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        熒光定量PCR檢測(cè)高致病性豬藍(lán)耳病的實(shí)踐

        2015-02-27 11:07:47雷金虎
        中國(guó)畜牧獸醫(yī)文摘 2015年4期
        關(guān)鍵詞:離心機(jī)耳病致病性

        雷金虎

        (湖南省洞口縣畜牧水產(chǎn)局石江鎮(zhèn)動(dòng)物防疫站,湖南邵陽(yáng) 422000)

        熒光定量PCR檢測(cè)高致病性豬藍(lán)耳病的實(shí)踐

        雷金虎

        (湖南省洞口縣畜牧水產(chǎn)局石江鎮(zhèn)動(dòng)物防疫站,湖南邵陽(yáng) 422000)

        應(yīng)用PCR方法對(duì)湖南省邵陽(yáng)市10個(gè)生豬養(yǎng)殖基地的120份樣品(血液樣品100份,組織病料10份),以及16個(gè)規(guī)模豬樣的200份樣品(血液樣品162份,組織病料38份)逐步開(kāi)展了豬藍(lán)耳病檢測(cè),檢測(cè)結(jié)果為陰性,即表明在豬群中沒(méi)有發(fā)生豬健康帶毒以及隱性感染的情況。

        熒光定量PCR 高致病性豬藍(lán)耳病 檢測(cè) 應(yīng)用

        高致病性豬藍(lán)耳病是由呼吸與繁殖綜合征病毒變異株所引起的急性高致死性疫病。仔豬發(fā)病率可達(dá)100%、患病仔豬死亡率在60%以上,患病母豬流產(chǎn),對(duì)養(yǎng)豬業(yè)危害較大。高致病性豬藍(lán)耳病已經(jīng)引起了相關(guān)部門(mén)及養(yǎng)豬業(yè)從業(yè)者的高度重視,并通過(guò)各種手段對(duì)其開(kāi)展了一定的防治。使用PCR熒光方式對(duì)該類(lèi)病癥進(jìn)行了試驗(yàn)性的檢測(cè),認(rèn)真總結(jié)檢測(cè)經(jīng)驗(yàn),希望對(duì)同行有所幫助。

        1 材料與方法

        1.1 試驗(yàn)儀器

        生物安全柜、熒光PCR儀以及高速冷凍離心機(jī)。

        1.2 試劑

        病毒RNA提取盒以及熒光RT-PCR檢測(cè)試劑盒。

        1.3 實(shí)驗(yàn)材料

        來(lái)自湖南省邵陽(yáng)市16個(gè)生豬養(yǎng)殖區(qū)域以及20個(gè)規(guī)?;i場(chǎng)的淋巴結(jié)、脾等組織以及血液樣品。

        1.4 操作方式

        1.4.1 樣本處理

        對(duì)于血液樣品,我們需要將其通過(guò)離心機(jī)離心2 min,并取100 μl的血清同300 μl混合搖勻。之后,再取0.5 g的組織樣品將其加入pH值為7.2、1.5 ml的PBS,并在研磨之后將其通過(guò)離心機(jī)離心2 min,取離心完畢100 μl的上清液加入300 μl,變形液混合搖勻。

        1.4.2 模板制備

        在此環(huán)節(jié)中,我們需要先取一定數(shù)量經(jīng)過(guò)DEPC處理完畢的離心管,并向其中加入30μL的處理樣品以及醋酸鈉溶液,經(jīng)過(guò)反復(fù)顛倒、搖勻之后,將其通過(guò)離心機(jī)以高速離心15 min,并對(duì)搖勻之后的混合液取其上層清液降入300 μl的異丙醇后搖勻,將其放置在液氮中。3 min后,我們則可以將其取出并放在室內(nèi),在其融化之后再將其通過(guò)離心機(jī)離心20 min,并在混勻之后向其中加入1 ml量的乙醇,搖勻之后以真空方式將其抽干15 min,最后再向其中加入10 μLRNA酶抑制劑同離子水的混合液,將其放置在零下25℃的環(huán)境中留存后用。

