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        氚照射對大鼠海馬神經(jīng)細胞黏附分子L1、NCAM表達的影響

        2015-06-01 08:58:13王永生姚曉波蔡二朋吳翠萍王明明
        安徽醫(yī)科大學學報 2015年8期
        關鍵詞:神經(jīng)細胞分子距離

        王永生,姚曉波,蔡二朋,邱 俊,吳翠萍,王明明

        氚照射對大鼠海馬神經(jīng)細胞黏附分子L1、NCAM表達的影響

        王永生1,姚曉波2,蔡二朋3,邱 俊4,吳翠萍5,王明明1

        目的探討低劑量氚照射對大鼠海馬神經(jīng)細胞黏附分子L1、神經(jīng)細胞黏附分子(NCAM)表達的影響。方法取24 h新生鼠腦海馬細胞培養(yǎng),培養(yǎng)第7天以3.7×102、3.7×103、3.7×104、3.7×105、3.7×106Bq/m l終濃度氚水照射細胞24 h,并設對照組(0 Bq/m l),活細胞工作站測定各處理組細胞的遷移距離;Western blot法、免疫細胞化學法檢測各濃度氚水照射下神經(jīng)細胞黏附分子L1及NCAM蛋白的表達情況。結果神經(jīng)細胞遷移距離測定結果顯示,與對照組相比,受照組細胞遷移距離明顯縮短,且隨著氚水濃度的不斷增加而逐漸縮短(P<0.05);Western blot法、免疫細胞化學法檢測顯示受照組神經(jīng)細胞黏附分子L1、NCAM蛋白表達含量均低于對照組,并隨氚水濃度的升高表達量呈遞減趨勢(P<0.05)。結論氚照射可致神經(jīng)細胞黏附分子表達量減少進而可影響神經(jīng)細胞的正常遷移。

        大鼠;氚水;神經(jīng)細胞黏附分子;神經(jīng)細胞

        腦中樞神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)育時期是哺乳動物胚胎發(fā)育的關鍵階段,有研究[1,2]表明這個時期的孕鼠暴露于低濃度氚水輻射下其后代會出現(xiàn)特征性的大腦皮質(zhì)畸形以及成年后行為表現(xiàn)異常。日本原爆幸存者輻射流行病調(diào)查[3]表明,胎齡8~15周受照幸存者神經(jīng)元前體細胞增殖及增殖后的細胞從腦室遷移至大腦皮層的進程受到抑制,出現(xiàn)嚴重智力障礙。神經(jīng)細胞的遷移過程涉及多種遷移相關因子參與,在這些遷移相關因子中神經(jīng)細胞黏附分子L1、神經(jīng)細胞黏附分子(neural cell adhesion molecule,NCAM)作為細胞遷移受體分子在神經(jīng)細胞軸突生長、神經(jīng)纖維成束、突觸可塑性等方面發(fā)揮重要作用[4],而低濃度氚水β輻射對神經(jīng)細胞黏附分子表達的影響鮮有報道。為此,該研究從神經(jīng)細胞黏附分子L1、NCAM受低濃度氚水輻射后的表達情況來探討氚對腦發(fā)育期間神經(jīng)細胞遷移的影響及機制。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        1.1.1 實驗動物 72只SPF級Sprague-Dawley(SD)大鼠,3月齡,購自常州卡文斯實驗動物有限公司,大鼠均飼養(yǎng)于本實驗室動物房。

        1.1.2 試劑及儀器 氚水(中國原子能科學研究院);DMEM/F12(1∶1)和B27(美國Gibco公司);EGF、bFGF、胰蛋白酶、多聚賴氨酸(Poly-L-lysine)、阿糖胞苷(Ara-c)、蘇木精(美國Sigma公司);新生小牛血清(杭州四季青生物工程材料有限公司);L1及NCAM抗體(英國Abcam公司);二抗羊抗兔IgG(北京博奧生物有限責任公司);β-actin抗體、HRP標記的羊抗小鼠IgG抗體、免疫組化試劑盒、DAB顯色試劑盒(北京中杉金橋生物技術有限公司);水合氯醛(上海生物工程有限公司);SW-CJ-1F型超凈工作臺(蘇州凈化設備有限公司);BX-52型光學顯微鏡成像系統(tǒng)(日本佳能公司);XS-212-201型光學顯微鏡(南京光電集團股份有限公司);2123型CO2孵箱(美國Shellab公司);Leica AF 6000活細胞工作站。

