張 琳 富澤龍 馮 銳
放射治療是治療惡性腫瘤的重要手段,隨著放療的普遍應用,放射性皮膚損傷給很多腫瘤患者帶來額外的痛苦。傳統(tǒng)治療方法治療放射性皮膚損傷包括藥物治療和外科手術治療,效果均不理想,使其成為整形外科的難愈性疾病之一。皮膚組織工程是解決這一難題的新希望。文獻研究證實,脂肪干細胞( adipose-derived stem cells,ASCs) 可減輕炎性反應,促進肉芽組織沉積,促進再上皮化、血管重建及創(chuàng)面收縮,并可分化為表皮細胞、血管內皮細胞,因而可促進創(chuàng)面愈合[1~5]。本研究以人來源ASCs 作為種子細胞,以人來源PRP 作為載體,觀察ASCs-PRP 復合物對裸鼠放射性皮膚損傷創(chuàng)面愈合的影響。
1.實驗動物及主要試劑、儀器:8 周齡健康雌性裸鼠24只,體重250 ~300g,由中國醫(yī)學科學院放射醫(yī)學研究所實驗動物中心提供。高糖DMEM 培養(yǎng)基、胎牛血清( 美國GIBCO公司) ; Ⅰ型膠原酶、胰酶( 美國Sigma 公司) ; CD29、CD44、CD105 熒光標記抗體( 美國BD Bioscience 公司) 。脂肪組織:人脂肪組織來源于健康成年人腹部及股部吸脂手術抽吸物。
2.ASCs 的提取、培養(yǎng)及鑒定: 筆者采用稍加改動的Zuk法通過脂肪抽吸手術獲得健康成年人脂肪組織: 首先用D -hanks 液洗滌,去除脂肪抽吸物中的血細胞和麻醉藥,然后0.2%Ⅱ型膠原酶消化1h,之后用D-Hanks 再次洗滌2 遍,去除其中殘留的膠原酶[6]。1200r/min 離心5min,離心后收集細胞。將細胞以2 ×106個/毫升的密度接種于T75 中,培養(yǎng)液含58% DMEM/F12 +40%MCDB-201、2%胎牛血清、10ng/ml EGF、10ng/ml PDGF,1 ×胰島素-轉鐵蛋白-亞硒酸( insulin-transferrin-selenium,ITS) 、1 ×亞油酸-牛血清白蛋白( linoleic acid-bovine serum albumin,LA -BSA) 、50μmol/L β巰基乙醇、2mmol/L L-谷氨酰胺、100μg/ml 青霉素和100U/ml 硫酸鏈霉素( 傳代培養(yǎng)時不用雙抗) 的培養(yǎng)基中,在溫度37℃、濕度95%、CO2濃度為5%的培養(yǎng)箱培養(yǎng)。24h 后將培養(yǎng)液及其中未貼壁的細胞吸出,重新種到新的T75 中,原瓶更換新鮮培養(yǎng)液,以后每3 天換液。當細胞培養(yǎng)至80% ~90%融合時,用0.25%胰蛋白酶-0.02%EDTA 常規(guī)消化,細胞按照1∶3 進行傳代。取第3 代的ASCs 以2 ×104/ml 的密度接種于T25 培養(yǎng)瓶,12h 后,將培養(yǎng)基改為脂肪誘導培養(yǎng)基( 高糖DMEM 培養(yǎng)基中加入10% FBS、1 × 10-6mol/L 地塞米松、50μg/ml 抗壞血酸和100μg/ml IBMX) ,每隔2 天半量換液1次。倒置顯微鏡下觀察脂肪滴的形成( 圖1) 。
圖1 ASCs 的培養(yǎng)及鑒定
3.PRP 的制備: 大量研究證明,二次離心法提取的PRP 質量最高,其在臨床上的應用也最廣,因此筆者采用Landesberg 二次離心法[7]。(1) 將外周血20ml 抽入含抗凝劑(100g/L 枸櫞酸鈉,1ml) 的無菌試管中。(2) 第1 次離心,離心后血液分為3 層:上層為貧血小板血漿,主要成分是纖維蛋白原等;中層為高度濃縮的血小板,下層為紅細胞。吸取全部的上清液直達交界面下3mm( 上層、中層以及鄰近中層的部分紅細胞) ,將其移入另一無菌試管中。( 3) 再次離心,離心后血漿分為3 層:下層為少許紅細胞,上層為貧血小板血漿,兩層之間便為富血小板血漿層。吸棄上清液,留適量血漿以容納并稀釋高濃度的血小板。( 4) 將PRP 與凝血酶( 1ml 10%CaCl2溶液+1000U 凝血酶) 按9∶1比例混勻,常溫放置1h后,置于4℃冰箱內過夜。次日以5000r/min 速度離心10min,吸取上清液,0.22μm 濾器過濾除菌,置-80℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>
