樊景鳳，明紅霞，王小慧，李洪波，石峰，3，穆貴強(qiáng)，趙順

(1.國(guó)家海洋環(huán)境監(jiān)測(cè)中心，遼寧 大連 116023；2. 國(guó)家海洋局近岸海域生態(tài)環(huán)境重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，遼寧 大連 116023；3. 南開大學(xué) 環(huán)境科學(xué)與工程學(xué)院，天津 300071)

北黃海微表層細(xì)菌豐度與可培養(yǎng)細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)分析

樊景鳳1，2，明紅霞1，2，王小慧1，2，李洪波1，2，石峰1，2，3，穆貴強(qiáng)1，2，趙順1，2

(1.國(guó)家海洋環(huán)境監(jiān)測(cè)中心，遼寧 大連 116023；2. 國(guó)家海洋局近岸海域生態(tài)環(huán)境重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，遼寧 大連 116023；3. 南開大學(xué) 環(huán)境科學(xué)與工程學(xué)院，天津 300071)

為分析海洋微表層這一特殊生境中的細(xì)菌類群，于2010—2011年4個(gè)航次對(duì)北黃海微表層和次表層海水中的總菌豐度、可培養(yǎng)細(xì)菌豐度和群落結(jié)構(gòu)進(jìn)行了分析。采用流式細(xì)胞儀測(cè)定總菌豐度，平板計(jì)數(shù)法測(cè)定可培養(yǎng)細(xì)菌豐度，PCR-16S rDNA分析可培養(yǎng)細(xì)菌的群落結(jié)構(gòu)。結(jié)果表明，調(diào)查海域微表層海水總菌均值為1.76×106cell/mL，次表層海水總菌均值為1.07×106cell/mL?？膳囵B(yǎng)細(xì)菌豐度范圍是1.00×102～1.70×106CFU/mL，微表層和次表層可培養(yǎng)細(xì)菌所占總菌數(shù)量的百分比分別為13.05%和0.45%。微表層對(duì)總菌的富集因子(EF)均值為2.02，可培養(yǎng)細(xì)菌的EF均值為74.16。PCR-16S rDNA序列分析結(jié)果表明，該海域可培養(yǎng)細(xì)菌分屬變形菌門(Proteobacteria)(94.34%)、厚壁菌門(Firmicutes)(1.89%)、擬桿菌門(Bacteroidetes)(1.89%)和放線菌門(Actinobacteria)(1.89%)4個(gè)類群。本研究初步發(fā)現(xiàn)，微表層對(duì)細(xì)菌具有較強(qiáng)的聚集作用，尤其對(duì)可培養(yǎng)細(xì)菌聚集作用更為明顯。微表層中可培養(yǎng)細(xì)菌的群落結(jié)構(gòu)與次表層有所不同，其種類豐富，來(lái)源和功能多樣。由此可見，微表層獨(dú)特的生境成就了其獨(dú)特的微生物類群，其生態(tài)功能有待于進(jìn)一步研究。

微表層；次表層；總菌；可培養(yǎng)細(xì)菌；群落結(jié)構(gòu)

1 引言

微表層(surface microlayer，SML)是指大氣和水體之間位于水-氣交換界面的厚度為1～1 000 μm的微生境，為加以區(qū)分，將微表層以下0.5 m內(nèi)的水層定義為次表層(subsurface layer，Sub-)[1]。微表層被認(rèn)為是大氣沉降物的匯，相對(duì)于次表層，其物理、化學(xué)和生物過(guò)程明顯不同[2]。棲息在微表層水中的微生物受到有利因素(如高濃度的無(wú)機(jī)和有機(jī)營(yíng)養(yǎng))和不利因素(強(qiáng)烈光照、高濃度的重金屬、有機(jī)污染、溫度和鹽度波動(dòng)較大)的雙重作用，形成了一個(gè)含有獨(dú)特微生物物種和種群的特殊類群[3]。因此，海洋微表層研究已成為眾多化學(xué)家、物理學(xué)家和生物學(xué)家所矚目的學(xué)科前沿，國(guó)際上有關(guān)海洋微表層的研究已較豐富，有關(guān)微表層化學(xué)元素的富集作用、群落結(jié)構(gòu)、細(xì)菌活性等研究逐漸被重視，研究?jī)?nèi)容正由微表層的物理化學(xué)性質(zhì)轉(zhuǎn)向微生物生態(tài)學(xué)方向發(fā)展[4—7]。我國(guó)學(xué)者已經(jīng)在廈門港、渤海、熱帶太平洋海域、珠江口、南沙群島等多個(gè)海域開展了微表層營(yíng)養(yǎng)鹽、有機(jī)物、痕量金屬、化學(xué)性質(zhì)等方面的系統(tǒng)研究[8—11]，然而，到目前為止，有關(guān)微表層微生物生態(tài)學(xué)的研究尚未見報(bào)道。

