張 瑩,黃旭升,劉 麗,李 懋,張小蘭,陳朝暉,凌 麗
?
·論著·
目標區(qū)序列捕獲和第二代測序技術(shù)在Duchenne型肌營養(yǎng)不良基因診斷中的應用
張 瑩,黃旭升,劉 麗,李 懋,張小蘭,陳朝暉,凌 麗
目的 應用目標區(qū)序列捕獲和第2代測序技術(shù)對Duchenne型肌營養(yǎng)不良患者進行基因檢測,驗證該方法的敏感度和特異度。方法 應用目標區(qū)序列捕獲和第2代高通量測序技術(shù)對19例臨床診斷為Duchenne型肌營養(yǎng)不良患者進行基因檢測,用Sanger法對8個微小突變患者樣本進行測序驗證。結(jié)果 19例患者均發(fā)現(xiàn)遺傳病因,大片段缺失11例,微小突變8例,經(jīng)Sanger法測序驗證。其中3個微小突變?yōu)槭状伟l(fā)現(xiàn)的新突變。結(jié)論 目標區(qū)序列捕獲和第2代測序技術(shù)可以1次檢測DMD基因幾乎全部的突變類型,極大地提高了檢測效率,該方法敏感度高、特異性強,具有良好的臨床應用前景。
肌營養(yǎng)不良,杜氏;基因檢測; 第二代測序
Duchenne型肌營養(yǎng)不良(duchenne muscular dystrophy, DMD)是以骨骼肌進行性萎縮和腓腸肌假性肥大為主要臨床特征的X連鎖隱性遺傳性疾病,是最常見的肌營養(yǎng)不良類型,發(fā)病率約占活產(chǎn)男嬰的1/3500[1-2],其中約1/3為散發(fā)病例。女性大部分為攜帶者,通常不發(fā)病。DMD及其良性病程表現(xiàn)型Becker型肌營養(yǎng)不良的致病基因抗肌萎縮蛋白基因,位于Xp21.2,由79個外顯子、78個內(nèi)含子和8個啟動子組成,全長2.5 Mb,約占人類全部染色體長度的千分之一,是已知人類基因組中最大的基因[3],因此具有較高的突變頻率和多種多樣的突變類型。在過去的幾年中,多重PCR(mPCR)[4]、變性高效液相色譜法[5]、多重連接探針擴增技術(shù)[6]、微陣列比較基因組雜交技術(shù)[7]相繼廣泛應用,使得占突變類型約70%大片段缺失或重復可以檢出,但是仍有約30%的微小突變無法診斷[5,8-12]。近年來,隨著分子生物學技術(shù)的蓬勃發(fā)展,以目標區(qū)序列捕獲和第2代測序技術(shù)為基礎(chǔ)的新一代測序平臺已然逐步建立,可以同時檢測拷貝數(shù)個和單個堿基的突變,具有靈敏度高、特異性強、高通量和低成本等突出優(yōu)勢[13-18]。本文中我們進一步提高檢測的覆蓋區(qū)域,對DMD基因的外顯子,內(nèi)含子以及啟動子上的所有序列(重復性區(qū)域除外),對目標區(qū)域總共約98%以上的非重復區(qū)域進行基因捕獲和高通量測序分析,進一步探索目標區(qū)序列捕獲和第2代高通量測序技術(shù)在DMD中的臨床診斷價值,并探討其基因型與臨床表型之間的關(guān)系。
1.1 研究對象 選取自2013年12月—2014年12月在解放軍總醫(yī)院神經(jīng)內(nèi)科門診就診,臨床診斷為DMD/BMD的19例男性患者,家族史陰性,父母均為非近親結(jié)婚,所有患者均有運動發(fā)育落后,包括學步延遲、易跌倒和跑、跳、上樓困難,病情逐漸進展出現(xiàn)鴨步、典型Gower征、雙側(cè)腓腸肌假性肥大,不伴肌束顫動和感覺異常、血肌酸激酶水平顯著增高,部分患者曾行肌電圖檢查提示肌源性損害、部分患者曾行肌肉活檢,符合假肥大型肌營養(yǎng)不良改變。本研究獲得解放軍總醫(yī)院倫理委員會批準,所有患者的監(jiān)護人均簽署知情同意書。
1.2 方法
