蔡雪雁 李厚華 李玲 于航 陳蓋 包努恩都特
(西北農(nóng)林科技大學,楊凌,712100)
責任編輯:任 俐。
隨著社會發(fā)展,人們對色彩美的需求越來越強烈,不僅僅局限于欣賞自然界天然的綠色之美,而更加追求紅肥綠瘦的變化之美、炫彩斑斕的多樣之美。但色彩繽紛的花朵花期短,遠不能滿足人們對自然之物的長久欣賞、留戀之意,而植物葉片具有發(fā)育周期長,觀賞期長的優(yōu)勢,彩葉樹種就成了人們追捧的新奇之物[1]。在越來越多的園林景觀設計中,彩葉樹種不僅用來點綴、裝飾、豐富色彩,更是被用來與其他景觀要素相協(xié)調(diào),充分營造植物空間的層次感及豐富植物景觀,表達特定的園林意境[2]。
雞爪槭(Acer palmatum Thunb)為槭樹科槭樹屬彩葉樹種,落葉小喬木。葉色初春鮮紅、夏季變綠,到了秋天再變紅,季相變化豐富,且其色彩變化契合季節(jié)變換,夏為綠色,給人一種清涼感,秋則轉(zhuǎn)紅,平添秋意,加之樹姿瀟灑而體量適中,可種植形式多樣,在園林景觀中應當更加廣泛的應用。目前,對雞爪槭轉(zhuǎn)色期葉片色素的研究,主要集中在葉綠素、總花青苷、可溶性糖質(zhì)量分數(shù)、生理變化和影響顏色變化的因子方面[3-6],還未對決定其葉色變化色素進行細化研究。本研究旨在對雞爪槭各變色時期的主要成色色素進行分析,闡述其變色機理,為彩葉植物新品種培育提供理論參考。
以2013年采自本地校園內(nèi)的雞爪槭葉片為試驗材料,選取生長健壯、長勢一致的植株,從初春開始,依次采集雞爪槭7個變色時期(即雞爪槭由鮮紅變黃綠,黃綠變深綠再變紫紅的過程)向陽生長的無破損的葉片(中位葉),包括芽葉期、展葉期、初葉期、小綠期、大綠期、綠葉期和紅葉期。取樣重復3次,保存于-80℃。
標準品有矢車菊素、槲皮素、矢車菊素半乳糖苷、矮牽牛素、綠原酸、蘆丁、二氫楊梅酮、香豆酸、對香豆酸、楊梅素、兒茶素、表兒茶素、根皮苷。
將冰箱中-80℃凍存的材料轉(zhuǎn)置于真空冷凍干燥機,處理48 h后,研磨成粉末備用。
類黃酮提取液:分別精確稱量7個變色時期葉片粉末0.25 g,加10 mL甲醇提取,超聲3次,合并提取液,旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)后用原溶液定容至10 mL[7],重復3次。
葉綠體色素提取液:分別精確稱量7個變色時期葉片粉末0.1 g,加10 mL 96%乙醇提?。?],重復3次。
花青苷提取液:分別精確稱量7個變色時期葉片粉末0.25 g,加10 mL 1%甲醇鹽酸提取液提取,超聲3次,合并提取液,旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)后用原溶液定容至10 mL[7],重復3次。
花青素萃取液:取300μL花青苷提取液及600 μL 2N鹽酸加入小離心管中,95℃金屬浴加熱45 min。冰上冷卻后加入300μL 3-甲基丁醇,劇烈晃動,離心10 min(8 000 r·min-1,4℃)。置于4℃冰箱待其分層,上層液體含有花青苷水解后的花青素和其他類黃酮,收集上相[7]。
光譜鑒定:用島津-2450紫外可見分光光度計對上述類黃酮、花青苷提取液及花青素萃取液在200~600 nm檢測吸收波峰,對雞爪槭葉片中所含色素種類進行初步鑒定[9]。
光度測定:用分光光度計分別在663、645、470 nm下測定葉綠體色素提取液在各個吸收波長處的吸收值,據(jù)此計算葉綠素和類胡蘿卜素的質(zhì)量分數(shù)[8],計算公式如下:
