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        一株協(xié)助寄主植物緩解鎘脅迫的芽孢桿菌篩選及其耐鎘機(jī)制

        2015-01-01 02:14:34閆海霞汪家璐紀(jì)麗蓮王新風(fēng)
        關(guān)鍵詞:寄主植物內(nèi)生培養(yǎng)液

        楊 威, 閆海霞, 汪家璐, 紀(jì)麗蓮, 王新風(fēng)

        (1.淮陰師范學(xué)院生命科學(xué)學(xué)院/江蘇省環(huán)洪澤湖生態(tài)農(nóng)業(yè)生物技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇 淮安 223300;2.淮安市農(nóng)業(yè)技術(shù)推廣中心,江蘇 淮安 223300)

        農(nóng)用土壤是受人類活動(dòng)強(qiáng)烈影響的一類特殊土壤,其質(zhì)量與人類健康密切相關(guān)[1]。土壤污染源主要來自工業(yè)“三廢”和農(nóng)藥、化肥,污染物可通過灌溉水進(jìn)入土壤,也可通過空中的顆粒物(含重金屬和致癌物質(zhì)等)干濕沉降造成土壤污染,隨著時(shí)間的推移,農(nóng)田表層土壤鎘、鉛、銅、鋅等重金屬含量有增加的趨勢[2]。由于農(nóng)作物的吸收作用,重金屬元素從土壤遷移轉(zhuǎn)化到農(nóng)作物根、莖、葉及果實(shí)中去,從而連帶造成農(nóng)作物的重金屬污染。全球每年釋放到環(huán)境中的鎘高達(dá) 3.9×104t[3],而在環(huán)洪澤湖地區(qū)幾種重金屬污染當(dāng)中,鎘要高于其他幾種[4]。如何修復(fù)受到鎘污染的土地和水體是我們急需面對的問題。

        目前,工程修復(fù)、電動(dòng)修復(fù)、電熱修復(fù)、土壤淋洗以及化學(xué)修復(fù)等方法雖然在一定程度上能夠緩解重金屬污染,但是卻存在著一些弊端,如實(shí)施工程量大、投資費(fèi)用高,破壞土體結(jié)構(gòu)造成土壤肥力下降,并且還要對換出的污土進(jìn)行堆放或處理,其中化學(xué)修復(fù)只是改變重金屬的存在形態(tài),并不能徹底根除重金屬,重金屬還有再度活化污染的可能。另外,一些特定植物也可以通過對金屬離子的吸收、揮發(fā)以及穩(wěn)定對重金屬污染進(jìn)行修復(fù)。這種修復(fù)方式雖然效果好、易操作,但是卻只能用于非耕作土壤或水體,對于農(nóng)田重金屬污染依然無能無力[5]。

        利用從自然環(huán)境中分離得到的有益微生物來修復(fù)農(nóng)田及水體的重金屬污染就可以克服這一缺點(diǎn)[6]。受到重金屬污染的土壤,往往富集多種耐重金屬的真菌和細(xì)菌,其通過多種作用方式影響土壤重金屬的毒性[7-8]。如魏本杰等人報(bào)道,產(chǎn)鐵載體細(xì)菌可以活化土壤中的鎘[9]。周小梅等人也發(fā)現(xiàn)了一株具有較強(qiáng)產(chǎn)酸能力的芽孢桿菌,該菌株除對鎘有耐性之外,對鉛、銅等均具有一定耐受性[10]。除此之外,植物內(nèi)生菌作為與植物關(guān)系緊密的重要微生物資源,也在修復(fù)重金屬污染中發(fā)揮著作用。如曹喆等人從重金屬鎘(Cd)超累積植物龍葵中分離到一株能夠去除鎘離子的芽孢桿菌[11]。另外,姜敏等人報(bào)道從重金屬富集植物(大葉相思)與非富集植物(水禾、水稻)中分離到的重金屬抗性真菌均高于根際真菌[12],也說明了內(nèi)生菌在重金屬修復(fù)中的巨大潛力。尋找一種能夠有效降低環(huán)境中鎘離子濃度從而減少農(nóng)作物吸收積累的修復(fù)方式,對于日益嚴(yán)重的耕地重金屬污染來說意義重大。

        本研究擬在離體條件下選擇能夠耐受并且降低環(huán)境中鎘離子濃度的菌株,并進(jìn)行盆栽條件下耐隔菌株的活性評價(jià),初步探討其降低鎘離子濃度的可能機(jī)制,旨在尋找一條降低農(nóng)業(yè)生產(chǎn)中鎘污染危害的途徑。

        1 材料與方法

        1.1 離體條件下菌株耐鎘活性檢測

        從本實(shí)驗(yàn)室菌株資源庫中選擇了183株細(xì)菌,將活化后的菌株接種到含有終濃度為15 mg/L硫酸鎘的LB培養(yǎng)液中,28℃,180 r/min搖床培養(yǎng)24 h,對照組不加硫酸鎘溶液。分別從培養(yǎng)后的培養(yǎng)液中吸取2.0 ml溶液在600 nm下檢測其吸光值,判斷菌株生長情況。另取1.0 ml培養(yǎng)液離心后取上清液,在上清液中分別加入9.0 ml去離子水,轉(zhuǎn)移至50.0 ml小燒杯中,加入濃硝酸1.0 ml,80℃水浴,蒸發(fā)至1.0 ml左右再加入濃硝酸1.0 ml、高氯酸0.5 ml?;靹蚝罄^續(xù)水浴蒸發(fā)至1.0 ml,冷卻,加入4.0 ml去離子水,混勻后利用原子發(fā)射光譜法(ICP)測定其中鎘離子濃度。