        1.2 方法

        1.2.1 海馬神經(jīng)細胞的原代培養(yǎng) 取24 h內(nèi)的新生SD大鼠,性別不限,置于無菌操作室內(nèi),剝離出海馬組織,并用預冷PBS液沖洗后備用。將所獲得的新生大鼠海馬組織放入無菌玻璃皿中,用眼科剪將其適量剪碎后加入0.125%胰蛋白酶消化20 min,加入同等體積胎牛血清終止消化。將消化后的液體裝入一無菌小玻璃瓶放入低速離心機(1 000 r/min),離心5 min后在無菌操作臺上棄去上清液,重新懸浮細胞,用血細胞計數(shù)板計數(shù)后分別接種在不含蓋玻片和含蓋玻片的6孔板中(6孔板已提前使用0.25%的多聚賴氨酸包被,滅菌雙蒸水清洗3遍),種植密度5×106/皿,加入培養(yǎng)基4 ml,置于37℃、5%CO2飽和濕度的培養(yǎng)箱中。培養(yǎng)24 h后,將培養(yǎng)液半換液,培養(yǎng)第3天時,加入阿糖胞苷(終濃度為3μg/ml),24 h后去除。此后每2~3 d全換液1次。

        1.2.2 細胞照射和培養(yǎng) 將培養(yǎng)的神經(jīng)細胞經(jīng)NF160免疫組化染色證實純度達90%以上。培養(yǎng)7 d后加入氚水使各培養(yǎng)孔氚水終濃度分別為3.7× 102、3.7×103、3.7×104、3.7×105、3.7×106Bq/ml,照射24 h后進行實驗,同時設細胞對照組。

        1.3 活細胞工作站測定細胞遷移距離用Leica AF 6000活細胞工作站分別觀察各處理組神經(jīng)細胞的遷移情況,各處理組觀察3個細胞,每個細胞觀察時間為8 h,結果用LAS-AF-LITE 2.3.0軟件進行分析。

        1.4 Westernblot法檢測L1、NCAM蛋白的表達

        1.4.1 總蛋白提取及蛋白質(zhì)定量 收集各實驗組神經(jīng)細胞,用預冷的PBS漂洗2~3次,按總蛋白提取試劑盒說明書步驟提取神經(jīng)細胞內(nèi)蛋白質(zhì)。將總蛋白提取液取5μl樣品加入995μl超純水,于分光光度計下測量樣本的各組蛋白質(zhì)濃度。根據(jù)測出的樣品蛋白濃度將其進行稀釋,使各組樣本的蛋白質(zhì)終濃度一致。加入等體積蛋白上樣緩沖液混合煮沸8 min,適量分裝,-80℃保存?zhèn)溆谩?/p>

        1.4.2 Western blot步驟 配置10%分離膠和5%濃縮膠,取20μl總蛋白上樣,經(jīng)十二烷基硫酸鈉-聚丙稀酰胺凝膠(SDS-PAGE)電泳后,轉(zhuǎn)移到PVDF膜上,5%脫脂奶封閉1~2 h,TBST洗3次;加入一抗L1(1∶1 000)、NCAM(1∶1 000);4℃封閉過夜,TBST洗3次;加二抗羊抗兔IgG(1∶5 000)室溫孵育1 h,TBST洗3次;ECL工作液發(fā)光顯影,定影晾干。

        1.4.3 圖像分析 分別對各組Western blot結果進行圖像掃描,從各組隨機抽取3張掃描圖像,以Quantity-One生物醫(yī)學圖像分析系統(tǒng)進行目的條帶半定量分析,各條帶累積光密度(integral optical density,IOD)值/β-actin的IOD值,得到一相對強度(relative intensity,RI),通過各處理組RI值的比較可得出蛋白表達的變化規(guī)律。

        1.5 免疫細胞化學染色法檢測L1、NCAM蛋白的表達4%多聚甲醛固定細胞,室溫15 min,0.5% TritonX-100孵育20 min,3%雙氧水封閉內(nèi)源性過氧化物酶,室溫15 min,正常山羊血清處理,工作液室溫孵育10~15 min,棄去上清液,一抗于37℃孵育2~3 h,生物素化二抗37℃孵育10~15 min,辣根過氧化物酶標記的鏈親和素37℃孵育10~15min,DAB顯色,蘇木精復染細胞核,脫水,封片。常規(guī)設立陰性對照。各組每張蓋玻片分別任意選取3個不同視野的細胞,于400倍鏡下拍照,用Image Pro Plus軟件進行陽性染色的平均光密度值分析。免疫組織化學染色以細胞質(zhì)和(或)細胞膜出現(xiàn)黃棕色顆粒為陽性。