色素質(zhì)量分數(shù)=(色素質(zhì)量濃度×提取液總量×稀釋倍數(shù)/樣品量)×1 000。
式中:C代表質(zhì)量分數(shù);D代表吸光度;a代表葉綠素a;b代表葉綠素b;x代表類胡蘿卜素;t代表葉綠素(a+b)。
薄層層析分析:取類黃酮提取液、花青素萃取液按順序點樣于薄層板上,將薄層板放置于流動相Formic(V(濃鹽酸)∶V(甲酸)∶V(水)=2∶5∶3)中展開,根據(jù)Rf值(Rf=原點至組分斑點中心的距離/原點至溶劑前沿的距離)來輔助判斷花青素/苷種類[7]。對于自然狀態(tài)觀察不到的類黃酮物質(zhì),在紫外光(254 nm)下和氨水熏蒸薄層板后觀察顏色變化來推斷[10-11]。
高效液相色譜分析:用高效液相色譜儀檢測(L-2000),二極管陣列檢測器(L-2455),檢測波長200~700 nm。檢測參數(shù)為C18柱,進樣量為10μL,柱溫40℃,流速0.50 mL·min-1。檢測波長為280、360、520、535 nm。流動相參數(shù)為A是0.04%的甲酸水溶液,B是色譜級乙腈。梯度洗脫,0~40 min,A.95%~0,B.5%~100%;40~60 min,B.100%。由標準品檢測結(jié)果繪制標曲,計算葉片中各單體酚的質(zhì)量分數(shù)(mg·kg-1)[7]。
pH值測定:pH值采用細胞液提取法(cell sap extract)測定,采后鮮葉研磨,用pH酸度計進行檢測[12]。
統(tǒng)計分析:采用Excel軟件處理數(shù)據(jù)、SPSS軟件做相關性分析。
2.1.1 初步鑒定色素類別
雞爪槭各變色時期葉片類黃酮提取液、花青苷提取液和花青素萃取液光譜掃描結(jié)果顯示,類黃酮提取液:芽葉期葉片類分別在紫外區(qū)280、290、330 nm有吸收峰,推測其可能含有黃酮醇類、二氫黃酮醇類及酚酸類物質(zhì);展葉期、小綠期和大綠期葉片檢測到分別在210、250、330、380 nm有吸收峰,推測其可能含有黃酮醇類、黃烷酮類及酚酸類物質(zhì);初葉期、綠葉期和紅葉期葉片分別在210、240、255、330、390 nm有吸收峰,推測其可能含有黃酮醇類、黃烷酮類及酚酸類物質(zhì)[13]?;ㄇ嘬仗崛∫?芽葉期分別在紫外區(qū)210、275、330 nm和可見光區(qū)530 nm處檢測到花青苷特征吸收峰,推測芽葉期葉片中可能存在花青苷類物質(zhì),且種類很可能是矢車菊素[14];展葉期、初葉期、小綠期、大綠期、綠葉期、紅葉期雞爪槭葉片分別在210、275、330、470、530 nm檢測到吸收峰,推測其可能含有花青苷類物質(zhì)及類胡蘿卜素[13]?;ㄇ嗨剌腿∫?各時期除了檢測到花青苷特征吸收峰外,還檢測到初葉期和紅葉期水解萃取液在329 nm下有吸收峰,該波峰位于300~330 nm,表明該花青苷分子內(nèi)有?;浣Y(jié)合的糖基可能為半乳糖[15]。
2.1.2 葉片中葉綠素和類胡蘿卜素的質(zhì)量分數(shù)變化
光度測定的結(jié)果表明,雞爪槭葉片中葉綠素的質(zhì)量分數(shù)和類胡蘿卜素的質(zhì)量分數(shù)變化趨勢基本一致。前3個時期質(zhì)量分數(shù)變化趨勢平穩(wěn),波動極小;從初葉期開始,葉綠素的質(zhì)量分數(shù)開始逐漸增加,到了大綠期增加的幅度變大,類胡蘿卜素的質(zhì)量分數(shù)從大綠期開始增加,這使得綠葉期葉綠素和類胡蘿卜素的質(zhì)量分數(shù)均達到最大值,質(zhì)量分數(shù)分別是最小值的2.56倍和1.84倍;綠葉期到紅葉期二者質(zhì)量分數(shù)開始急速下降,且最終質(zhì)量分數(shù)均略低于芽葉期(表1)。