        1.2 盆栽條件下耐鎘菌株的活性評價(jià)

        試驗(yàn)共進(jìn)行2批次,所用寄主分別為黃瓜品種新津優(yōu)1號(hào)和辣椒品種大禹牛角王,穴盤育苗,待苗長出3~4片真葉后移栽到溫室盆缽中,每盆1株。盆缽高10 cm,口徑12 cm,每盆裝基質(zhì)400~500 g。溫室條件設(shè)定為30℃,光照時(shí)間16 h,黑暗時(shí)間8 h。

        根據(jù)菌株離體條件下耐鎘活性篩選結(jié)果,選擇培養(yǎng)液中鎘離子濃度下降率最高的5株菌株進(jìn)行2批次溫室試驗(yàn)。其中根圍細(xì)菌4株,編號(hào)分別為H2-1L、H2-22K、H3-11L 和 L5-2L;內(nèi)生菌1 株,編號(hào)為1JN2。每批溫室試驗(yàn)分別設(shè)5個(gè)處理組,處理方式如下:移栽時(shí)用1×109CFU/ml的菌懸液灌根處理,每盆20 ml,移栽7 d后用30 mg/L硫酸鎘灌根處理,每盆20 ml。另設(shè)2個(gè)對照,對照1不接種菌株,移栽7 d后用30 mg/L硫酸鎘灌根處理,每盆20 ml;對照2不接種菌株,正常培養(yǎng)。每組重復(fù)3次,每個(gè)重復(fù)24株植株。

        1.3 植株生理指標(biāo)檢測

        植株移栽后第21 d分別檢測各處理組根長、鮮質(zhì)量、葉綠素含量、根系活力以及葉片相對電導(dǎo)勢。檢測方法參照《植物生理學(xué)實(shí)驗(yàn)指導(dǎo)》[13]。

        每個(gè)處理組隨機(jī)選取植株3株,準(zhǔn)確稱取1 g莖,600℃灰化4 h(干法灰化),1%鹽酸洗脫灰分,去離子水定容至5 ml,利用原子發(fā)射光譜法測定鎘離子濃度。

        1.4 耐鎘菌株的鑒定

        對菌株進(jìn)行革蘭氏染色反應(yīng),并觀察其形態(tài)。采用樹脂型基因組試劑盒(賽百盛有限公司生產(chǎn))提取菌株基因組DNA,以提取的基因組DNA為模板,利用16S通用引物擴(kuò)增其16S rDNA片段并送南京金斯瑞有限公司測序,結(jié)果提交NCBI數(shù)據(jù)庫進(jìn)行比對。結(jié)合比對結(jié)果和菌株形態(tài)對其進(jìn)行鑒定。

        1.5 耐鎘菌株鎘離子耐受機(jī)制

        選擇溫室試驗(yàn)中協(xié)助寄主植物緩解鎘脅迫效果最好的菌株進(jìn)行耐鎘機(jī)制研究。將濃度為1×107CFU/ml的該菌株菌懸液按照1%接種量接入含有3 g/L硫酸鎘的LB培養(yǎng)液中,28℃、180 r/min搖床培養(yǎng),分別在12 h、24 h、36 h和48 h吸取培養(yǎng)液,離心收集菌體,超純水洗脫后用2.5%戊二醛固定,通過掃描電鏡觀察菌株的群體以及單細(xì)胞形態(tài)。以不加鎘離子的處理組作為對照。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 離體條件下菌株耐鎘活性檢測

        183株細(xì)菌中58株在含有15 mg/L Cd2+的LB培養(yǎng)液中培養(yǎng)24 h后OD600大于0.5,說明在外源鎘離子存在的情況下菌株依然能夠正常生長。其中22株菌株培養(yǎng)后溶液中Cd2+濃度下降大于10%,下降最高達(dá)51%。選擇其中5株菌株(H2-1L、H2-22K、H3-11L、1JN2、L5-2L)進(jìn)行盆栽試驗(yàn)評價(jià)其協(xié)助寄主植物耐受鎘脅迫的能力。

        2.2 耐鎘菌株的溫室評價(jià)

        與對照1相比(表1),耐鎘菌株處理組能夠在鎘脅迫下增加黃瓜植株的根長、鮮質(zhì)量、葉綠素含量以及根系活力,其中菌株1JN2和L5-2L增加效果比較明顯,特別是植株鮮質(zhì)量、葉綠素含量以及根系活力3項(xiàng)指標(biāo)。菌株1JN2處理組顯著降低黃瓜植株葉片的相對電導(dǎo)率。