不同的營(yíng)養(yǎng)體系微表層的性質(zhì)差別很大，如貧營(yíng)養(yǎng)水域較富營(yíng)養(yǎng)水域微表層對(duì)有機(jī)物濃度、微生物及其活性有相當(dāng)大的富集[12]，而且，污染區(qū)環(huán)境中微表層的細(xì)菌豐度和種類不同于非污染區(qū)[13]。由于北黃海具有特殊的地理位置和獨(dú)特的冷水團(tuán)現(xiàn)象，其海洋生態(tài)系統(tǒng)中的生物組成和群落結(jié)構(gòu)穩(wěn)定特征受到人們的廣泛關(guān)注。而微生物群落作為該海域生態(tài)系統(tǒng)的重要組成部分，其群落結(jié)構(gòu)和分布特征等相關(guān)研究亟待開展?；诖?，本研究選取北黃海8個(gè)站位，在分析其微表層和次表層海水總菌和可培養(yǎng)細(xì)菌分布特征的基礎(chǔ)上，構(gòu)建可培養(yǎng)細(xì)菌16S rDNA系統(tǒng)發(fā)育樹，探討其可培養(yǎng)細(xì)菌群落的結(jié)構(gòu)和分布特征，該研究將從一個(gè)全新的視角深層次理解該水域的生態(tài)系統(tǒng)結(jié)構(gòu)和功能，也可為我國(guó)近海微生物資源及生態(tài)環(huán)境的研究提供理論依據(jù)。

2 材料與方法

2.1 樣品采集

分別于2010年6月、8月和2011年3月和7月采集北黃海8個(gè)站位(圖1)的微表層和次表層海水，樣品采集時(shí)晴天，風(fēng)速小于3級(jí)。

微表層水樣采用玻璃板法[13]收集：采樣前用75%的乙醇(體積比)洗滌玻璃板(規(guī)格為30 cm×40 cm×5 cm)和橡膠棒，而后用蒸餾水沖洗干凈。采樣時(shí)將平板玻璃垂直浸入水中，然后以20 cm/s左右的速度提起，用硅橡膠刮片自板的兩面將水膜刮下，將微表層水樣收集到滅菌的水樣瓶中，約50 mL。為減少由蒸發(fā)帶來(lái)的誤差，玻璃板暴露在空氣的時(shí)間要少于10 s。

次表層水樣使用采水器收集，用采水器在海平面下0.5 m處采集水樣200 mL，保存于4℃，運(yùn)回實(shí)驗(yàn)室分析。

2.2 總菌計(jì)數(shù)

總菌用流式細(xì)胞儀進(jìn)行計(jì)數(shù)[14]，樣品室溫融化后，用市售的GenefinderTM染料(10 000∶1)染色，室溫下黑暗處理10～15 min。用流式細(xì)胞儀(BD Aria I)，在藍(lán)色激發(fā)光488 nm下(15 mW氬激光)，用綠色濾光片[波長(zhǎng)(530±15)nm]測(cè)量。閾值設(shè)在綠色熒光FITC上，加入1 μm 標(biāo)準(zhǔn)微球做內(nèi)參。

2.3 可培養(yǎng)細(xì)菌計(jì)數(shù)及革蘭氏染色

采用平板培養(yǎng)法計(jì)數(shù)微表層和次表層海水中的可培養(yǎng)細(xì)菌總數(shù)。在取樣后的1 h內(nèi)接種于海洋瓊脂(Marine Agar)2216E(Difco)培養(yǎng)基，每個(gè)水樣設(shè)2個(gè)稀釋度，各3個(gè)重復(fù)，每個(gè)稀釋度取100 μL樣品均勻涂布，所有培養(yǎng)基于25℃倒置培養(yǎng)1～2周后記菌落數(shù)。