        1.5 擴(kuò)增試劑準(zhǔn)備

        根據(jù)我們本次試驗(yàn)所需要的反應(yīng)管總數(shù),我們則需要對(duì)溶液中所具有的試劑球數(shù)進(jìn)行計(jì)算,并在每一個(gè)試劑球上都需要對(duì)其施加0.5 μl的taq酶以及30 μl球溶液。而在冰上試劑的溶解方面,我們則需要對(duì)其以較輕的力度進(jìn)行叩擊,使其能夠以充分的方式混勻,并避免出現(xiàn)旋渦振蕩情況。在此過(guò)程中,我們也需要對(duì)所使用的不同級(jí)聯(lián)工具進(jìn)行細(xì)致的計(jì)算,并將其中加入經(jīng)過(guò)DEPC水處理的1.5 ml溶液到離心管中,在混合充分之后使用離心機(jī)對(duì)其離心10 s,之后再向其中加入5μl樣本并將其放置到對(duì)照管中,且在管蓋封閉之后將其放到熒光PCR儀器中。

        2 結(jié)果分析

        2.1 判定標(biāo)準(zhǔn)

        如果經(jīng)過(guò)檢測(cè),發(fā)現(xiàn)樣本所具有的Ct值在35以下,且其發(fā)展曲線呈現(xiàn)出一種較為明顯的增長(zhǎng)期,我們則可以將其判定為陽(yáng)性;如果經(jīng)過(guò)檢測(cè)發(fā)現(xiàn)樣本所具有的Ct值在35~40之間,并在重復(fù)檢測(cè)時(shí)檢測(cè)值依然處于該區(qū)間內(nèi)、曲線具有較為明顯的增長(zhǎng)期,我們也可以將該種情況判定為陽(yáng)性。而如果我們經(jīng)過(guò)檢測(cè)發(fā)現(xiàn)樣本所具有的Ct值大于40或者根本就檢測(cè)不到Ct值,則可以將其判定為陰性。

        2.2 敏感性試驗(yàn)

        對(duì)于部分一直患有藍(lán)耳病、表現(xiàn)為陽(yáng)性的樣本來(lái)說(shuō),我們需要通過(guò)紫外分光光度法對(duì)其濃度進(jìn)行測(cè)試。經(jīng)過(guò)初步檢測(cè)后,發(fā)現(xiàn)濃度為4.87×109,且在對(duì)其進(jìn)行梯度稀釋10倍后,依然能夠檢測(cè)到其濃度為10-7,這也充分顯示出了我們所使用PCR熒光定量方式所具有的較高靈敏度。

        2.3 特異性試驗(yàn)

        在設(shè)定為空白對(duì)照以及非靶 DNA的情況下,我們對(duì)PCR熒光方式所具有的特異性進(jìn)行了檢測(cè),得出檢測(cè)結(jié)果為陰性。檢測(cè)結(jié)果如下圖所示:

        圖1 特異性試驗(yàn)

        2.4 穩(wěn)定性與重復(fù)性試驗(yàn)

        為了能夠?qū)Ρ敬卧囼?yàn)所具有的穩(wěn)定性進(jìn)行試驗(yàn),我們分別使用熒光PCR法對(duì)相關(guān)樣品進(jìn)行了3次重復(fù)性試驗(yàn),并得出R2=0.986013,這充分說(shuō)明了在檢測(cè)Ct值小于33的情況下,試驗(yàn)結(jié)果具有較好的線性關(guān)系,即對(duì)我們所使用的檢測(cè)方式穩(wěn)定性進(jìn)行了驗(yàn)證。結(jié)論如下所示:

        圖2 重復(fù)性試驗(yàn)

        2.5 樣品檢測(cè)

        在對(duì)熒光檢測(cè)方式所具有的穩(wěn)定性以及精確性效果進(jìn)行驗(yàn)證之后,我們則以這種熒光PCR的方式對(duì)本地區(qū)16個(gè)養(yǎng)殖區(qū)域120份樣品以及20個(gè)豬場(chǎng)所具有的200樣品進(jìn)行了檢測(cè),所獲得的結(jié)果均為陰性,該檢測(cè)結(jié)果充分表明了湖南省邵陽(yáng)市豬群養(yǎng)殖中不存在患有豬藍(lán)耳病的健康帶毒以及隱形感染情況。