1.2.1 目標區(qū)序列捕獲及高通量測序:先將患者的外周血采用QIAamp血液提取試劑盒(Qiagen,德國)按照產(chǎn)品說明提取基因組DNA,取3 μg DNA經(jīng)Covaris S2超聲儀(Covaris,美國)將其隨機打斷, 打斷樣本片段約為150 bp,純化后的DNA使用T4連接酶和T4堿性磷酸酶及Klenow片段進行末端修復,然后在片段兩端加入A尾,通過接頭連接形成標準的Solexa測序文庫。文庫經(jīng)PCR擴增后,取3 μg DNA與邁基諾基因DMD基因捕獲芯片進行雜交,洗脫的雜交文庫質(zhì)控合格后經(jīng)HiSeq2000 PE100上機測序。用Sanger法對8個點突變患者樣本進行測序驗證。
1.2.2 生物信息學分析:測序數(shù)據(jù)經(jīng)過質(zhì)量控制后,使用BWA軟件對數(shù)據(jù)進行比對,使用SOAPsnp和GATK軟件分析樣本突變信息。將得到的樣本突變信息與人類基因突變數(shù)據(jù)庫(HGMD)、外顯子組測序項目數(shù)據(jù)庫(ESP6500)、千人基因組數(shù)據(jù)庫(1000g)及Mygeno本地人群數(shù)據(jù)庫(Inhouse)進行關(guān)聯(lián)分析。第1步:去掉同義突變,去掉在1000 g、ESP6500和Inhouse數(shù)據(jù)庫中出現(xiàn)頻率>1%的突變,HGMD數(shù)據(jù)庫中明確報道過的突變位點在正常人(1000 g、ESP6500和Inhouse數(shù)據(jù)庫)中的頻率可以放寬到5%;第2步:對比HGMD數(shù)據(jù)庫中與樣本遺傳疾病相關(guān)的突變熱點,分析已報道位點的疾病臨床癥狀與樣本臨床癥狀是否一致,如一致則可以考慮該突變?yōu)橹虏⊥蛔?。?步:篩選出氨基酸改變?yōu)閟top gain、frame shift、splicing、stop loss等對蛋白功能影響比較大的突變位點。第4步:結(jié)合基因與疾病的關(guān)聯(lián)信息和樣本的臨床信息,篩選了樣本的致病基因突變。利用對DMD全基因組進行site plot作圖的方法即對每個或每段位點的測序深度進行統(tǒng)計并作圖,找出大片段擴增缺失。
19例患者首診原因絕大多數(shù)為運動發(fā)育落后,個別患者(11例)為發(fā)現(xiàn)心肌酶增高,所有患者均發(fā)現(xiàn)DMD基因突變。8例發(fā)現(xiàn)點突變,包括微小插入2例,微小缺失1例、剪切位點突變1例,無義突變4例。其中3例為首次發(fā)現(xiàn)的新突變,分別為:例3 chrX31645855-31645856 c.7782dupT (p.A2595fs);例4 chrX32466668-32466669 c.3322delG (p.V1108X) ;例6 chrX31986458-31986459 c.2588dupA (p.K863fs),見表1、圖1。所有的單堿基突變均經(jīng)Sanger法驗證,與第2代測序的結(jié)果一致。另外11例患者存在大片段缺失,見表2、圖2。
表1 8例Duchenne型肌營養(yǎng)不良患者DMD基因點突變
注:DMD為Duchenne型肌營養(yǎng)不良;Mutation Taster預測為僅對未見文獻報道的突變進行預測
DMD作為一種致死性遺傳性疾病,是兒童期最常見的肌營養(yǎng)不良類型,以進行性加重的近端骨骼肌無力、萎縮,血清肌酶水平增高,腓腸肌假性肥大為主要臨床特征。本研究中患者多以走路延遲、易摔倒為最早的臨床表現(xiàn),學會走路的平均年齡為16個月?;颊卟∏檫M展迅速,先后出現(xiàn)跟腱攣縮,上肢帶肌、頸前肌無力,12歲左右不能行走。
表2 11例Duchenne型肌營養(yǎng)不良患者 DMD基因大片段缺失
注:DMD為Duchenne型肌營養(yǎng)不良,BMD為Becker型肌營養(yǎng)不良癥
B
C
圖1 3例Duchenne型肌營養(yǎng)不良患者首次發(fā)現(xiàn)的新突變位點Sanger法測序圖
A為例3(c.7782dupT);B為例4 (c.3322delG);C為6 (c.2588dupA)
A
