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        水皰性口炎病毒兩血清型G蛋白的截短表達(dá)和間接ELISA方法的建立

        2014-11-23 09:22:42臧京帥高志強(qiáng)張樂萃張鶴曉
        中國獸醫(yī)雜志 2014年6期
        關(guān)鍵詞:口炎血清型水皰

        臧京帥,高志強(qiáng),張樂萃,張鶴曉

        (1.青島農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物科技學(xué)院,山東 青島 266109;2.北京出入境檢驗(yàn)檢疫局,北京 朝陽 100026)

        水皰性口炎(Vesicular stomatitis,VS)是由水皰性口炎病毒(Vesicular stomatitis virus,VSV)引起的動(dòng)物病毒性傳染病,VSV可感染馬及其他多種動(dòng)物,其中馬的易感性最強(qiáng)。其臨床特征為短期發(fā)熱,口腔黏膜、乳頭上皮、趾間及蹄冠部出現(xiàn)丘疹和水皰[1]。人偶發(fā)感染,以流感癥狀為主。水皰性口炎病毒屬于彈狀病毒科水皰性病毒屬,為負(fù)鏈RNA有囊膜病毒。根據(jù)病毒的抗原性,可將VSV分成兩個(gè)血清型,即新澤西型(VSV-NJ)和印第安那型(VSV-IND);但這2個(gè)血清型的病毒在結(jié)構(gòu)基因組成、轉(zhuǎn)錄調(diào)控和病毒蛋白等方面均相同[2]。由于我國還沒有該病發(fā)生和流行的報(bào)道,故將其列為外來病,在進(jìn)出境動(dòng)物檢疫對(duì)象中被列為二類病。該病毒是通過糖蛋白G吸附于敏感細(xì)胞表面受體磷酰絲氨酸(PS)而開始感染。如果利用蛋白酶去掉G蛋白,可使病毒的感染性大幅度降低,但一旦將完整的G蛋白重新加入無包膜突起的病毒粒子中,又可恢復(fù)其感染性[3]。

        在進(jìn)出口動(dòng)物檢疫中,對(duì)于水皰性口炎病毒抗體檢測,目前采用的方法為中和試驗(yàn)(VN),液相阻斷ELISA(LP-ELISA)和補(bǔ)體結(jié)合試驗(yàn)(CF)。其中VN生物安全要求較高,且檢測周期長;LP-ELISA和CF操作相對(duì)繁瑣。由于VSV-NJ和VSVIND僅有部分交叉反應(yīng),因此在采用LP-ELISA檢測抗體時(shí)需要將兩種血清型的抗原等量混合后檢測抗體。

        本研究在對(duì)VSV-IND和VSV-NJ的G蛋白抗原性進(jìn)行分析的基礎(chǔ)上,選取抗原表位較密集且交叉性較多的區(qū)域,利用大腸桿菌體外分別表達(dá)兩個(gè)血清型的G-657 bp和G-666 bp基因片段,將表達(dá)純化的蛋白等量混合后建立間接ELISA方法檢測水泡性口炎病毒抗體。

        1 材料與方法

        1.1 試劑 TRIZol,購自Invitrogen公司;DNA片段回收試劑盒,限制性內(nèi)切酶Bam HI,Hind III,購自TaKaRa公司;M-MLV反轉(zhuǎn)錄酶,Taq DNA聚合酶,購自Promega公司;HRP標(biāo)記的Protein G,購自SouthernBiotech公司。

        1.2 病毒核酸、質(zhì)粒、宿主菌及血清 VSV-IND G6R mutant株病毒核酸,本實(shí)驗(yàn)室保存;VSV NJ株病毒核酸,美國NVSL提供;原核表達(dá)質(zhì)粒pET-32a,大腸桿菌(E.coli)TOP10,Rosetta,本實(shí)驗(yàn)室保存;IND型、NJ型水皰性口炎中和抗體陽性血清,美國NVSL提供。

        1.3 水皰性口炎病毒IND型和NJ型G蛋白截短后基因擴(kuò)增、克隆 根據(jù)已知序列,用DNAStar分析VSV-IND和VSV-NJ G蛋白,根據(jù)其抗原表位分布,選取了長度為657 bp和666 bp的兩段基因片段,分別命名為IND-G-657和NJ-G-666,并在其兩端利用Oligo 6.0設(shè)計(jì)以下兩對(duì)引物,設(shè)計(jì)的引物名稱、序列見表1。

        表1 用于擴(kuò)增VSVIND-G-657和NJ-G-666的引物名稱和序列

        將VSV-IND株和VSV-NJ株核酸分別進(jìn)行RT-PCR擴(kuò)增,將擴(kuò)增的目的片段克隆于pMD-T20載體并轉(zhuǎn)化至大腸桿菌TOP10中,將鑒定正確的陽性克隆子進(jìn)行測序,分別命名為pMD-T20-INDG657和pMD-T20-NJ-G666。

