曲連悅，蔡 爽，姜明燕

(中國醫(yī)科大學(xué) 附屬第一醫(yī)院 藥學(xué)部，遼寧 沈陽 110001)

人重組蛋白胸腺素B10促進卵巢癌細胞系SKOV3凋亡

曲連悅，蔡 爽，姜明燕*

(中國醫(yī)科大學(xué) 附屬第一醫(yī)院 藥學(xué)部，遼寧 沈陽 110001)

β族胸腺素由于具有維持細胞骨架的動態(tài)平衡，促進血管生成、傷口愈合、心肌修復(fù)等多種生物學(xué)功能,并與腫瘤發(fā)生、轉(zhuǎn)移具有密切關(guān)系而倍受關(guān)注。本文研究對象胸腺素B10(thymosinβ 10，Tβ10) 定位于胞內(nèi)，大量文獻證實Tβ10與腫瘤的發(fā)生發(fā)展有關(guān)[1-2]，但在不同類型的腫瘤中它的功能還存在爭議，Tβ10在腫瘤細胞凋亡中所起的作用也鮮有報道。本實驗將在卵巢癌細胞系SKOV3中探索Tβ10對其凋亡的影響及其分子機制。

1 材料與方法

1.1 材料:重組人Tβ10蛋白(Abcam公司)；流式雙染試劑盒(BD公司)；caspase-3活性檢測試劑盒(Haimen公司)；Cell Counting Kit-8? solution(CCK-8)試劑盒(日本同仁公司)；Annexin V-FITC/PI雙染試劑盒(KeyGEN公司)；BAX、BCL-2 抗體(Santa Cruz公司)；RNA提取及Realtime PCR(Takara公司)。

1.2 方法

1.2.1 細胞培養(yǎng)：培養(yǎng)SKOV3細胞使用DMEM 培養(yǎng)基含10%滅活小牛血清。37 ℃,5% CO2的條件下培養(yǎng)，每2天換1次液，并用0.25%的胰蛋白酶消化傳代。

1.2.2 細胞活力檢測：使用CCK-8 檢測細胞的增殖能力。將處于對數(shù)增殖期的SKOV3細胞分成4組，其中1組為對照，加入等體積的PBS,另外3組分別加入0.5、1或2 g/L 3個濃度的Tβ10，24 h后按每孔4×103個/100 μL將各組分別接種于96孔培養(yǎng)板中，待其貼壁后每孔加入10 μL CCK-8 繼續(xù)培養(yǎng)4 h。檢測在450 nm 波長下測定各孔吸光度值，以不含細胞的等體積培養(yǎng)基作對照。

1.2.3 細胞凋亡檢測:使用Annexin V-FITC/PI雙染試劑盒進行細胞凋亡檢測。細胞接種于6孔板內(nèi)，每孔3 mL大約4×105個，實驗組加入Tβ10 1 g/L，對照組加入PBS，24 h后收集細胞。流式細胞儀計數(shù)1萬個細胞，細胞凋亡百分比用CellQuest analysis 軟件計算。

1.2.4 Caspase-3活性檢測:使用caspase-3活性檢測試劑盒。實驗組加入Tβ10 1 g/L,對照組加入等體積的PBS,24 h后兩組細胞在裂解液中裂解, 然后離心10 min,進行蛋白定量。將每組蛋白取30 μg放入96孔板中與caspase-3顯色底物(2 mmol/L)混合，37 ℃孵育2 h。使用酶標(biāo)儀在405 nm處測定吸光度值。

1.2.5 實時定量PCR:收集細胞提取總RNA，反轉(zhuǎn)錄后使用SYBR Green 法進行定量real-time PCR擴增，總體積20 μL。40個循環(huán)退火溫度60 ℃，30 s。

β-actin作為內(nèi)參。引物序列見表1?；蛳鄬Ρ磉_水平計算方式如下ΔCt =Ct 待測基因-Ct 內(nèi)參基因, ΔΔCt=ΔCt實驗組-ΔCt對照組，增加倍數(shù)用如2-ΔΔCt方法計算。每次實驗均做3個重復(fù)孔。