        1.6 統(tǒng)計學處理采用SPSS 16.0統(tǒng)計軟件進行分析,結果用±s表示,進行單因素方差分析(ANOVA),兩兩比較采用Dunnett-t檢驗。

        2 結果

        2.1 神經(jīng)細胞遷移距離遷移距離測定結果顯示,與對照組相比,各受照組神經(jīng)細胞遷移距離普遍縮短(F=47.553,P<0.01),并且隨著氚水濃度的逐漸升高呈現(xiàn)遞減的趨勢。見圖1、表1。

        表1 不同濃度氚水照射下神經(jīng)細胞的遷移距離(n=3

        表1 不同濃度氚水照射下神經(jīng)細胞的遷移距離(n=3

        與對照組比較:**P<0.01

        氚水濃度(Bq/m l)遷移距離(μm)對照組108.734±13.242 3.7×10278.383±7.707**3.7×10364.053±4.715**3.7×10452.533±2.315**3.7×10537.703±6.203**3.7×10621.302±4.978**

        2.2 Westernblot檢測結果與對照組相比,受照組細胞隨著氚水濃度的增加,神經(jīng)細胞表達的L1、NCAM蛋白含量逐漸降低,L1蛋白各組RI值比較,差異有統(tǒng)計學意義(F=74.520,P<0.01);NCAM蛋白各組RI值比較,差異有統(tǒng)計學意義(F=12.466,P<0.01)。見圖2。

        2.3 免疫細胞化學染色法檢測結果與對照組相比,受照組神經(jīng)細胞平均光密度值普遍低于對照組,并隨著氚水濃度的不斷增加而逐漸降低,神經(jīng)細胞L1、NCAM蛋白平均光密度值比較,差異有統(tǒng)計學意義(F=53.968,P<0.01;F=19.736,P<0.01)。見圖3。

        3 討論

        在中樞神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)育過程中,神經(jīng)細胞遷移過程是復雜并被精細調(diào)控的,神經(jīng)細胞在接受胞外信號后,將信號傳遞至胞內(nèi),最終到達胞內(nèi)細胞骨架,通過微管、微絲及神經(jīng)細胞黏附分子等共同作用完成整個遷移過程,到達大腦特定部位,構成復雜的神經(jīng)網(wǎng)絡體系,進而發(fā)揮正常的腦功能。在神經(jīng)細胞遷移過程中,任何環(huán)節(jié)出現(xiàn)異常都會影響到神經(jīng)細胞最終的正確定位。細胞遷移距離結果顯示,神經(jīng)細胞受氚水照射后,其遷移距離較對照組明顯縮短,并且隨著氚水濃度的不斷增大遷移距離逐漸縮短。

        神經(jīng)細胞黏附分子L1、NCAM歸屬于免疫球蛋白超家族,是一種結構復雜的跨膜糖蛋白,通過親同性和異同性結合介導細胞與細胞之間及細胞與細胞外基質(zhì)之間的相互作用,能夠多個分子共同作用于細胞外區(qū)域,在細胞質(zhì)內(nèi)也可以與細胞骨架蛋白actin可逆的結合[5]。目前的研究[6-8]表明,L1及NCAM充當整合素、生長因子的共同受體的同時也作為一種受體排斥的軸突導向分子。在促進神經(jīng)細胞突觸生長,神經(jīng)細胞目標識別及神經(jīng)細胞的正確遷移等過程中起著重要作用。

        L1主要影響大腦皮層顆粒細胞的遷移過程[9],在神經(jīng)細胞發(fā)育和突觸形成中都起著非常重要的作用,可通過同親性機制或與其他的蛋白分子,如整合素、纖粘連蛋白受體和蛋白聚糖等異同性結合共同介導神經(jīng)細胞的黏附。Ll還可通過錨蛋白與細胞骨架相連,參與細胞遷移運動過程及可在膜內(nèi)通過它的寡聚甘露糖與NCAM結合,通過調(diào)節(jié)細胞黏附的作用來影響神經(jīng)細胞正常的遷移過程。NCAM主要通過介導同源相鄰細胞黏附來影響神經(jīng)細胞的正常遷移過程,其主要通過三種機制[10]:①兩個NCAM分子各自的IgⅢ結構域的相互作用;②兩個NCAM分子的免疫球蛋白結構域反平行結合;③兩個NCAM分子上的IgI和IgⅡ結構域的交互結合。這種同源性結合可介導細胞內(nèi)的信號轉(zhuǎn)導途經(jīng),過程可能與成纖維細胞生長因子(fibroblast growth factor,F(xiàn)GF)受體有關。NCAM可以和FGF受體上與NCAM同源的結構域相結合來調(diào)節(jié)FGF活性,進一步激活磷脂酶Cγ產(chǎn)生甘油二酯,通過電壓依賴性鈣通道誘導Ca2+內(nèi)流,促進神經(jīng)細胞軸突生長,最終影響神經(jīng)細胞的遷移過程。相關研究[11]表明電離輻射可導致L1、NCAM的表達含量降低進而影響大腦神經(jīng)細胞的遷移過程,導致遷移障礙。先前的研究[12]也顯示孕鼠腦受氚β射線輻射后,其神經(jīng)細胞的L1、NCAM的含量普遍降低,妨礙了神經(jīng)細胞的正常遷移,導致腦機能發(fā)生障礙。本研究結果表明,神經(jīng)細胞受氚水照射后,L1、NCAM表達量較對照組明顯減低,并且呈現(xiàn)出隨氚水濃度不斷增大而逐漸降低的趨勢,這與細胞遷移距離的結果及先前的研究結果是相一致的,提示氚水可通過影響神經(jīng)細胞黏附分子L1、NCAM的表達來影響發(fā)育期間腦神經(jīng)細胞的正常遷移過程。