4.實驗分組及方法:根據(jù)修復方法不同,將24 只裸鼠隨機分為4 組,每組6 只。以鉛磚遮蔽創(chuàng)面以外部位,在裸鼠背部行直徑為2cm 的圓形區(qū)域的60Co 照射,照射條件:劑量20Gy,照射時間368s,劑量率326.1r/min。照射后即刻在裸鼠背部制備直徑為1cm 的皮膚全層缺損創(chuàng)面( 圖2) 。模型完成后即刻,各組分別予以以下干預:ACSs+PRP 組創(chuàng)面滴加ASCs -PRP 復合物0.2ml( 含ACSs 1 × 107個細胞/毫升) ,ASCs 組創(chuàng)面滴加ASCs 0.2ml( 含ACSs 1 ×107個細胞/毫升) ,PRP 組創(chuàng)面滴加PRP 凝膠0.2ml,空白組創(chuàng)面不加干預,直接覆蓋敷料。術后7、14 天各創(chuàng)面愈合情況,并拍照,計算愈合曲線; 組織學觀察炎性反應,免疫組織化學染色計數(shù)CD31 陽性細胞的分布情況。
5.統(tǒng)計學方法:應用SPSS 13.0 統(tǒng)計軟件,計數(shù)資料以均數(shù)±標準差(±s) 表示,行多因素方差分析。以P <0.05 為差異有統(tǒng)計學意義。
1.創(chuàng)面大體觀察: ASCs + PRP 組: 術后7 天,創(chuàng)面滲出不多,較為干燥,肉芽組織新鮮,創(chuàng)面約60%愈合;術后11 天,創(chuàng)面完全愈合,新生上皮外觀與正常皮膚相似,但顏色較周圍皮膚稍紅,稍顯凹陷。PRP組:術后7 天,創(chuàng)面有少量滲出,邊緣開始有新生上皮爬行,肉芽組織新鮮,色鮮紅;術后14 天,創(chuàng)面滲出不多,約70%愈合,但愈合質量不如實驗組。ASCs 組:術后7 天,創(chuàng)面少量滲出,創(chuàng)面可見皮島形成; 術后14天,創(chuàng)面少量滲出,沒有完全愈合??瞻捉M( sham 組) :術后7 天,創(chuàng)面可見滲出,散在皮島形成,肉芽組織新鮮,色紅,觸之易出血。術后14 天,創(chuàng)面沒有完全愈合。Image J 軟件測定各時點殘留創(chuàng)面面積并繪制創(chuàng)面愈合曲線。如圖3 所示,ASCs +PRP 組愈合速度最快,與其余組差異均有統(tǒng)計學意義( P <0.05),PRP 及ASCs 組愈合速度次之,與sham 組差異有統(tǒng)計學意義( P <0.05) ,而PRP 組與ASCs 組差異無統(tǒng)計學意義( P >0.05) 。
2.HE 染色觀察創(chuàng)面炎性反應:各組分別術后14天行創(chuàng)面組織切片,行HE 染色( 圖4) 。ASCs +PRP組創(chuàng)面愈合良好,創(chuàng)面新生血管密度較大,可見炎性細胞浸潤。PRP 組: 仍有部分創(chuàng)面未能愈合,肉芽組織生長良好,新生血管密度較為豐富,肉芽組織及創(chuàng)面表面可見較多炎性細胞浸潤。ASCs 組: 部分創(chuàng)面未能愈合,肉芽組織中新生血管數(shù)量較為豐富,并可見較多炎性細胞浸潤。sham 組: 相當一部分創(chuàng)面未能愈合,存在較為明顯的炎性細胞浸潤,肉芽組織中可見新生血管。
圖2 創(chuàng)面模型制作及大體觀察
圖3 創(chuàng)面愈合曲線
3.CD31 染色觀察創(chuàng)面微血管密度: 術后第14天,各組創(chuàng)面CD31 染色如圖5 所示。ASCs +PRP 組與其他3 組比較,差異有統(tǒng)計學意義( P <0. 05) ,ASCs 組差異與PRP 組無統(tǒng)計學意義,但均與sham組比較差異有統(tǒng)計學意義( P <0.05,圖6) 。
圖4 術后第14 天,各組HE 染色( ×100)
圖5 術后第14 天,各組CD31 染色( ×100)
圖6 術后第14 天,各組微血管計數(shù)
放射性皮膚損傷早期表現(xiàn)為急性放射性皮膚炎癥,這是一種以紅斑、水腫、表皮增厚、瘙癢及脫屑為特征的急性炎癥。急性炎癥期過后,逐漸進入慢性纖維化時期,這一時期以組織彈性下降,創(chuàng)面遷延不愈,色素加深,甚至形成放射性壞死和放射性潰瘍。放射損傷的本質在于創(chuàng)面的微血管數(shù)量減少和纖維化的增加。伴隨分子生物學的不斷發(fā)展,關于放射性皮膚損傷的機制研究,已經從形態(tài)學和病理生理學水平逐步深入到了蛋白和基因等分子水平。