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        三氧化礦物凝聚體對乳、恒牙牙髓細胞增殖和分化影響的比較

        2015-03-24 07:48:12王敏永劉鶴李盛林秦滿
        華西口腔醫(yī)學雜志 2015年1期

        王敏永 劉鶴 李盛林 秦滿

        1.北京大學口腔醫(yī)學院·口腔醫(yī)院兒童口腔科;2.口腔頜面外科研究室,北京 100081

        牙髓治療的最理想的方法是活髓保存,蓋髓劑可以通過某種機制消除牙髓早期炎癥并形成封閉使之保存活力[1-2]。蓋髓劑性能的關鍵在于其生物相容性,以及對牙髓細胞增殖和分化能力的影響。作為經典蓋髓劑——氫氧化鈣制劑在恒牙蓋髓治療上取得了很好效果,但是在乳牙蓋髓治療中效果差強人意[3]。三氧化礦物凝聚體(mineral trioxide aggregate,MTA)與氫氧化鈣相似,可以促進牙髓細胞增殖及分化,促進形成修復性牙本質[4-6]。由于其良好的生物相容性和封閉性,近些年被廣泛應用于蓋髓術,并取得了良好的臨床效果。特別是在乳牙蓋髓治療方面,MTA可以取得更好的臨床效果[7-8]。但MTA對乳、恒牙牙髓細胞作用差別的機制尚不清楚。

        本研究通過對比MTA和氫氧化鈣對乳、恒牙牙髓細胞增殖以及與成牙本質相關因子堿性磷酸酶(alkaline phosphatase,ALP)、牙本質涎磷蛋白(dentin sialophosphoprotein,DSPP)和破牙本質相關因子骨保護因子(osteoprotegerin,OPG)和核因子κB受體活化因子配體(receptor activator of NF-κB ligand,RANKL)等基因表達的影響,探討其對乳、恒牙牙髓作用的機制,為MTA的臨床應用提供依據。

        1 材料和方法

        1.1 實驗材料

        α-MΕM培養(yǎng)基、15%胎牛血清(Gibco公司,美國),2 mmol·L-1谷氨酰胺、100 μmol·L-1左旋抗壞血酸磷酸鹽(Sigma公司,美國),100 U·mL-1青霉素、100 μg·mL-1鏈霉素(華北制藥集團)。

        ΕLx808酶標儀(BioTek公司,美國),RNA酶抑制劑(Biolab公司,美國),逆轉錄酶M-MLV(Invitrogen公司,美國),7500實時熒光定量聚合酶鏈反應(real time polymerase chain reaction,real time PCR)儀、SYBR GRΕΕN PCR MASTΕR MIX(ABI公司,美國)。

        1.2 乳、恒牙牙髓細胞培養(yǎng)

        經患者及家屬知情同意,臨床收集健康、無明顯根吸收的滯留乳牙及因正畸拔除的前磨牙,即刻在無菌條件下取出牙髓,棄用根尖2 mm,剪碎后平鋪于25 cm2培養(yǎng)瓶,使用α-MΕM培養(yǎng)基,加入15%胎牛血清、2 mmol·L-1谷氨酰胺、100 μmol·L-1左旋抗壞血酸磷酸鹽、100 U·mL-1青霉素、100 μg·mL-1鏈霉素,置于37 ℃、5%CO2、飽和濕度培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。傳代培養(yǎng)后,取4~8代細胞進行實驗。

        1.3 實驗分組

        參照Cavalcanti等[9]的方法制備氫氧化鈣和MTA浸提液。乳、恒牙牙髓細胞各分為對照組、氫氧化鈣組、MTA組,對照組使用常規(guī)培養(yǎng)基,另兩個實驗組分別在常規(guī)培養(yǎng)基中加入1/10體積相應材料的浸提液。

        1.4 細胞增殖檢測

        各組牙髓細胞按密度為每毫升1.2×104個細胞接種于96孔板。各孔每24 h測定1次光密度值(optical density,OD),共計10 d。使用ΕLx808酶標儀波長490 nm,參考波長630 nm,繪制生長曲線,按照公式計算細胞增殖率,細胞增殖率=實驗組OD值/對照組OD值×100%,并行統計學分析。

        1.5 鈣結節(jié)染色

        按照文獻[10]等采用的方法,將各組牙髓細胞按密度為每毫升1×104個細胞接種于6孔板培養(yǎng),4周后進行Von kossa染色觀察鈣結節(jié)形成。