        綜上所述,氚水照射可下調(diào)仔鼠腦內(nèi)神經(jīng)細胞黏附分子L1、NCAM的表達,影響神經(jīng)細胞黏附及神經(jīng)細胞軸突生長等方面來妨礙神經(jīng)細胞的正常遷移,通過研究氚水照射對發(fā)育中腦的影響可以深入了解氚輻射如何影響神經(jīng)細胞遷移使神經(jīng)細胞定位異常而最終導致腦機能障礙的機制,為日后預防氚的危害、治療氚輻射損傷及制定安全衛(wèi)生法規(guī)和標準、管理決策提供重要實驗依據(jù)。

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        [12]姚曉波,王永生,邱 俊,等.氚宮內(nèi)照射對大鼠神經(jīng)細胞分布及腦機能的影響[J].安徽醫(yī)科大學學報,2014,49(10):1371-5.

        Effects of irradiation from tritiated water on the expression of neural cell adhesion molecule L1 and NCAM of hippocam pus in rats

        Wang Yongsheng1,Yao Xiaobo2,Cai Erpeng3,et al
        (1Institute of Radiation Medicine,School of Clinical Medicine,Anhui Medical University,Hefei 230032;2Dept of Nuclear Medicine,Anhui Provincial Hospital,Hefei 230031;3Dept of Radiology,The Second People’s Hospital,Wuhu 241000)

        Objective To explore the effects of low concentrations of tritium irradiation using tritiated water on the expression of neural cell adhesion molecule L1(L1)and neural cell adhesion molecule(NCAM)in vitro.MethodsHippocampal neuron cells from neonatal Sprague-Dawley(SD)rats(24 h)were primarily cultured in DMEM for 7 d,followed by exposure to tritiated water at concentrations of 3.7×102,3.7×103,3.7×104,3.7×105,3.7×106Bq/ml for24 h respectively,and cellswithout tritium irradiation served as control group(0 Bq/ml).Live Cell Imaging System was performed to detect neuronalmigration capacity.Western blot and immunocytochemistry(ICC)were used tomeasure the expression levels of neural cell adhesion molecule L1 and NCAM.ResultsThe migration distance of irradiated neural cells was significantly shorter than that of the control group and declined gradually with increasing tritiated water(HTO)concentrations(P<0.05);Western blot and ICC showed that the expression of L1 and NCAM were both presented a dose-dependent decrease in hippocampalneuron cellswhen irradiated by tritium(P<0.05).ConclusionNeurons exposed to tritium irradiation are probably undergoing the decreased expression of neural cell adhesionmolecules,further leading to abnormal neuronalmigration.

        rats;tritiated water;neural cell adhesion molecule;neural cell

        R 811.5

        A

        1000-1492(2015)08-1102-05

        2015-03-11接收

        國家自然科學基金(編號:81273003);安徽省自然科學基金(編號:1208085MH162);安徽省教育廳自然科學基金(編號:KJ2011Z162)

        1安徽醫(yī)科大學臨床醫(yī)學院放射醫(yī)學研究所,合肥 230032

        2安徽省立醫(yī)院核醫(yī)學科,合肥 230032

        3蕪湖市第二人民醫(yī)院影像科,蕪湖 241000

        4安徽省第二人民醫(yī)院MRI室,合肥 230001

        5肥東縣人民醫(yī)院呼吸科,合肥 230001

        王永生,男,碩士研究生;

        王明明,男,副教授,碩士生導師,責任作者,E-mail:wmgene@163.com

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