        1.4 原核表達(dá)載體構(gòu)建與序列分析 分別用限制性內(nèi)切酶BamHI,Hind III對(duì)pMD-T20-IND-G657、pMD-T20-NJ-G666以及pET-32a表達(dá)載體37℃雙酶切后與pET-32a表達(dá)載體進(jìn)行連接,轉(zhuǎn)化至大腸桿菌TOP10。將鑒定為陽性的質(zhì)粒分別命名為pET-32a-IND-G657和pET-32a-NJ-G666。

        1.5 重組蛋白的誘導(dǎo)表達(dá) 將重組質(zhì)粒pET-32a-IND-G657和pET-32a-NJ-G666分別轉(zhuǎn)化Rosetta宿主菌,加入終濃度為1.0 mmol/L的IPTG,在27℃進(jìn)行誘導(dǎo)表達(dá),將表達(dá)產(chǎn)物進(jìn)行SDS-PAGE電泳。

        1.6 重組蛋白的誘導(dǎo)表達(dá)優(yōu)化 對(duì)加入IPTG的終濃度、培養(yǎng)溫度及誘導(dǎo)時(shí)間等條件進(jìn)行優(yōu)化。

        1.7 包涵體蛋白的洗滌與溶解 將包涵體用含2 mol/L尿素的Tris緩沖液進(jìn)行洗滌,重復(fù)兩次后將沉淀用含8 mol/L尿素的Tris緩沖液溶解,進(jìn)行SDS-PAGE檢測。

        1.8 包涵體蛋白的純化、復(fù)性 使用HIS.BIND resin蛋白純化試劑盒在變性條件下進(jìn)行蛋白純化。

        1.9 重組蛋白的反應(yīng)原性檢測 將純化蛋白經(jīng)SDS-PAGE電泳后,進(jìn)行電轉(zhuǎn)印。轉(zhuǎn)印結(jié)束,分別用VSV-IND、VSV-NJ中和抗體陽性血清以及HRP標(biāo)記的蛋白G進(jìn)行Western-blot檢測。

        1.10 重組間接ELISA方法的建立 將純化的VSV-IND和VSV-NJ重組蛋白等量混合后,按照ELISA方法建立的常規(guī)程序,對(duì)方法建立過程中的各個(gè)條件進(jìn)行了優(yōu)化和確定。

        1.11 間接ELISA方法特異性試驗(yàn) 以最適濃度等量混合的抗原包被酶標(biāo)板,分別對(duì)VSV-IND陽性血清、VSV-NJ陽性血清、東部馬腦脊髓炎陽性血清、西部馬腦脊髓炎陽性血清、委內(nèi)瑞拉馬腦脊髓炎陽性血清以及馬西尼羅病毒陽性血清作1∶100稀釋,作ELISA測定,驗(yàn)證該方法的特異性。

        1.12 板內(nèi)和板間重復(fù)性試驗(yàn) 用重組蛋白包被ELISA板,對(duì)2份陽性血清和2份陰性血清樣品進(jìn)行檢測,重復(fù)4孔,進(jìn)行板內(nèi)重復(fù)性試驗(yàn);用重組蛋白分別包被4塊反應(yīng)板,分別對(duì)2份陽性血清和2份陰性血清進(jìn)行板間重復(fù)性試驗(yàn)。

        1.13 對(duì)已知中和效價(jià)抗血清的檢測 對(duì)中和效價(jià)均為1∶64的VSV-IND和VSV-NJ陽性血清從1∶4開始作2倍系列稀釋至1∶64,用建立的方法作ELISA檢測,用OD值對(duì)稀釋度對(duì)數(shù)進(jìn)行線性回歸。

        1.14 對(duì)臨床樣品的檢測 用建立的間接ELISA方法檢測了VSV陰性馬血清樣品184份和已知中和抗體效價(jià)的VSV-IND和VSV-NJ陽性血清各2份。

        2 結(jié)果

        2.1 VSV病毒兩血清型截短的G蛋白基因片段擴(kuò)增結(jié)果 IND型和NJ型水泡性口炎病毒截?cái)嗟腉蛋白基因擴(kuò)增結(jié)果,電泳結(jié)果顯示,PT-PCR擴(kuò)增產(chǎn)物大小與預(yù)期結(jié)果一致,分別為657 bp和666 bp(見圖1)。

        2.2 IND型水皰性口炎病毒G657、NJ型水皰性口炎病毒G666原核表達(dá)載體的構(gòu)建與序列測定分析 將RT-PCR產(chǎn)物克隆至pMD-T20載體后,通過BamHI、Hind III雙酶切和T4連接酶的連接,成功將目的片段分別構(gòu)建到表達(dá)載體pET-32a上,測序結(jié)果表明,插入的IND-G-657和NJ-G-666基因的重組質(zhì)粒序列與GenBank中基因序列一致,方向和位置與預(yù)期結(jié)果一致。