對(duì)純化后的細(xì)菌進(jìn)行革蘭氏染色，并對(duì)所獲得細(xì)菌進(jìn)行初步篩選和鑒定。

2.4 可培養(yǎng)細(xì)菌的分子鑒定

2.4.1 模板制備

根據(jù)菌落形態(tài)、大小、顏色、透明度、邊緣是否光滑和菌落是否濕潤(rùn)等特征挑選菌落，然后用TIANGEN細(xì)菌基因組提取試劑盒提取總DNA，作為聚合酶鏈反應(yīng)(PCR)的模板。

2.4.2 細(xì)菌16S rDNA的PCR擴(kuò)增

選擇細(xì)菌16S rDNA通用引物27 F(5′-AGA GTT TGA TCC TGG CTC AG-3′)和1 492 R(5′-GGT TAC CTT GTT ACG ACT T-3′)進(jìn)行序列擴(kuò)增，擴(kuò)增產(chǎn)物片段約1 460 bp。反應(yīng)采用50 μL體系，同時(shí)設(shè)置陰性對(duì)照，反應(yīng)條件參照前期研究[15]。電泳檢測(cè)后，將PCR產(chǎn)物送寶生物工程(大連)有限公司進(jìn)行序列測(cè)定。

2.5 數(shù)據(jù)處理與分析

2.5.1 流式數(shù)據(jù)處理

利用Win MDI 2.9軟件對(duì)測(cè)定結(jié)果進(jìn)行分析。以488 nm激光光源為激發(fā)光，以FITC、SSC、PerCP-Cy5-5-H和PE-H為坐標(biāo)進(jìn)行分析。FITC(異硫氰酸熒光素)被488 nm激發(fā)，在530 nm發(fā)出綠色熒光；SSC(Side light Scatter)為側(cè)散射光，其強(qiáng)度與細(xì)胞的表面和內(nèi)部結(jié)構(gòu)及其大小和形狀有關(guān)，有時(shí)專指粒度信號(hào)；PE(藻紅蛋白)在575 nm激發(fā)呈現(xiàn)橙黃色，PerCP(多甲藻黃素葉綠素蛋白)在675 nm激發(fā)發(fā)出深紅色光。

2.5.2 構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹

為進(jìn)一步弄清北黃?？膳囵B(yǎng)細(xì)菌的多樣性和群落結(jié)構(gòu)，將測(cè)序結(jié)果提交Genbank進(jìn)行檢索，利用BLAST功能(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/)進(jìn)行DNA序列匹配，得到各序列與已知細(xì)菌序列同源性的比對(duì)結(jié)果，采用clustalx1.83和MEGA 3.1對(duì)測(cè)得的DNA序列進(jìn)行聚類分析，用鄰接法(Neighbor Joining，NJ)構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)生樹，進(jìn)行系統(tǒng)發(fā)育分析。

3 結(jié)果

3.1 北黃海表層和微表層海水中總菌數(shù)量分布

經(jīng)流式細(xì)胞儀測(cè)得海水中總菌的數(shù)量，最小值出現(xiàn)在2010年6月份B1站位的次表層，為1.75×105cell/mL；最大值出現(xiàn)在2011年7月份BY5站位的微表層，為4.57×106cell/mL；各時(shí)段各站位微表層海水中的總菌數(shù)均高于翌表層海水中的總菌數(shù)。微表層總菌數(shù)量在2010年8月份達(dá)到最高值，翌年3月份降低，7月份又回升；次表層2010年6月、8月和來(lái)年3月總菌數(shù)量變化不大，翌年7月份升高，達(dá)到4個(gè)月份的最高值(圖2)。

圖2 微表層(a)和次表層(b)海水中總菌數(shù)量變化趨勢(shì)Fig.2 The change trend of the total bacteria number in surface microlayer(a) and subsurface layer(b) seawater

3.2 北黃海微表層和次表層海水中可培養(yǎng)細(xì)菌的數(shù)量分布

各站位海水中可培養(yǎng)細(xì)菌的數(shù)量變化范圍為1.00×102～1.70×106CFU/mL，最小值出現(xiàn)在2011年7月份B1站位的次表層，最大值出現(xiàn)在2010年8月份B3站位的微表層；微表層和次表層可培養(yǎng)細(xì)菌數(shù)最大值均出現(xiàn)在2010年8月份的航次中，微表層可培養(yǎng)細(xì)菌數(shù)量高于次表層2個(gè)數(shù)量級(jí)；除離岸最遠(yuǎn)的A3站位微表層外，其他站位可培養(yǎng)細(xì)菌數(shù)量在2010年8月份達(dá)到高峰后，在翌年3月份降低，繼而7月份又有所回升(圖3)。整體而言，微表層和次表層海水中可培養(yǎng)細(xì)菌的數(shù)量變化受溫度影響較大。

