,而蘋果酸在棉花纖維發(fā)育過程中起著重要的作 用,Dhindsa[15]和Basra[16]發(fā)現(xiàn)棉纖維延伸初期蘋果酸含量顯著提升,在次生壁合成初期開始減少。而Ferguson等[7]則認(rèn)為,從棉花纖維延伸到次生壁合成過程中,蘋果酸脫氫酶的活性逐漸增加;佘義斌等[17]研究發(fā)現(xiàn),S-腺苷-L-高半胱氨酸水解酶基因隨著纖維伸長的發(fā)育進(jìn)程,表達(dá)量逐漸減弱;胞質(zhì)磷酸甘油酸酯激酶I是在糖酵解途徑中為纖維的延伸提供能量的關(guān)鍵酶[9];Cu/Zn超氧化物歧化酶與棉花纖維次生壁發(fā)育相關(guān)[18];F-box family蛋白參與細(xì)胞周期調(diào)控、轉(zhuǎn)錄調(diào)控、細(xì)胞凋亡、細(xì)胞信號轉(zhuǎn)導(dǎo)等生命活動[19]。另外,F(xiàn)-box家族蛋白還通過其它作用方式參與了體內(nèi)眾多生化過程[20]。
本研究分別在蛋白水平和轉(zhuǎn)錄水平上對部分差異蛋白在棉花纖維發(fā)育過程中的作用進(jìn)行了分析和討論。結(jié)果顯示,在蛋白水平上,胞質(zhì)蘋果酸脫氫酶、Cu/Zn超氧化物歧化酶以及F-box家族蛋白在棉花纖維次生壁增厚階段表達(dá)量明顯增加,推測其可能在棉花纖維次生壁發(fā)育階段起重要作用。在轉(zhuǎn)錄水平上,存在著和蛋白水平不一致的結(jié)果,可能是由于真核生物在轉(zhuǎn)錄與翻譯不同時也不同地,基因組與染色體結(jié)構(gòu)復(fù)雜,有著更為復(fù)雜的調(diào)控機(jī)制。真核生物的基因表達(dá)具有多層次性,可發(fā)生在染色質(zhì)水平、轉(zhuǎn)錄起始水平、轉(zhuǎn)錄后水平、翻譯水平以及翻譯后水平[21];另外,在多肽鏈加工折疊為蛋白質(zhì)的過程中,經(jīng)過不同修飾加工的蛋白質(zhì)其穩(wěn)定性會有差異。
棉纖維發(fā)育是一個經(jīng)歷時間長、形態(tài)和生理等發(fā)生劇烈變化的過程,研究不同時期棉纖維蛋白的動態(tài)變化,可以將不同發(fā)育時期纖維的形態(tài)和生理變化與相關(guān)蛋白的活動聯(lián)系起來,從而了解這些變化的分子機(jī)制,最終為纖維品質(zhì)和產(chǎn)量的遺傳工程改良提供依據(jù)。由于棉纖維細(xì)胞壁隨著細(xì)胞的發(fā)育而逐漸增厚,使得棉纖維細(xì)胞不易破碎,為實(shí)驗(yàn)帶來一定的難度,且隨著時間變化蛋白含量逐漸減少。
[1] LI B(李 波),NI ZH Y(倪志勇),etal.Prokaryotic expression,protein purification and western blotting identification ofGhCOMT2gene fromGossypiumhirsutumL.[J].ActaBot.Boreal.-Occident.Sin(西北植物學(xué)報),2010,30(9):1 738-1 743(in Chinese).
[2] BASRA A S,MALIK C P.Development of the cotton fiber[J].InterantionalReviewofCytology,1984,89:65-113.
[3] DELANGHE E A L.Cotton Physiology[M].Memphis:Lint Development,1986:325-349.
[4] GRAVES D A,STEWART J M.Chronology of the differentiation of cotton(GossypiumhirsutumL.)fiber cells[J].Planta,1988,175(2):254-258.