        3 討論

        (1)目前,我國(guó)對(duì)于豬藍(lán)耳病的主要診斷方式有酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)、間接免疫熒光試驗(yàn)以及病毒中和試驗(yàn)等等,但是無(wú)論是上述哪一種方式,都具有靈敏度較低、特異性不強(qiáng)以及操作難度大等問(wèn)題,而對(duì)于普通的PCR技術(shù)而言,雖然其近年來(lái)在技術(shù)方面已經(jīng)獲得了較大的提升,但是所具有的檢測(cè)精度依然不能夠使人滿(mǎn)意,檢測(cè)出假陽(yáng)性的情況依然存在,且在檢測(cè)的過(guò)程中很容易伴隨著EB污染物的污染,對(duì)于食用者的健康具有較大的安全隱患。而通過(guò)TaqMan熒光PCR技術(shù)的應(yīng)用,則因?yàn)槠渌哂械奶禺愋?、?zhǔn)確性、敏感性以及快速性等特點(diǎn)使其在我國(guó)目前的藍(lán)耳病檢測(cè)中獲得了較為廣泛的應(yīng)用。

        (2)近年來(lái),高致病性豬藍(lán)耳病在我國(guó)的很多地區(qū)都出現(xiàn)了較多的患病病例,并對(duì)當(dāng)?shù)氐娜庳i養(yǎng)殖造成了較大的影響。面對(duì)此種情況,就需要我們能夠加大原有的地區(qū)病原學(xué)監(jiān)測(cè)力度,并做好相關(guān)的病情預(yù)警工作,最大程度避免疫情出現(xiàn)。而在我們通過(guò)多種方式做好該類(lèi)病癥的免疫操作之外,還需要做好豬群的抗體檢測(cè),以此幫助我們對(duì)該病癥的抗體發(fā)展規(guī)律進(jìn)行更好的了解與掌握,進(jìn)而在對(duì)原有免疫程序進(jìn)行不斷完善的基礎(chǔ)上保障防控效果。

        (3)通過(guò)我們本次熒光定量PCR檢測(cè)豬藍(lán)耳病的一系列實(shí)驗(yàn),可以說(shuō)已經(jīng)對(duì)此種藍(lán)耳病的檢測(cè)方式以及檢測(cè)效果都具有了較好的掌握。而在這個(gè)基礎(chǔ)上,我們也需要通過(guò)該技術(shù)的應(yīng)用對(duì)更多領(lǐng)域,如,豬偽狂犬病、禽流感以及豬瘟等疫病類(lèi)型進(jìn)行檢測(cè),以此在不斷使熒光定量PCR檢測(cè)方式所具有的檢測(cè)領(lǐng)域以及檢測(cè)范圍得到擴(kuò)大的同時(shí),為我國(guó)的畜牧業(yè)發(fā)展提供堅(jiān)實(shí)的技術(shù)保障。

        [1] 黃偉,陳進(jìn)會(huì),顏其貴,等.PRRS檢測(cè)技術(shù)的研究進(jìn)展[J].廣東畜牧獸醫(yī)科技,2010,(2):3-6.

        [2] 姚紅艷,吳飛,劉芳,等.高致病性豬藍(lán)耳病血液常規(guī)研究[J].貴州畜牧獸醫(yī),2010,(2):3-4.

        [3] 朱連德,王愛(ài)國(guó),王冬.進(jìn)口豬藍(lán)耳病活疫苗在中國(guó)豬場(chǎng)免疫預(yù)防效果研究[J].豬業(yè)科學(xué),2010,(6):83-85.

        [4] 楊俊,楊?lèi)?ài)梅,周望平.豬藍(lán)耳病的RT-PCR檢測(cè)及其防治建議[J].湖南畜牧獸醫(yī),2010,(6):55-57.

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