圖3 微表層(a)和次表層(b)可培養(yǎng)細(xì)菌數(shù)量變化趨勢(shì)Fig.3 The change trend of the culturable bacteria number in surface microlayer(a) and subsurface layer(b) seawater

3.3 可培養(yǎng)百分比

本研究中，4個(gè)航次采集的海水可培養(yǎng)細(xì)菌占總菌數(shù)量的百分比(可培養(yǎng)百分比)范圍為0.01%～86.79%，最小值出現(xiàn)在2011年7月份的B1站位的次表層，最大值出現(xiàn)在2011年3月份的A3站位的微表層；各時(shí)段各站位微表層海水中可培養(yǎng)細(xì)菌占總菌數(shù)量的百分比均高于次表層(表1)。

表1 微表層和次表層海水中可培養(yǎng)細(xì)菌占總菌數(shù)量的百分比Tab.1 The percentage of the number of culturable bacteria to total bacteria number in surface microlayer and subsurface layer seawater

3.4 富集因子變化

用富集因子(Enrichment Factor，EF)來(lái)評(píng)價(jià)微表層的富集作用。富集因子是指某一成分在微表層的濃度與它在次表層的濃度比值。在本研究中，微表層總菌的EF變化范圍較小，為0.40～5.76，可培養(yǎng)細(xì)菌的EF變化范圍較大，為0.59～500.00；2010年6月、2010年8月、2011年3月和2011年7月微表層可培養(yǎng)細(xì)菌的平均富集因子分別為43.41、139.54、91.02和22.67，其中2010年8月航次微表層可培養(yǎng)細(xì)菌的富集因子最高(表2)。

表2 微表層海水中總菌和可培養(yǎng)細(xì)菌的富集因子Tab.2 EF of the total bacteria and culturable bacteria in surface microlayer seawater

3.5 序列比對(duì)及系統(tǒng)發(fā)育分析

共分離出164株細(xì)菌，通過(guò)菌落形態(tài)、革蘭氏染色、生理生化鑒定，最后確定53株細(xì)菌進(jìn)行16S rDNA序列分析。53株細(xì)菌中，微表層中36株，次表層中17株。大部分細(xì)菌的16S rDNA序列與數(shù)據(jù)庫(kù)中已知序列有較高相似性(不小于98%)(表3)。選取親緣關(guān)系較近的菌種，采用NJ法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(見圖4)。

表3 可培養(yǎng)細(xì)菌16S rDNA測(cè)序結(jié)果與GenBank中序列的比對(duì)結(jié)果Tab.3 The results of comparision between the culturable bacteria 16S rDNA sequences and the known sequences in Genbank

續(xù)表3

續(xù)表3

圖4 可培養(yǎng)細(xì)菌系統(tǒng)發(fā)育樹Fig.4 The phylogenetic tree of the culturable bacteria▲：微表層中分離到的細(xì)菌；■：次表層中分離到的細(xì)菌；○：數(shù)據(jù)庫(kù)中已知序列▲：The isolated bacteria from surface microlayer；■：The isolated bacteria from subsurface layer；○：The known sequences in the Genbank

基于16S rDNA序列構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹，分析結(jié)果表明，53株細(xì)菌所測(cè)序列分屬于變形菌門(Proteobacteria)(94.34%)、厚壁菌門(Firmicutes)(1.89%)、擬桿菌門(Bacteroidetes)(1.89%)和放線菌門(Actinobacteria)(1.89%)4個(gè)類群。在微表層中，變形菌門占97.2%(34/36)，其中γ-變形菌綱(Gammaproteobacteria)占91.7%(33/36)，α-變形菌綱(Alphaproteobacteria)占5.6%(2/36)。此外，擬桿菌門占2.8%(1/36)；在次表層中，變形菌門占88.2%(15/17)，其中γ-變形菌綱占58.9%(10/17)，α-變形菌綱占29.4%(5/17)，此外，厚壁菌門占5.9%(1/17)，放線菌門占5.9%(1/17)。該海域所分離的53株菌中，γ-變形菌綱分屬于9個(gè)屬：5株屬于交替單胞菌屬(Alteromonas)、4株屬于海桿菌屬(Marinobacter)、1株屬于Idiomarina、19株屬于假交替單胞菌屬(Pseudoalteromonas)、2株屬于Cobetia、3株屬于鹽單胞菌屬(Halomonas)、1株屬于不動(dòng)桿菌屬(Acinetobacter)、6株屬于冷桿菌屬(Psychrobacter) 、2株屬于弧菌屬(Vibrio)。α-變形菌綱的細(xì)菌分屬于3個(gè)屬：4株分屬于副球菌屬(Paracoccus)、2株屬于赤桿菌屬(Erythrobacter)、1株屬于Maricaulis。