目前研究認為,輻射產生的活性氧和自由基可以損傷上皮細胞基底層,使基底層細胞分裂、增殖以及向表層的遷移和角化受阻,導致皮膚損傷,并延緩創(chuàng)面修復過程;大劑量射線照射可引起p53 和Bax 蛋白高表達,導致皮膚組織內正常細胞凋亡,血管內皮細胞、成纖維細胞及表皮細胞數(shù)量減少,影響新生血管形成、創(chuàng)緣收縮以及創(chuàng)面表皮化過程抑制,因而造成肉芽組織形成不良、創(chuàng)面延遲愈合[8]。研究發(fā)現(xiàn),放射線照射可抑制局部血管內皮細胞及成纖維細胞等合成與分泌VEGF、TGF-β 及BFGF 等細胞因子,而這些細胞是創(chuàng)面愈合重要的始動因素和促進因素[9]。放射性潰瘍一旦發(fā)生,則難以愈合,如不及時治療,局部感染加上放射效應的作用,極易引起創(chuàng)面加深,可能繼發(fā)骨壞死、骨髓炎、急性出血、全身感染等危急重癥。傳統(tǒng)治療方法包括藥物治療和外科手術治療,效果均不理想,已成為整形外科的難治性疾病之一。皮膚組織工程是解決這一難題的新的希望。文獻研究證實,ASCs 可減輕炎性反應,促進肉芽組織沉積,促進再上皮化、血管重建及創(chuàng)面收縮,并可分化為表皮細胞、血管內皮細胞,因而可促進創(chuàng)面愈合[1~5]。但是,缺乏有效的細胞輸入方法和微環(huán)境中缺血和炎性反應均可導致細胞存活和繁殖率的下降[10~12]。
PRP 是通過離心全血而得到的含有高濃度血小板的血漿。PRP 中含有多種生長因子,如血小板衍生生長因子( platelet derivedgrowth factor,PDGF) ,轉化生長因子β( TGF -β1、TGF -β2) ,胰島素樣生長因子1( insulin-like growth factor -1,IGF -1) 、表皮生長因子( EGF) 和血管內皮細胞生長因子( vascular endothelial growth factor,VEGF) 等[13,14]。1984 年,Okuda 等[15]于首次PRP 可以促進骨缺損修復,此后PRP 一直是再生醫(yī)學領域的研究熱點,RP 已經被應用于骨科、普通外科、心胸外科和整形美容等多種學科。
本實驗將ASCs 作為種子細胞,以PRP 作為載體,觀察ASCs-PRP 復合物對放射性復合損傷創(chuàng)面愈合的影響。ASCs + PRP 組創(chuàng)面愈合速度最快,且最終愈合效果亦最佳。單純ASCs 組與單純PRP 組愈合速度快于空白對照組,這與既往研究結果相符,說明ASCs 與PRP 均具有很好的促傷口愈合作用,但本次實驗結果未能發(fā)現(xiàn)二者之間差異有統(tǒng)計學意義。在創(chuàng)面血管新生方面,ASCs +PRP 組新生微血管數(shù)量明顯較其余各組豐富,而單純ASCs 組及單純PRP組的微血管數(shù)量多于空白對照組,這也與其他研究結果相符和。研究表明,單純ASCs 與單純PRP 均具有促血管新生,促創(chuàng)面修復作用,但二者合用,效果更好。分析其原因,單用ASCs 效果欠佳可能與放射性皮膚損傷局部,促血管新生、促創(chuàng)面修復因子數(shù)量減少有關,因而影響細胞治療的效果,而PRP 的加入,恰恰矯正了局部微環(huán)境的不足,可以促進ASCs 在創(chuàng)面局部的存活和繁殖,并進一步發(fā)揮其自身的促旁分泌作用。而PRP 本身的膠體性質,理論上也有助于減少細胞在注射過程中的損傷。
本研究結果顯示,將ASCs 與PRP 合用,具有良好的促進放射性皮膚損傷創(chuàng)面修復的作用,為創(chuàng)面修復的臨床應用提供了新的思路。但這種促修復作用的具體機制如何,除了促進血管新生外,有無其他促進途徑,細胞因子和基因表現(xiàn)層次的變化,都需要進一步研究。
1 Kim WS,Park BS,Sung JH. The wound - healing and antioxidant effects of adipose-derived stem cells[J]. Expert Opinion on Biological Therapy,2009,9(7) :879 -887
2 Maharlooei MK,Bagheri M,Solhjou Z,et al. Adipose tissue derived mesenchymal stem cell ( AD-MSC) promotes skin wound healing in diabetic rats[J].Diabetes Res Clin Pract,2011,93(2) :228 -234