B
C
D
E
F
G
H
I
J
圖2 11例Duchenne型肌營養(yǎng)不良患者DMD基因大片段缺失
A為例9,45-47號外顯子缺失;B為例10,8-49號外顯子缺失;C為例11(51號外顯子缺失);D為例12,14-44號外顯子缺失;E為例13,48-50號外顯子缺失;F為例14,49-52號外顯子缺失;G為例15,45-47號外顯子缺失;H為例16,3-30號外顯子缺失;I為例17,38-43號外顯子缺失;J為例18,45-48號外顯子缺失;K為例19,45-47號外顯子缺失
通過DMD基因序列捕獲及第2代測序,19例患者均找到了遺傳病因,11例(58%)為大片段缺失突變,8例(42%)為微小突變。例3的c.7782dupT (p.A2595fsC)突變?yōu)槭状伟l(fā)現(xiàn),重復的堿基T位于編碼區(qū)第55號外顯子內(nèi),導致移碼突變,蛋白質(zhì)的第2595位編碼序列由GCC變成TGC,氨基酸由丙氨酸(Ala)變成半胱氨酸(Cys),并在第2595位之后的第5位密碼子出現(xiàn)終止密碼子TGA,表達只包含前面55個外顯子的截短蛋白。例4的c.3322delG(p.Q1109fsR)突變?yōu)槭状伟l(fā)現(xiàn),為第27號外顯子1個堿基的缺失導致移碼突變,造成蛋白質(zhì)的第1109位編碼序列由CAG變成AGA,氨基酸由谷氨酰胺(Gin)變成精氨酸(Arg),并在此后的第2個密碼子就出現(xiàn)終止密碼子TAA,表達截短的抗肌萎縮蛋白,為致病性突變。例6的c.2588dupA(p.T864Nfs)也為微小插入突變,重復的堿基A位于編碼區(qū)第17號外顯子內(nèi),導致移碼突變,蛋白質(zhì)的第864位編碼序列由ACA變成AAC,氨基酸由蘇氨酸(Thr)變成天冬氨酸(Asn),并在氨基酸序列第864位之后的第3位密碼子出現(xiàn)終止密碼子TAA,表達只包含前面17個外顯子的截短蛋白。以上3個突變在中國健康人群中沒有發(fā)現(xiàn),結(jié)合患兒病史、臨床表現(xiàn)及血清CK水平,符合DMD臨床表型,經(jīng)Sanger測序法驗證結(jié)果與NGS技術(shù)結(jié)果相符,因此明確為致病的突變位點。
此外,例2(p.Q869X),例5(p.G1522X),例7(p.Q1588X),例8(p.Q1037X)均為無義突變,單個堿基的突變造成編碼氨基酸的密碼子變成終止密碼子,而表達截短的抗肌萎縮蛋白,患者出現(xiàn)典型的DMD臨床表現(xiàn)。國外文獻報道TGA是DMD患者中發(fā)生頻率較高的終止密碼子[19],但本研究中的終止密碼子中TAA(4/7)占大多數(shù),可能與種族差異有關(guān)。
11例大片段缺失突變主要集中在45-54號外顯子附近,與既往文獻中報道的突變“熱區(qū)”相符[20]。1988年Monaco等[21]提出的DMD基因突變“閱讀框規(guī)則”,認為如果突變破壞基因閱讀框,則產(chǎn)生截短且無功能的Dystrophin蛋白,導致發(fā)病早、癥狀重的DMD;若突變未破壞閱讀框,產(chǎn)生的蛋白則可能有部分功能,導致BMD。但仍有病例與此規(guī)則不符,如例16的患者經(jīng)基因檢測證實為3-30號外顯子缺失,突變未破壞閱讀框,但患者18個月起病,目前有明顯頸前肌、下肢肌肉無力,跟腱攣縮,翼狀肩胛、腓腸肌假性肥大,為典型的DMD表型。另外,外顯子缺失的大小范圍與臨床疾病的嚴重程度沒有直接的關(guān)聯(lián)。如例11僅缺失第51號外顯子,引起典型的DMD。然而,也有部分患者盡管存在大片段缺失癥狀仍然較輕微,如例9、15、18、19的45-47號/48號外顯子整碼缺失,但患者平均年齡超過20歲,仍能獨立行走,其中例9行肌肉活檢免疫組化染色檢查未發(fā)現(xiàn)膜蛋白缺陷。有學者發(fā)現(xiàn),抗肌萎縮蛋白在正常含量的30%以上就能維持機體的正常狀態(tài),因此,這部分患者由必要行肌肉活檢測定抗肌萎縮蛋白的表達量。