表1 Real-time PCR中使用的引物序列Table 1 Primer sequences

1.2.6 Western blot法檢測蛋白表達：收集細胞并加入裂解液充分裂解，4 ℃ 12 000r/min離心30 min,提取上清。使用總蛋白60 μg，SDS-PAGE凝膠電泳、轉(zhuǎn)印到PVDF上；5%牛血清白蛋白(BSA)室溫封閉2 h，分別與抗BCL-2,抗BAX(1∶300),抗β-actin(1∶500), 4 ℃孵育過夜。分別與對應(yīng)的二抗(1∶2 000)室溫孵育2 h，ECL顯色，結(jié)果經(jīng)自動電泳凝膠成像分析儀采集，進行灰度值測定。

2 結(jié)果

2.1 加入Tβ10后SK0V3細胞的活力變化:SKOV3細胞內(nèi)加入3個濃度的Tβ10后，24 h細胞活性明顯下降(表2)。

表2 不同濃度Tβ10加入SKOV3后細胞活力的變化

*Plt;0.05,**Plt;0.01compared with the 0 g/L concentration group.

2.2 加入Tβ10后SK0V3細胞凋亡百分比的變化:加入1 g/L的Tβ10后，SK0V3的調(diào)亡百分比由5.23%上升至12.34%，Plt;0.01(圖1)。

圖1 胸腺素β10對SKOV3細胞凋亡的影響Fig 1 Effect of thymosin β10 on the apoptosis of SKOV3 cell

2.3 加入Tβ10后SK0V3細胞內(nèi)caspase-3活性的變化：加入1 g/L的Tβ10后，SK0V3中caspase-3的活性由100%增強至287%(Plt;0.01)。

2.4 實時定量PCR檢測SKOV3細胞中凋亡相關(guān)基因mRNA的變化：與凋亡密切相關(guān)基因Bcl-2及BAX檢測結(jié)果顯示，加入1 g/L Tβ10后促進凋亡的BAX的mRNA水平上升，而抑制凋亡的Bcl-2的mRNA表達下降(圖2)。

*Plt;0.01 compared with control圖2 胸腺素β10對SKOV細胞中Bcl-2及Bax mRNA的影響Fig 2 Effect of thymosin β10 on the mRNA level of Bcl-2 and Bax in SKOV3 cell

2.5 蛋白免疫印跡檢測SKOV3細胞中凋亡相關(guān)基因蛋白的變化：加入1 g/L Tβ10后的SKOV3細胞檢測Bcl-2、BAX這兩種蛋白的變化顯示，BAX蛋白表達灰度值由0.09±0.01上調(diào)到0.4±0.16，而Bcl-2表達灰度值由0.63±0.14下降到0.2±0.11(圖3)。

圖3 胸腺素β10對SKOV3細胞中Bcl-2及Bax蛋白的影響Fig 3 Effect of thymosin β10 on the protein level of Bcl-2 and Bax in SKOV3 cell

3 討論

Tβ10目前在腫瘤中的作用存在很大爭議,一些研究證明它與Tβ4作用相似在腫瘤組織中高表達[3],同時能夠促進腫瘤血管生成和腫瘤細胞侵襲轉(zhuǎn)移,抑制腫瘤細胞凋亡。但也有研究證明Tβ10在卵巢癌中表達降低[4]。Tβ10在不同腫瘤中所起的作用及其機制還有待于進一步完善。在本研究中，卵巢癌細胞系SKOV3中加入Tβ10后細胞的凋亡百分比升高， Bcl-2的水平顯著降低，而BAX的水平顯著增高， Bcl-2/BAX的比率的降低，使更多的細胞發(fā)生了凋亡。因此Tβ10可能通過降低Bcl-2/BAX的表達水平促進SKOV3細胞的凋亡。

本研究證實在卵巢癌細胞系中，外源加入Tβ10能有效抑制腫瘤細胞增殖，促進細胞凋亡，這種促凋亡作用可能是通過降低Bcl-2/BAX的比率來實現(xiàn)的。該研究結(jié)果拓展了對Tβ10在腫瘤中作用機制的認識，為抗腫瘤藥物開發(fā)提供了新的方向。

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2013-12-19

2014-03-12

*通信作者(correspondingauthor)：qqllyy447743@163.com

1001-6325(2014)05-0707-02

R 737.3

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