3 Teng M,Huang Y,Zhang H. Application of stems cells in wound healing-an update[J]. Wound Repair and Regeneration,2014,22(2) :151 -160
4 You HJ,Han SK. Cell therapy for wound healing[J]. Journal of Korean Medical Science,2014,29(3) :311 -319
5 楊超,邢新,徐達圓,等. 脂肪干細胞-透明質酸復合物促進放射性復合損傷創(chuàng)面愈合的初步研究[J]. 中國修復重建外科雜志,2011,25(12) :1499 -1503
6 Zuk PA,Zhu M,Mizuno H,et al. Multilineage cells from human adipose tissue: implications for cell-based therapies[J]. Tissue engineering,2001,7(2) :211 -228
7 Landesberg R,Roy M,Glickman RS. Quantification of growth factor levels using a simplified method of platelet-rich plasma gel preparation[J]. J Oral Maxillofac Surg,2000,58(3) :297 -300
8 Dormand EL,Banwell PE,Goodacre TE. Radiotherapy and wound healing[J]. International wound journal,2005,2(2) : 112 -127
9 Morgan K. Radiotherapy - induced skin reactions: prevention and cure[J]. Br J Nurs,2014,23(16) :S24,S26 -32
10 Heikh AY,Lin SA,Cao F,et al.Molecular imaging of bone marrow mononuclear cell homing and engraftment in ischemic myocardium[J]. Stem Cells,2007,25(10) :2677 -2684
11 Hofmann M,Wollert KC,Meyer GP,et al. Monitoring of bone marrow cell homing into the infarcted human myocardium[J]. Circulation,2005,111(17) :2198 -2202
12 Segers VF,Lee RT. Stem-cell therapy for cardiac disease[J]. Nature,2008,451(7181) :937 -942
13 Weibrich G,Kleis WKG,Hafner G,et al. Growth factor levels in platelet -rich plasma and correlations with donor age,sex and platelet count[J]. Craniomaxillofac Surg,2002,30(2) : 97 -102
14 Marx RE,Carlson ER,Eichstaedt RM,et al. Platelet-rich plasma:Growth factor enhancement for bone grafts[J]. Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol Endod,1998,85(6) :638 -646
15 Okuda K,Kawase T,Momose M,et al. Platelet -rich plasma contains high levels of platelet derived growth factor and transforming growth factor-beta and modulates the proliferation of periodontally related cells in vitro[J]. J Periodontol,2003,74(6) :849 -857