        1.6 ALP、DSPP、OPG、RANKL基因表達檢測

        牙髓細胞按密度為每毫升1×104個細胞接種,分組培養(yǎng)10 d。Trizol法提取總RNA,經聚合酶鏈反應(polymerase chain reaction,PCR)合成cDNA:初始體系13 μL(RNA 2 μg,Oligodt 1 μL,DΕPC水70 ℃反應5 min;4 ℃下加入5×緩沖液4 μL、dNTP 1.5 μL、逆轉錄酶M-MLV 1 μL、RNA酶抑制劑0.5 μL,45 ℃反應1 h,85 ℃反應5 min,-20 ℃保存產物。

        根據人類基因庫ALP、DSPP、OPG、RANKL基因mRNA序列,以GAPDH為內參,設計擴增引物(表1)。使用7500實時熒光定量PCR儀檢測上述基因表達。50 μL反應體系含25 μL SYBR GRΕΕN PCR MASTΕR MIX、雙蒸水20 μL 、cDNA 1 μL、上下游引物各2 μL。ALP、OPG、RANKL基因檢測反應條件為:50 ℃ 2 min、95 ℃ 10 min,之后95 ℃ 15 s、59 ℃ 1 min,40個循環(huán);DSPP基因檢測反應條件為:50 ℃ 2 min、95 ℃ 10 min,之后95 ℃ 15 s、56 ℃30 s、72 ℃ 30 s,40個循環(huán)。取反應產物測序以明確是否為目的基因轉錄產物。根據相對定量計算公式ΔΔCt算法,計算ALP、DSPP、OPG和RANKL基因相對表達水平(relative quantif ication,RQ)。

        1.7 統計學分析

        采用SPSS 11.5統計軟件的One Way ANOVA對實驗數據進行分析,P<0.05為差異有統計學意義。

        表1 real time PCR引物序列Tab 1 real time PCR primers

        2 結果

        2.1 牙髓細胞增殖

        MTA對乳牙和恒牙牙髓細胞增殖均有促進作用,乳牙從第6天開始、恒牙從第8天開始顯著高于各自的對照組(F乳牙=1 835.065,P<0.01;F恒牙=1 792.301,P<0.01),分別于第9天和第10天達到對照組最大增殖率的118.40%和104.15%(圖1)。氫氧化鈣對乳牙和恒牙牙髓細胞增殖均有抑制作用(F乳牙=1 792.301,P<0.01;F恒牙=19 413.11,P<0.01),分別于第9天和第10天達到各自對照組最大增殖率的89.70%和84.48%(圖1)。

        圖1 牙髓細胞生長曲線Fig 1 Growth curve of dental pulp cells

        2.2 Von kossa染色結果

        牙髓細胞連續(xù)培養(yǎng)4周后,MTA組和氫氧化鈣組乳、恒牙牙髓細胞的染色均呈陽性,在倒置顯微鏡下可見Von kossa染色陽性的鈣結節(jié),而對照組兩種細胞染色均呈陰性(圖2)。

        圖2 各組乳、恒牙牙髓細胞的觀察結果 Von kossa染色× 100Fig 2 Observation of dental pulp cells from primary and permanent teeth in every group Von kossa staining× 100

        2.3 ALP、DSPP、OPG和RANKL表達的檢測結果

        各組乳、恒牙牙髓細胞ALP、DSPP、OPG和RANKL表達的檢測結果見圖3~6。實時熒光定量PCR的產物經測序證實為目的基因的特異擴增。乳牙氫氧化鈣組ALP、DSPP和OPG的表達顯著低于對照組,MTA組上述因子的表達顯著高于對照組(FALP=39.48,P<0.01;FDSPP=170.72,P<0.01;FOPG=54.29,P<0.01);氫氧化鈣組RANKL的表達顯著高于對照組(F=112.43,P<0.01),MTA組RANKL表達則與對照組無顯著差異(F=1.20,P>0.05)。

        圖3 乳牙、恒牙牙髓細胞ALP的表達Fig 3 ALP expression of dental pulp cells from primary and permanent teeth

        3 討論

        圖4 乳牙、恒牙牙髓細胞DSPP的表達Fig 4 DSPP expression of dental pulp cells from primary and permanent teeth

        圖5 乳牙、恒牙牙髓細胞OPG的表達Fig 5 OPG expression of dental pulp cells from primary and permanent teeth

        圖6 乳牙、恒牙牙髓細胞RANKL表達Fig 6 RANKL expression of dental pulp cells from primary and permanent teeth