[5] GRAVES D A,STEWART J M.Analysis of the protein constituency of developing cotton fibers[J].JournalofExperimentalBotany,1988,39:59-69.
[6] TURLEY R B,F(xiàn)ERGUSOND L.Changes of ovule proteins during fiber development in a normal and a fiberless line of cotton(Gossypium hirsutumL.)[J].JournalofPlantPhysiol.,1996,149:695-702.
[7] FERGUSON D L,TURLEY R B,TRIPLETT B A,etal.Comparison of protein profiles during cotton(GossypiumhirsutumL.)fiber cell wall development with partial sequences of two proteins[J].JournalofAgriculturalandFoodChemistry,1996,44(12):4 022-4 027.
[8] LIU K(劉 康),HU F P(胡鳳萍),ZHANG T ZH(張?zhí)煺妫?Effect of two methods of protein extraction from cotton ovule and fiber[J].CottonScience(棉花學(xué)報),2005,17(6):323-327(in Chinese).
[9] XUE Z J(徐子劍),SHU X(舒 曉),etal.Three techniques on protein extraction from cotton fibers and two-dimensionalelectrophoreses[J].ChineseJournalofBiochemistryandMolecularBiology(中國生物化學(xué)與分子生物學(xué)報),2006,22(1):77-80(in Chinese).
[10] WU Y T,LIU J Y.Molecular cloning and characterization of a cotton glucuronosyltranferase gene[J].JournalofPlantPhysiology,2005,162(5):573-582.
[11] YANG Y W,BIAN S M,YAO Y,etal.Comparative proteomic analysis provides new insights into the fiber elongating process in cotton[J].JournalofProteomeResearch,2008,7(11):4 623-4 637.
[12] WU X L,XIONG E H,WANG W,etal.Universal sample preparation method integrating trichloroacetic acid/acetone precipitation with phenol extraction for crop proteomic analysis[J].s.Nat.Protoc,2014,9:362-374.
[13] ZHENG R,YUE S J,HAN L,etal.Applied and establishment of two-dimensional polyacrylamide gel electrophoresis system for antherproteome ofLyceumbarbarum[J].ActaBot.Boreal.-Occident.Sin(西北植物學(xué)報),2011,31(12):2 443-2 448(in Chinese).
[14] BRADFORD M M.A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of proteindye binding[J].AnalyticalBiochemistry,1976,72(1/2):248-254.
[15] DHINDSA R S,BEASLEY C A,TING I P.Osmoregulation in cotton fiber:Accumulation of potassium and malate during growth[J].PlantPhysiol,1975,56:394-398.
[16] BASRA A S,MALIK C P.Dark metabolism of CO2during fibre elongation of two cottons differing in fibre lengths[J].JournalofExperimentalBotany,1983,34:1-9.
[17] SHE Y B(佘義斌),ZHU Y CH(朱一超),ZHANG T ZH(張?zhí)煺妫?Cloning,expression,and mapping of S-adenosyl-L-h(huán)omocysteine hydrolase(GhSAHH)cDNA in cotton[J].ActaAgronomicaSinica(作物學(xué)報),2008,4(6):958-966(in Chinese).
[18] KIM H J,TRIPLETT B A.Involvement of extracellular Cu/Zn superoxide dismutase in cotton fiber primary and secondary cell wall biosynthesis[J].PlantSignalingandBehavior,2008,3(12):1 119-1 121.
[19] HERBST A,HEMANN M T,TWORKOWSKI K A.A conserved element in Myc that negatively regulates its proapoptotic activity[J].EMBOReports,2005,6:177-183.
[20] MATSUZAWA S I,REED J C.SIAH-1,SIP and Ebi collaborate in a novel pathway for B-Catenin degradation linked to p53response[J].MolecularCell,2001,7:915-926.
[21] DIRK B,NORBERT L,WOLFGANG B.Induction of heat shock proteins in response to primary alcohols inAcinetobaetercalcoaceticus[J].Electrophoresis,1999,20(4-5):781-789.