表1 不同葉片發(fā)育時期葉綠素和類胡蘿卜素質(zhì)量分數(shù)變化
將雞爪槭葉片花青素萃取液及花青苷提取液按變色時期,順序點樣進行薄層層析,結(jié)果表明,各變色時期葉片提取液均觀察到紅色斑點,花青苷提取液觀察到兩個肉眼可見的紅色斑點,花青素萃取液觀察到一個肉眼可見的紅色斑點。葉片芽葉期、展葉期、初葉期和紅葉期在薄層層析板上紅色斑點顏色較深,小綠期、大綠期和綠葉期斑點顏色很淡。芽葉期到綠葉期斑點逐漸變淺,說明花青苷/素的質(zhì)量分數(shù)逐漸減少;紅葉期斑點加深,說明花青苷/素質(zhì)量分數(shù)增加。計算結(jié)果表明,兩個斑點的Rf值分別為0.22和0.57,與標準品Rf值進行對比,與矢車菊素及矢車菊素半乳糖苷的基本一致,因此,可以初步推測雞爪槭葉片花青苷類物質(zhì)的種類可能為矢車菊素及矢車菊素半乳糖苷[15]。
薄層板在紫外燈照射下,條帶中出現(xiàn)了Rf值為0.07,呈現(xiàn)亮黃色的斑點,而在可見光下此斑點呈現(xiàn)無色,推測可能為二氫黃酮醇類物質(zhì);同時還觀測到了Rf值為0.66,呈現(xiàn)淡藍色的新斑點,推測可能為黃烷酮類物質(zhì);而可見光下顯示為淺紅色的斑點在紫外光下為暗橙色,進一步驗證了該物質(zhì)為花青苷類物質(zhì)[7]。
將薄層板用氨氣熏蒸后,在可見光下顯現(xiàn)淺紅色的斑點變?yōu)樗{色?;ㄇ嘬疹愇镔|(zhì)酸性條件下呈亮紅色,堿性條件下呈藍色。因此,結(jié)合自然光下和紫外燈照射下薄層層析的結(jié)果,可以判斷萃取液中含有花青苷類物質(zhì)矢車菊素和矢車菊素半乳糖苷[16]。
2.3.1 葉片中的色素組成
高效液相色譜對雞爪槭各時期葉片花青苷提取液檢測結(jié)果顯示,520 nm下檢測到在保留時間18.56 min處有吸收峰出現(xiàn),對照標準品,鑒定為矢車菊半乳糖苷,同時還檢測到微弱的矢車菊素、矮牽牛素、槲皮素的吸收峰(表2)。對比紫外及薄層層析結(jié)果,可以確定矢車菊素半乳糖苷是雞爪槭葉片中的主要花色苷。
雞爪槭各時期葉片花青素萃取液檢測結(jié)果顯示,在520 nm下,矢車菊素半乳糖苷的信號強度減弱,而矢車菊素的信號強度增強,原因是矢車菊素衍生糖苷只含有矢車菊素半乳糖苷一種,矢車菊素半乳糖苷水解為矢車菊素而質(zhì)量分數(shù)下降,表現(xiàn)為信號強度下降。
雞爪槭各時期葉片花青苷提取液在280 nm下的檢測結(jié)果顯示,檢測到的吸收峰與表1中編號4到13的這10種標準品出峰時間一致,結(jié)合薄層和紫外檢測結(jié)果,可以判斷出以下單體酚的存在(表2)。
表2 標準品保留時間及標準曲線
2.3.2 葉片中的色素變化