        為了更直接反應(yīng)耐鎘菌株協(xié)助寄主植物緩解鎘脅迫能力,我們檢測了鎘脅迫環(huán)境下寄主植物對于土壤中鎘離子的吸收和積累情況。如表1所示,在缺少耐鎘菌株保護(hù)情況下(對照1),1 g黃瓜莖組織中鎘離子濃度達(dá)到0.1 mg/L,5株耐鎘菌株接種均能在一定程度上減少植物對于基質(zhì)中鎘離子的吸收,降低幅度從13.53%到23.43%。

        表1 耐鎘菌株處理對黃瓜生長指標(biāo)及體內(nèi)鎘積累的影響Table 1 Growth and Cd accumulation in cucumber inoculated with Cd-tolerant bacterial strains

        與對照1相比,菌株1JN2、L5-2L和 H2-22K處理增加了辣椒植株的根長、鮮質(zhì)量、葉綠素含量以及根系活力,特別是菌株1JN2處理,辣椒植株的根長、鮮質(zhì)量、葉綠素含量與正常培養(yǎng)的對照2相當(dāng),而對根系活力的增加效果則顯著高于對照2。菌株H3-11L、1JN2和 L5-2L處理與對照1相比均能夠明顯降低寄主植物葉片的相對電導(dǎo)率,表現(xiàn)出在鎘脅迫條件下對于寄主植物的保護(hù)作用。相比于黃瓜而言,5株耐鎘菌株降低辣椒植株吸收鎘離子的效果更明顯,降低幅度從29.64%到40.39%(表2)。

        綜合2批次溫室盆栽試驗(yàn)結(jié)果,菌株1JN2在鎘脅迫條件下對于寄主植物的綜合保護(hù)效應(yīng)更佳。

        2.3 耐鎘菌株鑒定

        菌株1JN2呈革蘭氏染色反應(yīng)陽性,通過形態(tài)學(xué)與16S rDNA序列比對鑒定為枯草芽孢桿菌(Bacillus subtilis)。

        表2 溫室條件下耐鎘菌株處理對于辣椒生長指標(biāo)及體內(nèi)鎘積累的影響Table 2 Growth and Cd accumulation in pepper inoculated with Cd-tolerant bacterial strains

        2.4 耐鎘菌株的掃描電鏡觀察

        根據(jù)掃描電鏡結(jié)果,與對照組相比,在培養(yǎng)液中加入鎘離子之后,菌株1JN2的胞外多糖黏度增強(qiáng),且洗脫后胞外多糖殘留較多。鎘離子處理組在12 h時(shí)菌體受到明顯損傷,出現(xiàn)外壁內(nèi)陷。但是這種現(xiàn)象從24 h開始有一定程度緩解,菌體開始自我復(fù)原,至48 h,菌體已經(jīng)基本恢復(fù)到原有狀態(tài)(圖1A~1D)。說明此時(shí)菌株已適應(yīng)鎘離子的存在,并且能夠進(jìn)行正常生長代謝。第48 h時(shí),處理組的胞外多糖開始發(fā)生形態(tài)上的變化,由最初的絮狀開始固化,形成片層狀固態(tài)(圖1E)。

        圖1 菌株1JN2在鎘離子處理后群體和單細(xì)胞的形態(tài)Fig.1 The morphology of population and single cell of Cd-treated strain 1JN2

        3 討論

        植物內(nèi)生菌[14]和號(hào)稱植物“第二基因組”[15]的植物根圍細(xì)菌在寄主植物生長過程中發(fā)揮重要作用。這些微生物不僅能夠協(xié)助寄主植物阻止病原菌的入侵[16],為植物生長提供必要的營養(yǎng)[17],還能協(xié)助寄主抗逆,包括抗旱、耐鹽堿以及耐重金屬污染等[18-21]。

        與以往的報(bào)道中發(fā)現(xiàn)內(nèi)生菌在重金屬抗性方面的優(yōu)勢[12,22]類似,本研究篩選出的一株植物內(nèi)生菌1JN2,在離體條件和溫室盆栽試驗(yàn)中均表現(xiàn)出顯著耐鎘活性,并降低植物體內(nèi)鎘離子的吸收累積,且活性顯著高于植物根圍細(xì)菌。該菌株能夠逐漸適應(yīng)鎘脅迫壓力,在處理24 h后開始進(jìn)行菌體的自我復(fù)原。從胞外多糖的形態(tài)來看,推測該菌株可能利用胞外多糖固定環(huán)境中的鎘離子,從而減少寄主植物對于鎘離子的吸收。在前期的研究中我們還發(fā)現(xiàn)菌株1JN2同時(shí)具有產(chǎn)IAA以及多種胞外酶的活性,能夠協(xié)助寄主植物防控土傳病害的侵染[23]。在農(nóng)業(yè)生產(chǎn)環(huán)境不斷惡化的大背景下,該菌株表現(xiàn)出一定的開發(fā)潛力。在今后的研究中,我們將重點(diǎn)研究其耐鎘機(jī)制、發(fā)酵條件優(yōu)化以及劑型開發(fā)等,為農(nóng)業(yè)安全生產(chǎn)提供保障。

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