4 討論

比較微表層和次表層海水中總菌和可培養(yǎng)細(xì)菌數(shù)量可知，微表層對(duì)細(xì)菌具有一定的聚集作用。微表層海水中的總菌EF值較小，且變化范圍較小，其原因可能是由于顆粒黏附細(xì)菌(particle-attached bacteria)無(wú)法被流式細(xì)胞儀識(shí)別并計(jì)數(shù)，但這類細(xì)菌在總細(xì)菌中占有相當(dāng)大的比例[16]。與總菌相比，微表層海水中可培養(yǎng)細(xì)菌EF值較大，且變化范圍也較大，其原因可能是在細(xì)菌培養(yǎng)計(jì)數(shù)前先進(jìn)行細(xì)菌細(xì)胞分散，計(jì)數(shù)誤差相對(duì)較小，從另一側(cè)面也反映了微表層可能對(duì)可培養(yǎng)細(xì)菌具有很好的聚集作用，其獨(dú)特的生境更利于其生存。微表層中可培養(yǎng)細(xì)菌富集的原因可以解釋如下：(1)微表層中高濃度的溶解和膠體有機(jī)化合物為細(xì)菌的生長(zhǎng)提供了能量與營(yíng)養(yǎng)[14]；(2)微表層中有“保護(hù)劑”來(lái)應(yīng)對(duì)脅迫因子，如太陽(yáng)輻射、高溫或鹽度變化、毒性有機(jī)物和重金屬等脅迫[2，17]。

海洋微表層與大氣直接接觸，容易受到太陽(yáng)輻射的影響，具備富集大量有機(jī)與無(wú)機(jī)物質(zhì)等獨(dú)特的自身?xiàng)l件，形成微表層獨(dú)特的微生境，其細(xì)菌多樣性較次表層更為豐富，并且有著更高的細(xì)菌活性[18]。在北黃海海域的微表層海水中發(fā)現(xiàn)某些菌株與硫酸鹽還原菌、環(huán)硝銨降解菌、石油降解菌、抗紫外菌、烴降解菌、咔唑降解菌、反硝化細(xì)菌、多環(huán)芳烴降解菌、嗜冷菌、嗜鹽菌等菌屬有很高的相似性，且分離到與產(chǎn)胞外酶菌、產(chǎn)蛋白酶菌、產(chǎn)幾丁質(zhì)酶菌、產(chǎn)多飽和脂肪酸嗜鹽菌等菌屬相似性高的菌株，而這些細(xì)菌在次表層海水中沒(méi)有被分離到，表明海洋微表層這一特殊生境中存在大量與生物地球化學(xué)循環(huán)相關(guān)的微生物。

在研究微表層海水細(xì)菌多樣性的同時(shí)，可探討其生物來(lái)源的問(wèn)題，為微表層特殊細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)形成的原因提供一定的參考價(jià)值。本研究通過(guò)鑒定發(fā)現(xiàn)，微表層細(xì)菌來(lái)源多樣化，相似性細(xì)菌分離于海洋、土壤、海底山、鹽沼平原、海藻碎屑、紅樹林根部以及海產(chǎn)品等多種環(huán)境。目前有兩種說(shuō)法：一是認(rèn)為微表層中生物體的源是由物理過(guò)程引起的生物體的向上傳送而不是由原位發(fā)展起來(lái)的[19]；另一種觀點(diǎn)是微表層的微生物主要是外來(lái)的，微表層復(fù)雜多變的動(dòng)態(tài)特征導(dǎo)致了外源生物的引入[5]。由本研究對(duì)可培養(yǎng)細(xì)菌的群落結(jié)構(gòu)初步分析可知，北黃海微表層可培養(yǎng)細(xì)菌的來(lái)源更傾向于外源輸入。整體而言，微表層中各種細(xì)菌的親緣關(guān)系更為接近，次表層亦是，而微表層與次表層細(xì)菌總體的的親緣關(guān)系要遠(yuǎn)一些。