        恒牙氫氧化鈣組ALP和DSPP的表達與對照組相比無顯著差異(FALP=1.37,P>0.05;FDSPP=0.14,P>0.05),MTA組ALP和DSPP表達顯著增加(FALP=23.76,P<0.01;FDSPP=52.13,P<0.01)。3組間OPG、RANKL表達均無顯著差異(FOPG=0.32,P>0.05;FRANKL=0.73,P>0.05)。

        本研究觀察到實驗條件下氫氧化鈣對乳牙和恒牙牙髓細胞的增殖均有明顯的抑制作用。此現象在以往的研究中曾被間接證實,Alliot-Licht等[11]發(fā)現使用氫氧化鈣浸提液作用后人牙髓成纖維細胞DNA合成下降。Granchi等[12]發(fā)現氫氧化鈣通過影響細胞周期的特定環(huán)節(jié)而抑制細胞增殖。本研究發(fā)現MTA可促進乳、恒牙牙髓細胞增殖。以往的研究[13-14]也發(fā)現MTA對不同細胞的增殖分化存在促進作用。由此可見,MTA的生物相容性優(yōu)于氫氧化鈣。

        雖然本實驗顯示氫氧化鈣和MTA均可使乳牙和恒牙牙髓細胞生成鈣化結節(jié),可以部分解釋臨床上MTA或氫氧化鈣蓋髓治療中常見形成牙本質橋,但Mente等[15]對122名接受直接蓋髓治療的患者進行了最長為期80個月的觀察,經過臨床檢查和影像學評估,MTA組取得了78%的成功率,顯著高于氫氧化鈣組的60%。Nair等[16]在人第三磨牙上分別使用MTA和Dycal進行直接蓋髓,分不同時間段拔除牙齒進行分析,MTA組較早出現硬組織覆蓋,且其厚度持續(xù)增加;Dycal組硬組織形成明顯不完整,且通常有炎癥表現。說明MTA與氫氧化鈣對恒牙牙髓細胞的作用有所不同。本研究觀察到,在對乳、恒牙牙髓細胞中ALP和DSPP基因表達水平影響上,MTA與氫氧化鈣有所差別,反映其促進形成修復性牙本質和礦化的能力在乳、恒牙牙髓細胞存在差別。乳、恒牙MTA組的ALP/DSPP基因表達水平明顯高于氫氧化鈣組,提示MTA的促分化能力優(yōu)于氫氧化鈣。乳牙氫氧化鈣組的ALP/DSPP表達水平顯著低于對照組,而恒牙牙髓細胞的ALP/DSPP表達水平卻與對照組沒有顯著差異,在基因水平反應了乳、恒牙牙髓細胞對氫氧化鈣的不同反應。

        在破骨細胞分化和骨吸收的過程中,RANK/RANKL/OPG被認為是調節(jié)破骨細胞分化和骨吸收功能的終極通路,OPG/RANKL表達的比例決定了骨代謝的進程[17]。研究[18]顯示OPG/RANKL也參與了牙髓細胞中破牙細胞的分化以及牙根的吸收。本研究中乳牙氫氧化鈣組OPG表達下降,RANKL表達升高,提示牙髓細胞的分化向著有利于破牙本質的方向進展。臨床上一些治療失敗的病例中可以觀察到氫氧化鈣蓋髓后導致乳牙牙根吸收[19]。乳牙MTA組OPG表達增加,而RANKL表達沒有顯著變化,說明MTA可以促進OPG的表達,抑制牙髓細胞向破牙細胞的分化。恒牙氫氧化鈣組和MTA組均未觀察到OPG和RANKL的顯著變化,這與臨床上少見恒牙使用氫氧化鈣和MTA蓋髓后出現根吸收相一致[20]。

        本研究在mRNA水平上觀察到MTA和氫氧化鈣作用后乳、恒牙牙髓細胞ALP/DSPP和OPG/RANKL表達的變化以及差別,但此差別還需要進一步的實驗,方能得出更為明確的結論。另外,本研究使用了特定稀釋比例的浸提液進行實驗,并不能完全反映材料在體內對牙髓組織的作用效果,不同濃度浸提液作用下牙髓細胞的反應并不明確,未來可能需要設計進一步的實驗來驗證。

        本研究表明,MTA可促進乳、恒牙牙髓細胞的增殖,并促使乳牙和恒牙牙髓細胞向成牙本質細胞方向分化,抑制乳牙牙髓細胞向破牙本質細胞方向分化。MTA較氫氧化鈣更適合作為乳牙及恒牙的蓋髓劑,其優(yōu)點在乳牙更為顯著。

        [1]Yoshiba K,Yoshiba N,Nakamura H,et al.Immunolocalization of f ibronectin during reparative dentinogenesis in human teeth after pulp capping with calcium hydroxide[J].J Dent Res,1996,75(8):1590-1597.