雞爪槭葉片各變色時期單體酚質(zhì)量分數(shù)計算結(jié)果如表3,將13種單體酚質(zhì)量分數(shù)與葉片發(fā)育時期做顯著性分析,可知矢車菊素、矢車菊素半乳糖苷、綠原酸、對香豆酸、楊梅素與葉片發(fā)育時期有顯著相關性,其余單體酚則是有極顯著相關性。矢車菊素半乳糖苷質(zhì)量分數(shù)的變化趨勢為從芽葉期到綠葉期,矢車菊素半乳糖苷的質(zhì)量分數(shù)快速降低,從3 509.51 mg·kg-1降低到46.88 mg·kg-1;從綠葉期開始,質(zhì)量分數(shù)大幅升高,直到紅葉期質(zhì)量分數(shù)達到最大值3 541.11 mg·kg-1。矢車菊素質(zhì)量分數(shù)的變化趨勢與矢車菊素半乳糖苷一致;同屬花青素的矮牽牛素,質(zhì)量分數(shù)在整個葉片發(fā)育時期變化幅度不大;其他檢測到的單體酚中,兒茶素的質(zhì)量分數(shù)從芽葉期到展葉期增加,展葉期到大綠期降低,隨后增加,紅葉期質(zhì)量分數(shù)最高;綠原酸質(zhì)量分數(shù)從芽葉期到展葉期增加,展葉期到初葉期降低,初葉期到小綠期增加,小綠期到綠葉期降低,綠葉期到紅葉期大幅增加,紅葉期質(zhì)量分數(shù)最高;表兒茶素、香豆酸和楊梅素的質(zhì)量分數(shù)都在展葉期增加到了最大值,隨后質(zhì)量分數(shù)降低,從綠葉期到紅葉期質(zhì)量分數(shù)又有所增加;二氫楊梅酮的質(zhì)量分數(shù)呈現(xiàn)先降低后增加如此往復的變化趨勢,紅葉期質(zhì)量分數(shù)最高;蘆丁質(zhì)量分數(shù)從芽葉期到小綠期增加,小綠期到綠葉期降低,到了紅葉期再增加到最高;對香豆酸的質(zhì)量分數(shù)從芽葉期到展葉期增加,展葉期到大綠期降低,大綠期到綠葉期增加,綠葉期到紅葉期降低;根皮苷的質(zhì)量分數(shù),從芽葉期到展葉期增加,從展葉期到大綠期降低,大綠期到紅葉期增加;槲皮素的質(zhì)量分數(shù)從芽葉期到展葉期降低,從展葉期到初葉期增加,初葉期到綠葉期降低,綠葉期到紅葉期增加,紅葉期質(zhì)量分數(shù)最高。
表3 不同葉片發(fā)育時期單體酚質(zhì)量分數(shù)的變化 mg·kg-1
總花青苷質(zhì)量分數(shù)和葉綠素質(zhì)量分數(shù)的比值變化趨勢,從芽葉期到綠葉期,比值依次為1.89、0.77、0.31、0.28、0.15和0.13,可以看出比值下降,且僅在芽葉期這個比值大于1;綠葉期到紅葉期,二者比值驟然上升到3.32,且達到了最大值。
pH值檢測結(jié)果表明,雞爪槭葉片發(fā)育的各個時期細胞液的pH值分別為5.30、5.40、5.20、5.20、5.50、5.40和5.40,當pH值為5.20~5.50時,pH值與各時期葉綠素和總花青苷質(zhì)量分數(shù)的相關系數(shù)分別為0.34和0.04,且相關性不顯著。
高效液相色譜檢測結(jié)果顯示,可以導致雞爪槭葉片呈現(xiàn)紅色的花青素/苷有矢車菊素、矢車菊素半乳糖苷及矮牽牛素,但是在薄層層析檢測中,花青素萃取液中沒有觀測到矮牽牛素和矢車菊素半乳糖苷的斑點,高效液相色譜分析,矮牽牛素在各變色時期中最高質(zhì)量分數(shù)僅為365.80 mg·kg-1,而矢車菊素半乳糖苷的最高質(zhì)量分數(shù)是矮牽牛素最高質(zhì)量分數(shù)的9.68倍,據(jù)此推斷矮牽牛素未觀察到斑點的原因可能是質(zhì)量分數(shù)過低,也可能是顯色情況肉眼無法觀測[14]。在花青素萃取液中,觀察到矢車菊素卻沒有觀察到矢車菊素半乳糖苷的顯色斑點,原因很可能是大量矢車菊素半乳糖苷水解為矢車菊素,使得矢車菊素質(zhì)量分數(shù)明顯增加而顯示斑點;花青苷提取液中觀察到了矢車菊素和矢車菊素半乳糖苷的兩個斑點,這可能是因為矢車菊素半乳糖苷的不完全水解,增加了矢車菊素的質(zhì)量分數(shù),使得兩者同時存在。