5 結(jié)論

北黃海微表層對(duì)細(xì)菌具有較強(qiáng)的富集作用，微表層海水中的細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)獨(dú)特；在微表層中，除1株細(xì)菌屬于擬桿菌門外，分離得到的細(xì)菌都屬于變形菌門，并且大部分屬于變形菌門中的γ-變形菌綱；北黃海微表層中可培養(yǎng)細(xì)菌主要為外源輸入。

[1] Liss P S，Duce R A. The sea surface and global change[M]. Cambridge: Cambridge University Press，1997: 10-35.

[2] Liss P S，Duce R A. The sea surface and global change[M]. Cambridge: Cambridge University Press，2005: 1-23.

[3] Maki J S. Neuston microbiology: life at the air-water interface[M]//Bitton G，Ed. Encyclopedia of Environmental Microbiology. New York: Wiley，2002: 2133-2144.

[4] Stolle C，Labrenz M，Meeske C，et al. Bacterioneuston community structure in the Southern Baltic Sea and its dependence on meteorological conditions[J]. Appl Environ Microb，2011，77(11): 3726-3733.

[5] Seliskar D M，Gallagher J L. Macrophyte disturbance alters aquatic surface microlayer structure, metabolism, and fate[J]. Oecologia，2014，174(3): 1007-1020.

[6] Sun Lu，Li Xin，Hede T，et al. Molecular dynamics simulations reveal the assembly mechanism of polysaccharides in marine aerosols[J]. Phys Chem Chem Phys，2014，16(47): 25935-25941.

[7] Taylor J D，Cottingham S D，Billinge J，et al. Seasonal microbial community dynamics correlate with phytoplankton-derived polysaccharides in surface coastal waters[J]. ISME J，2014，8(1): 245-248.

[8] Ya Miaolei，Wang Xinhong，Wu Yuling，et al. Enrichment and partitioning of polycyclic aromatic hydrocarbons in the sea surface microlayer and subsurface water along the coast of Xiamen Island, China[J]. Mar Pollut Bull，2014，78(1/2): 110-117.

[9] 王文濤，楊桂朋，于娟，等. 夏季黃海和渤海微表層和次表層海水中營(yíng)養(yǎng)鹽的分布特征[J]. 環(huán)境科學(xué)，2013，34(8): 2983-2991．

Wang Wentao，Yang Guipeng，Yu Juan，et al. Distributional characteristics of nutrients in the sea-surface microlayer and subsurface water of the Bohai and Yellow Sea in Summer[J]. Environmental Science，2013，34(8): 2983-2991.

[10] 陳金斯，李飛泳，朱卓洪. 珠江口水域微表層中的痕量金屬[J]. 熱帶海洋，1994，13(3): 25-30.

Chen Jinsi，Li Feiyong，Zhu Zhuohong. Trace metals in the surface micro-layer of Zhujiang River Mouth[J]. Tropic Oceanology，1994，13(3): 25-30.

[11] 于志剛，張正斌，劉蓮生. 海洋微表層化學(xué)研究進(jìn)展[J]. 海洋環(huán)境科學(xué)，2000，19(3): 75-80.

Yu Zhigang，Zhang Zhengbin，Liu Liansheng. Study progresses on sea surface microlayer[J]. Marine Environmental Science，2000，19(3): 75-80.

[12] Vila-Costa M，Barberan A，Auguet J C，et al. Bacterial and archaeal community structure in the surface microlayer of high mountain lakes examined under two atmospheric aerosol loading scenarios[J]. FEMS Microbiol Ecol，2013，84(2): 387-397.

[13] Agogué H，Casamayor E O，Joux F，et al. Comparison of samplers for the biological characterization of the sea surface microlayer[J]. Limnol Oceanogr Meth，2004，2(7): 213-225.

[14] Marie D，Partensky F，Jacquet S，et al. Enumeration and cell cycle analysis of natural populations of marine picoplankton by flow cytometry using the nucleic acid stain SYBR Green I[J]. Appl Environ Microbiol，1997，63(1): 188-193.

[15] 樊景鳳，張?zhí)m，明紅霞，等. 北戴河近岸沉積物中微生物16S rDNA的PCR-RFLP分析[J]. 海洋環(huán)境科學(xué)，2008，27(5): 409-413.