雖然目前在臨床工作中,根據(jù)患者的臨床表現(xiàn),生化檢查中肌酶顯著升高,肌肉活檢病理檢查,特別是免疫組化或免疫熒光技術(shù)直接標記Dystrophin蛋白,可達到確診的目的,但肌肉活檢畢竟是一種有創(chuàng)檢查,在兒童期,特別是幼兒期開展有一定的難度,并且確診后仍無法明確疾病產(chǎn)生的根本原因。而基因檢測能為患者提供準確的遺傳信息,為遺傳咨詢和產(chǎn)前診斷提供可靠的理論依據(jù),正逐漸成為患者首選的無創(chuàng)檢查手段。自1987年Hoffman等[3]首次定位DMD的致病基因以來,多種基因突變檢測技術(shù)相繼應用,1998年Chamberlain等[4]建立了多重PCR診斷大片段缺失的方法;2002年,多重連接探針擴增技術(shù)(multiplex Ligation-dependent Probe Amplification, MLPA)開始應用于臨床實踐,并一直沿用至今[6,22-24],雖然可以對全部79個外顯子進行缺失或重復突變檢測,但越來越多的研究表明MLPA診斷技術(shù)的局限性,如對單外顯子缺失診斷的假陽性[25-27];微陣列比較基因組雜交技術(shù)可以精確檢測各種拷貝數(shù)變異和定位缺失斷點甚至內(nèi)含子的復雜突變,但是仍不能檢測不涉及拷貝數(shù)改變的微小突變[7]。傳統(tǒng)檢測DMD基因單個堿基突變的Sanger法,雖然準確可靠,但成本高,效率低且不能同時檢測拷貝數(shù)變異,極大限制了其在臨床診斷中的應用。近年來,新一代高通量測序技術(shù)開始應用于遺傳性疾病的基因檢測,2011年Lim等[15]首先利用第2代測序技術(shù)對DMD患者進行測序分析,證明該技術(shù)診斷DMD的可行性,2013年戴毅等[28]建立了基于基因芯片捕獲和高通量測序技術(shù)的DMD微小突變臨床檢測平臺,并報道新突變21種,檢測敏感度97.4%,特異度100%。2014年Wei等[18]針對一大樣本的研究,首次報道了外顯子部分缺失這一新突變類型,并將斷裂點精確到堿基水平。但是我們注意到,以上研究中檢測范圍并沒有包含整個基因序列,僅包含了全部外顯子區(qū),側(cè)翼序列及部分內(nèi)含子區(qū)域,同時我們發(fā)現(xiàn)仍有患者經(jīng)病理證實確診為DMD但基因檢測未見異常的現(xiàn)象[28],因此,本文研究中,我們進一步增加目標覆蓋區(qū)域,包含了DMD基因外顯子, 內(nèi)含子以及啟動子上的所有序列,總共檢測目標區(qū)域約2 Mbp中98%以上的非重復區(qū)域。力求為患者提供更全面、準確的基因檢測結(jié)果。19例臨床擬診DMD/BMD的患者均發(fā)現(xiàn)相應的突變,并且經(jīng)過Sanger法驗證,實現(xiàn)了一次檢測DMD基因的幾乎全部突變類型,極大地提高了檢測效率,進一步證實新一代測序技術(shù)具有靈敏度高、特異性強的顯著優(yōu)勢,并且隨著這一技術(shù)的廣泛應用, 檢測的成本將進一步降低,周期也將逐漸縮短。目標區(qū)序列捕獲和第2代測序技術(shù)必將成今后遺傳病基因診斷的主要檢測手段,應用于其他更多遺傳病的臨床基因診斷、產(chǎn)前診斷、高危人群的篩查,不僅能降低現(xiàn)階段遺傳病的發(fā)病率,也為將來遺傳病的基因治療打下基礎(chǔ),提供準確可靠的理論依據(jù)。
[1] Bushby K, Finkel R, Birnkrant D J,etal. Diagnosis and management of Duchenne muscular dystrophy, part 1: diagnosis, and pharmacological and psychosocial management[J].Lancet Neurol, 2010,9(1):77-93.