        2.3 IND型和NJ型水皰性口炎病毒截?cái)嗟腉蛋白的誘導(dǎo)表達(dá) 將重組質(zhì)粒pET-32a-IND-G657和pET-32a-NJ-G666轉(zhuǎn)化Rosetta宿主菌后。經(jīng)摸索,確定在37℃培養(yǎng)至OD600達(dá)0.6左右,加入IPTG至終濃度為1 mmol/L,27℃繼續(xù)培養(yǎng)5 h,此條件下表達(dá)量較大。結(jié)果見圖2和圖3,誘導(dǎo)后5 h,可觀察到分子量約為30 kDa的重組蛋白。

        2.4 重組蛋白的表達(dá)條件優(yōu)化 經(jīng)研究確定的最佳表達(dá)條件為在菌液OD600nm=0.6時(shí),用1 mmol/LIPTG在27℃誘導(dǎo)5 h,可產(chǎn)生部分可溶性表達(dá),但大部分目的蛋白為包涵體表達(dá),但極易溶于2 mol/L尿素中。

        2.5 重組蛋白的反應(yīng)原性檢測 進(jìn)行Westernblot檢測,可以檢測到約30 kDa大小的預(yù)期條帶,結(jié)果見圖4。表明重組蛋白具有良好的反應(yīng)原性。2.6 重組ELISA方法的建立 經(jīng)對(duì)ELISA建立過程中的各個(gè)條件進(jìn)行優(yōu)化結(jié)果如下:抗原最佳包被濃度為0.24 μg,血清最佳稀釋度為1∶100時(shí);最佳包被條件為37℃作用2 h,然后4℃過夜;最佳封閉液為含1%卵清蛋白的PBST。

        經(jīng)對(duì)30份VSV陰性血清進(jìn)行測定,確定樣本臨界值為0.3。

        2.7 特異性交叉反應(yīng)試驗(yàn) 結(jié)果表明,除VSV IND型和NJ型陽性血清結(jié)果為陽性外,其他病毒血清和陰性對(duì)照血清的OD450nm值均小于0.3,為陰性。

        2.8 重復(fù)性試驗(yàn) 對(duì)于4份血清樣品,板內(nèi)重復(fù)試驗(yàn)變異系數(shù)最大為3.24%,小于5%;板間重復(fù)試驗(yàn)的變異系數(shù)最大為9.84%,小于10%。

        2.9 對(duì)已知中和效價(jià)抗血清的檢測 線性回歸結(jié)果見圖5和圖6。已知中和抗體效價(jià)的血清稀釋度的對(duì)數(shù)與OD450的平均值的對(duì)數(shù)呈線性相關(guān),R2分別為0.996和0.998,進(jìn)一步說明建立的方法可用于VSV中和抗體的檢測。

        2.10 對(duì)臨床樣品的檢測 用建立的間接ELISA方法和中和試驗(yàn)方法檢測了VSV陰性馬血清樣品184份和已知中和抗體效價(jià)的VSV-IND陽性血清和VSV-NJ陽性血清各2份,其檢測結(jié)果一致。

        3 結(jié)論與討論

        在本研究中,用分子生物學(xué)軟件分析水皰性口炎病毒印第安那型(IND型)和新澤西型(NJ型)G蛋白抗原表位分布,在抗原表位較密集的區(qū)域設(shè)計(jì)引物,采用RT-PCR方法分別擴(kuò)增水皰性口炎病毒IND型657 bp G蛋白基因片段和NJ型666 bp G蛋白基因片段,并將其克隆到pET-32a表達(dá)載體。對(duì)表達(dá)蛋白進(jìn)行純化及Western-blot檢測驗(yàn)證正確后,將2個(gè)血清型的重組G蛋白等量混合作為檢測抗原包被酶標(biāo)板,建立了可檢測IND型和新澤西NJ型水皰性口炎病毒抗體的間接ELISA方法。

        ELISA方法具有特異、敏感、重復(fù)性好以及易于操作等優(yōu)點(diǎn),已經(jīng)廣泛用于多種動(dòng)物傳染病的檢測。本研究利用原核表達(dá)的重組蛋白建立了同時(shí)檢測水皰性口炎病毒IND型和NJ型兩種血清型抗體的間接ELISA方法,并通過試驗(yàn)表明,重組蛋白與VSV IND型和NJ型兩種血清特異性反應(yīng)均良好,可以用于水皰性口炎病毒的IND型和NJ型的檢測。進(jìn)一步收集更多數(shù)量的血清對(duì)我們的方法進(jìn)行驗(yàn)證和完善,將是我們今后的重要任務(wù)。

        [1]殷震,劉景華.動(dòng)物病毒學(xué)[M].北京:科學(xué)出版社,1997.

        [2]周學(xué)章,高豐,趙文斌.動(dòng)物水泡性口炎病毒的抗原性[J].黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)學(xué)報(bào),2003,15(2):68-72

        [3]Schmidtmanm E T,Tabachnick W J.Epizootic of vesicular stomatitis in the western united states[J].J Med Entoma,1999,36(1):71 991-71 995.

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