Fan Jingfeng，Zhang Lan，Ming Hongxia，et al. PCR-RFLP analysis of bacteria 16S rDNA in marine sediment of Beidaihe[J]. Marine Environmental Science，2008，27(5): 409-413.

[16] Harvey R W，Young L Y. Enrichment and association of bacteria and particulates in salt marsh surface water[J]. Appl Environ Microbiol，1980，39(4): 894-899.

[17] Song Y K，Hong S H，Jang M，et al. Large accumulation of micro-sized synthetic polymer particles in the sea surface microlayer[J].Environ Sci Technol，2014，48(16): 9014-9021.

[18] Wurl O，Miller L，R?ttgers R，et al. The distribution and fate of surface-active substances in the sea-surface microlayer and water column[J]. Mar Chem，2009，115(1/2): 1-9.

[19] Joux F，Agogué H，Obernosterer I，et al. Microbial community structure in the sea surface microlayer at two contrasting coastal sites in the northwestern mediterranean sea[J]. Aquat Microb Ecol，2006，42(1): 91-104.

Analysis on the bacterial abundance and community structure of culturable bacteria in the surface microlayer of the northern Yellow Sea

Fan Jingfeng1，2，Ming Hongxia1，2，Wang Xiaohui1，2，Li Hongbo1，2，Shi Feng1，2，Mu Guiqiang1，2，Zhao Shun1，2

(1.NationalMarineEnvironmentalMonitoringCenter，Dalian116023，China; 2.KeyLaboratoryofCoastalEcologyandEnvironmentofStateOceanicAdministration，Dalian116023，China; 3.CollegeofEnvironmentalScienceandEngineering,NankaiUniversity，Tianjin300071)

In order to learn the bacterial taxa in unique microhabitat of the surface microalyer，the total numbers of bacteria，culturable bacteria and its community structure were investigated from the surface microlayer and subsurface layer of the northern Yellow Sea. Seawater samples were collected from four sampling times，2010-2011. The total number of bacteria was determined by flow cytometry. The number of culturable bacteria was determined by the plate count method. PCR-16S rDNA and sequencing analysis were used to analyze the features of community structure. The results showed that the average numbers of total bacteria are 1.76×106CFU/mL in the surface microlayer and 1.07×106cell/mL in subsurface layer，respectively. The number of culturable bacteria ranged from 1.00×102CFU/mL to 1.70×106CFU/mL. The percentage that culturable bacteria occupies in total bacteria were 13.05% and 0.45% in the surface microlayer and subsurface layer，respectively. The enrich factor (EF) of total and cultural bacteria were 2.02 and 74.16 in the surface microlayer. The results showed that the culturable bacteria in this region was attached to four phylogenetic communities: Proteobacteria (94.34%)、Firmicutes (1.89%)、Bacteroidetes (1.89%) and Actinobacteria (1.89%). This research preliminary presented that the surface microlayer in seawater has an high enrichment effect on bacteria，especially for culturable bacteria. The bacterial communities in the surface microlayer and subsurface layer was different，which reflected in wide range of species，diversity of source and function. Therefore，the unique bacterial communities of the surface microlayer is generated towing to its special microhabitat. The ecological function of microorganisms in surface microlayer need to be further understood in the future.

surface microlayer; subsurface layer; total bacteria; culturable bacteria; community structure

2015-03-23；

2015-07-22。

海洋公益性行業(yè)科研專項(xiàng)(201105021，201305030，201405007)；“全球變化與海氣相互作用”專項(xiàng)(GASI-03-01-02-05)。

樊景鳳(1972—)，女，黑龍江省明水縣人，博士，研究員，主要從事海洋微生物學(xué)與海洋生態(tài)學(xué)研究。E-mail：jffan@nmemc.org.cn

10.3969/j.issn.0253-4193.2015.10.012

Q938.8

A

0253-4193(2015)10-0123-10

樊景鳳，明紅霞，王小慧，等. 北黃海微表層細(xì)菌豐度與可培養(yǎng)細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)分析[J].海洋學(xué)報(bào)，2015，37(10)：123—132，

Fan Jingfeng，Ming Hongxia，Wang Xiaohui，et al. Analysis on the bacterial abundance and community structure of culturable bacteria in the surface microlayer of the northern Yellow Sea[J]. Haiyang Xuebao，2015，37(10)：123—132，doi：10.3969/j.issn.0253-4193.2015.10.012