[2] 羅飛,姜海燕,李巍,等.超聲引導穿刺活檢診斷進行性肌營養(yǎng)不良[J].解放軍醫(yī)藥雜志,2011,23(3):59.
[3] Hoffman E P, Brown R H Jr, Kunkel L M. Dystrophin: the protein product of the Duchenne muscular dystrophy locus[J].Cell, 1987,51(6):919-928.
[4] Chamberlain J S, Gibbs R A, Ranier J E,etal. Deletion screening of the Duchenne muscular dystrophy locus via multiplex DNA amplification[J].Nucleic Acids Res, 1988,16(23):1141-1156.
[5] Bennett R R, den Dunnen J, O'Brien K F,etal. Detection of mutations in the dystrophin gene via automated DHPLC screening and direct sequencing [J].BMC Genet, 2001,2(3):17.
[6] Schouten J P, Mcelgunn C J, Waaijer R,etal. Relative quantification of 40 nucleic acid sequences by multiplex ligation-dependent probe amplification[J].Nucleic Acids Res, 2002,30(12):e57.
[7] Hegde M R, Chin E L, Mulle J G,etal. Microarray-based mutation detection in the dystrophin gene [J].Hum Mutat, 2008,29(9):1091-1099.
[8] White S, Kalf M, Liu Q,etal. Comprehensive detection of genomic duplications and deletions in the DMD gene, by use of multiplex amplifiable probe hybridization [J].Am J Hum Genet, 2002,71(2):365-374.
[9] White S J, Aartsma-Rus A, Flanigan K M,etal. Duplications in the DMD gene [J].Hum Mutat, 2006,27(9):938-945.
[10]Flanigan K M, Dunn D M, von Niederhausern A,etal. Mutational spectrum of DMD mutations in dystrophinopathy patients: application of modern diagnostic techniques to a large cohort [J].Hum Mutat, 2009,30(12):1657-1666.
[11]Takeshima Y, Yagi M, Okizuka Y,etal. Mutation spectrum of the dystrophin gene in 442 Duchenne/Becker muscular dystrophy cases from one Japanese referral center[J].J Hum Genet, 2010,55(6):379-388.
[12]Aartsma-Rus A, Van Deutekom J C, Fokkema I F,etal. Entries in the Leiden Duchenne muscular dystrophy mutation database: an overview of mutation types and paradoxical cases that confirm the reading-frame rule[J].Muscle Nerve, 2006,34(2):135-144.
[13]Nasim V, Bohm J, Le Gras S,etal. Next generation sequencing for molecular diagnosis of neuromuscular diseases[J].Acta Neuropathologica, 2012,124(2):273-283.
[14]Shyr D, Liu Q. Next generation sequencing in cancer research and clinical application[J].Biol Proced Online, 2013,15(1):4.
[15]Lim B C, Lee S, Shin J Y,etal. Genetic diagnosis of Duchenne and Becker muscular dystrophy using next-generation sequencing technology: comprehensive mutational search in a single platform[J].J Med Genet, 2011,48(11):731-736.
[16]Xie S, Lan Z, Qu N,etal. Detection of truncated dystrophin lacking the C-terminal domain in a Chinese pedigree by next-generation sequencing[J].Gene, 2012,499(1):139-142.
[17]Wang Y, Yang Y, Liu J,etal. Whole dystrophin gene analysis by next-generation sequencing: a comprehensive genetic diagnosis of Duchenne and Becker muscular dystrophy[J].Mol Genet Genomics, 2014,289(5):1013-1021.