紫外分光光度計光度檢測和高效液相色譜單體酚質(zhì)量分數(shù)計算結(jié)果顯示,單體酚質(zhì)量分數(shù)和雞爪槭葉片發(fā)育時期顯著相關,從芽葉期到初葉期葉綠素質(zhì)量分數(shù)變化幅度極小,幾乎呈水平趨勢,而矢車菊素半乳糖苷質(zhì)量分數(shù)急劇下降,從3 509.51 mg·kg-1降到379.49 mg·kg-1,此時,雞爪槭葉色從鮮紅色轉(zhuǎn)變成淺紅色,紅色逐漸變淺,矢車菊素半乳糖苷質(zhì)量分數(shù)急劇下降是葉色變化的主要原因;初葉期到綠葉期,葉綠素的質(zhì)量分數(shù)從1 283.56 mg·kg-1逐步增加,在綠葉期達到最高值3 215.91 mg·kg-1,而矢車菊素半乳糖苷質(zhì)量分數(shù)從379.49 mg·kg-1下降到最低值46.88 mg·kg-1,雞爪槭葉片從淺紅色轉(zhuǎn)變?yōu)樯罹G色,此段時間葉色轉(zhuǎn)變是葉綠素大量積累和花青苷質(zhì)量分數(shù)降低共同作用的結(jié)果;綠葉期是雞爪槭變色期中持續(xù)時間最長的時間段,從6月下旬到9月下旬,大約3個月,綠葉期到紅葉期,葉綠素質(zhì)量分數(shù)由最高值3 215.91 mg·kg-1下跌到最低值1 257.39 mg·kg-1,矢車菊素半乳糖苷的質(zhì)量分數(shù)則是從最低值46.88 mg·kg-1上升到最高值3 541.11 mg·kg-1,葉色由深綠轉(zhuǎn)變?yōu)樽霞t,這個時期葉色急劇變化是葉綠素和矢車菊素半乳糖苷相互作用的結(jié)果。從總花青苷和葉綠素的質(zhì)量分數(shù)比變化趨勢看,在兩者比值大于1的芽葉期和紅葉期,綠色互補效應弱,葉片呈現(xiàn)紅色;而在其他時期,比值都小于1,綠色互補效應強,葉片呈現(xiàn)出不同程度的綠色,從展葉期到綠葉期比值越來越小,雞爪槭葉片的顏色越來越綠,由此可見,二者的比值是決定葉色的關鍵因素。
植物葉片的顏色是自身的遺傳因子和外界環(huán)境共同作用的結(jié)果,葉色表達不僅與色素的種類、質(zhì)量分數(shù)和分布有關,葉片內(nèi)部的pH值同是影響葉色的重要因素之一?;ㄉ盏姆€(wěn)定性受到pH值很大影響,隨著pH值的升高,穩(wěn)定性降低[17]。而本試驗中,雞爪槭不同葉片發(fā)育時期pH值基本穩(wěn)定,與總花青苷質(zhì)量分數(shù)間相關性弱,說明其葉色變化與pH值無關,是色素分配的結(jié)果。在酸性pH值下,矢車菊素半乳糖苷的顏色應為亮紅色[18],而葉片顏色在其質(zhì)量分數(shù)最高的紅葉期呈紫紅色,導致這種現(xiàn)象的原因可能是大量葉綠素的存在,矢車菊素半乳糖苷的亮紅色與葉綠素的綠色為互補色,二者質(zhì)量分數(shù)相互作用,且矢車菊素及其衍生糖苷占主導地位,導致雞爪槭葉片呈現(xiàn)紫紅色。
除了葉綠素、矢車菊素、矢車菊素半乳糖苷和矮牽牛素以外,葉色呈現(xiàn)紅色,其他色素起到了輔助作用,包括類胡蘿卜素類、黃酮醇類(蘆丁、楊梅素、槲皮素)、黃烷酮類(兒茶素、表兒茶素)、酚酸類(綠原酸、香豆酸、對香豆酸)、二氫黃酮醇類(二氫楊梅素)、根皮苷[19-20]。
[1]王慧娟,趙秀山,孟月娥,等.彩葉植物及其在園林中的應用[J].河南農(nóng)業(yè)科學,2004(11):70-72.