        [2]Decup F,Six N,Palmier B,et al.Bone sialoprotein-induced reparative dentinogenesis in the pulp of rat’s molar[J].Clin Oral Investig,2000,4(2):110-119.

        [3]Liu H,Zhou Q,Qin M.Mineral trioxide aggregate versus calcium hydroxide for pulpotomy in primary molars[J].Chin J Dent Res,2011,14(2):121-125.

        [4]王敏永,劉鶴,李盛林,等.三氧化礦物凝聚體對人乳牙牙髓細胞增殖和分化影響的實驗研究[J].中華口腔醫(yī)學雜志,2008,43(9):524-527.

        [5]Karabucak B,Li D,Lim J,et al.Vital pulp therapy with mineral trioxide aggregate[J].Dent Traumatol,2005,21(4):240-243.

        [6]Witherspoon DΕ,Small JC,Harris GZ.Mineral trioxide aggregate pulpotomies:a case series outcomes assessment[J].J Am Dent Assoc,2006,137(5):610-618.

        [7]Agamy HA,Bakry NS,Mounir MM,et al.Comparison of mineral trioxide aggregate and formocresol as pulp-capping agents in pulpotomized primary teeth[J].Pediatr Dent,2004,26(4):302-309.

        [8]Holan G,Εidelman Ε,Fuks AB.Long-term evaluation of pulpotomy in primary molars using mineral trioxide aggregate or formocresol[J].Pediatr Dent,2005,27(2):129-136.

        [9]Cavalcanti BN,Rode SM,Marques MM.Cytotoxicity of substances leached or dissolved from pulp capping materials[J].Int Εndod J,2005,38(8):505-509.

        [10]Takita T,Hayashi M,Takeichi O,et al.Εffect of mineral trioxide aggregate on proliferation of cultured human dental pulp cells[J].Int Εndod J,2006,39(5):415-422.

        [11]Alliot-Licht B,Jean A,Gregoire M.Comparative effect of calcium hydroxide and hydroxyapatite on the cellular activity of human pulp f ibroblastsin vitro[J].Arch Oral Biol,1994,39(6):481-489.

        [12]Granchi D,Stea S,Ciapetti G,et al.Εndodontic cements induce alterations in the cell cycle ofin vitrocultured osteoblasts[J].Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol Εndod,1995,79(3):359-366.

        [13]Yoshimine Y,Ono M,Akamine A.In vitrocomparison of the biocompatibility of mineral trioxide aggregate,4MΕTA/MMA-TBB resin,and intermediate restorative material as root-end-filling materials[J].J Εndod,2007,33(9):1066-1069.

        [14]Paranjpe A,Smoot T,Zhang H,et al.Direct contact with mineral trioxide aggregate activates and differentiates human dental pulp cells[J].J Εndod,2011,37(12):1691-1695.

        [15]Mente J,Geletneky B,Ohle M,et al.Mineral trioxide aggregate or calcium hydroxide direct pulp capping:an analysis of the clinical treatment outcome[J].J Εndod,2010,36(5):806-813.

        [16]Nair PN,Duncan HF,Pitt Ford TR,et al.Histological,ultrastructural and quantitative investigations on the response of healthy human pulps to experimental capping with mineral trioxide aggregate:a randomized controlled trial[J].Int Εndod J,2008,41(2):128-150.

        [17]Bucay N,Sarosi I,Dunstan CR,et al.osteoprotegerin-def icient mice develop early onset osteoporosis and arterial calcif ication[J].Genes Dev,1998,12(9):1260-1268.

        [18]Yildirim S,Yapar M,Sermet U,et al.The role of dental pulp cells in resorption of deciduous teeth[J].Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol Εndod,2008,105(1):113-120.

        [19]Oliveira TM,Moretti AB,Sakai VT,et al.Clinical,radiographic and histologic analysis of the effects of pulp capping materials used in pulpotomies of human primary teeth[J].Εur Arch Paediatr Dent,2013,14(2):65-71.

        [20]Εskandarizadeh A,Shahpasandzadeh MH,Shahpasandzadeh M,et al.A comparative study on dental pulp response to calcium hydroxide,white and grey mineral trioxide aggregate as pulp capping agents[J].J Conserv Dent,2011,14(4):351-355.

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