[18]Wei X, Dai Y, Yu P,etal. Targeted next-generation sequencing as a comprehensive test for patients with and female carriers of DMD/BMD: a multi-population diagnostic study[J].Eur J Hum Genet, 2014,22(1):110-118.
[19]Magri F, Del Bo R, D'Angelo M G,etal. Clinical and molecular characterization of a cohort of patients with novel nucleotide alterations of the Dystrophin gene detected by direct sequencing[J].BMC Med Genet, 2011,12:37.
[20]Oudet C, Hanauer A, Clemens P,etal. Two hot spots of recombination in the DMD gene correlate with the deletion prone regions[J].Hum Mol Genet, 1992,1(8):599-603.
[21]Monaco A P, Bertelson C J, Liechti-Gallati S,etal. An explanation for the phenotypic differences between patients bearing partial deletions of the DMD locus[J].Genomics, 1988,2(1):90-95.
[22]Zeng F, Ren Z R, Huang S Z,etal. Array-MLPA: comprehensive detection of deletions and duplications and its application to DMD patients[J].Hum Mutat, 2008,29(1):190-197.
[23]Sansovic I, Barisic I, Dumic K. Improved detection of deletions and duplications in the DMD gene using the multiplex ligation-dependent probe amplification (MLPA) method[J].Biochem Genet, 2013,51(3-4):189-201.
[24]Yang J, Li S Y, Li Y Q,etal. MLPA-based genotype-phenotype analysis in 1053 Chinese patients with DMD/BMD[J].BMC Med Genet, 2013,14:29.
[25]Wang X, Wang Z, Yan M,etal. Similarity of DMD gene deletion and duplication in the Chinese patients compared to global populations[J].Behav Brain Funct, 2008,4(5):20.
[26]Kozlowski P, Jasinska A J, Kwiatkowski D J. New applications and developments in the use of multiplex ligation-dependent probe amplification[J].Electrophoresis, 2008,29(23):4627-4636.
[27]龍飛,孫維,季星,等.多重連接依賴的探針擴增技術(shù)在Dystrophin基因外顯子拷貝數(shù)異常臨床檢測中的研究[J].中華醫(yī)學遺傳學雜志,2011,28(6):699-704.
[28]戴毅,姚鳳霞,魏曉明,等.基因芯片捕獲及高通量測序在迪謝內(nèi)型肌營養(yǎng)不良基因診斷中的初步研究[J].中華神經(jīng)科雜志,2013,46(3):188-192.
Target Region Sequence Capture and Second-generation Sequencing Technology in Application of Genetic Diagnosis for Duchenne Muscular Dystrophy
ZHANG Ying1, HUANG Xu-sheng1, LIU Li2, LI Mao1, ZHANG Xiao-lan1, CHEN Zhao-hui1, LING Li1
(1. Department of Neurology, General Hospital of PLA, Beijing 100853, China; 2. Department of Neurology, 306 Hospital of PLA, Beijing 100101, China)
Objective To make genetic diagnosis of Duchenne muscular dystrophy (DMD) patients using target region sequence capture and second-generation sequencing technology, and to validate its sensitivity and specificity. Methods Target region sequence capture and second-generation sequencing technology were used to detect the gene mutations of 19 DMD patients, and 8 micromutation samples were confirmed using Sanger sequencing method. Results All the 19 patients had DMD gene defects including 11 having exon deletions and 8 having point mutations. Three of the mutations were firstly found by Sanger sequencing method. Conclusion Target region sequence capture and second-generation sequencing technology can detect almost all types of mutations in DMD patients with better detecting efficiency, sensitivity and specificity.
Muscular dystrophy, Duchenne; Genetic diagnosis; Second-generation sequencing
100853 北京,解放軍總醫(yī)院神經(jīng)內(nèi)科(張瑩、黃旭升、李懋、張小蘭、陳朝暉、凌麗);100101 北京,解放軍306醫(yī)院神經(jīng)內(nèi)科(劉麗)
黃旭升,E-mail:lewish301@126.com
R746.2
A
2095-140X(2015)06-0053-07
10.3969/j.issn.2095-140X.2015.06.014
2015-02-03 修回時間:2015-03-10)