[2]楊兵強.彩色葉樹種在園林景觀設計中的應用研究[D].楊凌:西北農(nóng)林科技大學,2013.
[3]榮立蘋,李倩中,李淑順,等.雞爪槭黃色品種葉片轉(zhuǎn)色期生理變化[J].西北農(nóng)業(yè)學報,2012,21(1):187-191.
[4]黃可,王小德,柳翼飛,等.紅楓春季葉色變化與色素含量的相關性[J].浙江農(nóng)林大學學報,2012,29(5):734-738.
[5]楚愛香,張要戰(zhàn),王萌萌.四種槭樹屬(Acer)植物秋色葉變化與色素含量和可溶性糖的關系[J].江西農(nóng)業(yè)大學學報,2013,35(1):108-111.
[6]高東菊,張鳳娥,仲肇森,等.血紅雞爪槭紅色素提取及穩(wěn)定性[J].東北林業(yè)大學學報,2013,41(5):105-108.
[7]Li Houhua,F(xiàn)lachowsky H,F(xiàn)ischer T C,et al.Maize Lc transcription factor enhances biosynthesis of anthocyanins,distinct proanthocyanidins and phenylpropanoids in apple(Malus domestica Borkh.)[J].Planta,2007,226(5):1243-1254.
[8]高俊鳳.植物生理學實驗技術(shù)[M].西安:世界圖書出版公司,2000.
[9]Fuleki T,F(xiàn)raneis F J.Quantitative methods for anthocyanins.2.Detemrination of total anthocyanins and degradation index for cranberry juice[J].Food Sci,1968,33:78-82.
[10]Harborne J B.Classes and functions of secondary products from plants[M].London:Imperial College Press,1999:1-25.
[11]Harborne J B,Williams C A.Advances in flavonoid research since 1992[J].Phytochemistry,2000,55(6):481-504.
[12]周文彬,邱保勝.植物細胞內(nèi)pH值的測定[J].植物生理學通訊,2004,40(6):724-728.
[13]Harborne J B.Spectral methods of characterizing anthocyanins[J].Biochemical,1958,70(1):22-28.
[14]李玲.五種紅色葉植物葉片色素分析[D].楊凌:西北農(nóng)林科技大學,2013.
[15]徐淵金,杜琪珍.花色苷分離鑒定方法及其生物活性[J].食品與發(fā)酵工業(yè),2006,32(3):67-72.
[16]李玲,李厚華,王亞杰,等.紫葉小檗葉片色素成分分析[J].東北林業(yè)大學學報,2013,41(7):58-62.
[17]Harborne J B.The flavonoids:Advances in research since 1986[M].New York:Chapman&Hall,1994.
[18]Chalker Scott L.Environment significance of anthocyanin in plant stress response[J].Photochem Photobiol,1999,70(1):1-9.
[19]安田·齊.花色之謎[M].張承志,佟麗,譯,北京:中國林業(yè)出版社,1989.
[20]Manetas Y.Why some leaves are anthocyanic and why some anthocyanic leaves are red[J].Flora,2006,201(3):163-177.