王英+羅浩虹+高洪泉+繆智輝+趙亞清
【摘要】目的研究人臍帶血間充質(zhì)干細(xì)胞向胰島素分泌細(xì)胞分化的潛能及其移植后對(duì)糖尿病大鼠的治療效果。方法體外分離培養(yǎng)HUCB-MSCs, 在胰島細(xì)胞培養(yǎng)條件下經(jīng)藥物定向誘導(dǎo)其分化;免疫組化對(duì)誘導(dǎo)細(xì)胞進(jìn)行胰島β細(xì)胞標(biāo)記鑒定;雙硫腙染色鑒定鋅離子表達(dá)及檢測(cè)胰島樣細(xì)胞的移植效果。結(jié)果HUCB-MSCs經(jīng)誘導(dǎo)后, 免疫細(xì)胞化學(xué)染色顯示表達(dá)人胰島素;雙硫腙染色呈棕紅色;移植后2周, 胰島樣細(xì)胞組血糖濃度明顯降低。結(jié)論HUCB-MSCs在體外誘導(dǎo)培養(yǎng)條件下, 具有向胰島素分泌細(xì)胞分化的潛能, 這種細(xì)胞可能為Ⅰ型糖尿病提供一條新的治療途徑。
【關(guān)鍵詞】人臍帶血;間充質(zhì)干細(xì)胞;定向誘導(dǎo);糖尿病
Inducing human umbilical cord blood mesenchymal stem cells into insulin secreting cells in vitro culture and its effects on diabetes rats WANG Ying, LUO Hao-hong, GAO Hong-quan, et al. Medical College of Xiamen, Xiamen 361008, China
【Abstract】ObjectiveTo explore the possibility of inducing the differentiation of human umbilical cord blood mesenchymal stem cells(HUCB-MSCs) into insulin secreting cells in vitro and the therapeutic efficacy on diabetic rats following transplantation. Methods?We isolated and cultured HUCB-MSCs, and induced HUCB-MSCs to differentiate into insulin secreting cells in the islet cell culture condition. HUCB-MSCs of induction were detected by immunocytochemical Methods. Zinchydronium was detected by Dithizon staining. Transplantation efficiency of islet-like cells was detected. Results?Under induction, immunocytochemical examination showed that the expression of human insulin was positive. Dithizon stain showed that the cytoplasm of HUCB-MSCs was stained in brownish red color after induction. At 2 weeks following transplantation, blood glucose concentration in the islet-like cell group significantly reduced. Conclusion?HUCB-MSCs can be differentiated into insulin secreting cells in vitro. HUCB-MSCs have the potential to become an excellent candidate in β cell replacement therapy of typeⅠdiabetes.
【Key words】Human umbilical cord blood; Mesenchymal stem cells; Induction; Diabetes rats2000年, Erices等[1]報(bào)道人臍血中含有豐富的造血干細(xì)胞和間充質(zhì)干細(xì)胞(mesenchymal stem cell/ mesenchymal progenitor cell, MSC/MPC)。臍帶血間充質(zhì)干細(xì)胞(umbilical cord blood mesenchymal stem cells, UCB-MSCs)為中胚層發(fā)育的早期細(xì)胞, 具有多向分化的潛在能力, 其形態(tài)和生物學(xué)特點(diǎn)與骨髓來源 MSCs 相似[2]。UCB-MSCs具備自我更新和增殖的能力, 并具備多向分化潛能特性。在一定條件下進(jìn)行體外培養(yǎng)和誘導(dǎo)分化后具有向神經(jīng)細(xì)胞(神經(jīng)元和神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞)、成骨細(xì)胞、軟骨細(xì)胞、脂肪細(xì)胞和心肌細(xì)胞等方向分化功能, 可作為細(xì)胞治療的種子細(xì)胞和基因治療的載體細(xì)胞[3-5]。臍血又具有淋巴細(xì)胞抗原性弱、功能相對(duì)不成熟、移植后發(fā)生移植物抗宿主病的風(fēng)險(xiǎn)較低等特點(diǎn), 與其他類型的干細(xì)胞比較, 取材方便, 擴(kuò)增數(shù)大, 來源廣泛, 不受倫理和道德的限制, 因此臍血干細(xì)胞將以其自身的特性和優(yōu)勢(shì)占據(jù)重要的位置, 具有重大的理論意義和潛在的臨床應(yīng)用價(jià)值[6]。
1試劑與方法
1. 1試劑DMEM培養(yǎng)基(美國Gibco公司);優(yōu)質(zhì)胎牛血清(杭州四季青公司);重組堿性成纖維生長因子(basic fibroblastgrowth factors, bFGF)、重組表皮生長因子(epidermisgrowth factors, EGF)、β-細(xì)胞調(diào)節(jié)素(PeproTech公司);β-巰基乙醇(上海試劑四廠);尼克酰胺、ITS、雙硫腙、B27(GBICO公司);熒光標(biāo)記小鼠抗人抗體CD49d、CD34(Bioscience美國);小鼠抗人胰島素單克隆抗體 (Neomarkers公司)。
1. 2HUCB-MSCs表面標(biāo)記檢測(cè)取第4代的HUCB-MSCs, 經(jīng)消化后離心, 調(diào)節(jié)細(xì)胞濃度為1×105/ml, 接種有蓋玻片的6孔板內(nèi)培養(yǎng), 當(dāng)細(xì)胞生長到融合狀態(tài)時(shí), 取出蓋玻片, 再按照試劑盒說明進(jìn)行免疫細(xì)胞化學(xué)染色, 實(shí)驗(yàn)組分別滴加50 μl一抗小鼠抗人抗體CD49d、CD34于蓋玻片上, 然后按照常規(guī)細(xì)胞化學(xué)染色方法進(jìn)行操作??瞻讓?duì)照組用PBS代替一抗。倒置顯微鏡下觀察拍照。
1. 3體外誘導(dǎo)后胰島細(xì)胞檢測(cè)
1. 3. 1雙硫腙的染色誘導(dǎo)方法參考[7]。6孔培養(yǎng)板中將誘導(dǎo)約12 d及未誘導(dǎo)的細(xì)胞, PBS洗2遍, 然后每個(gè)孔分別加入1 ml PBS和10 μl雙硫腙儲(chǔ)存液, 充分混勻, 置37℃孵育20 min后, PBS洗3次, 倒置顯微鏡觀察并拍照。
1. 3. 2免疫細(xì)胞化學(xué)染色將誘導(dǎo)12 d的細(xì)胞進(jìn)行常規(guī)免疫細(xì)胞化學(xué)染色, 用小鼠抗人胰島素單克隆抗體作為一抗, 參照免疫組化試劑盒說明書進(jìn)行操作, DAB染色、脫水、透明、封片, 光學(xué)顯微鏡下觀察并拍照。對(duì)照組用PBS代替一抗。采用圖像分析儀進(jìn)行結(jié)果分析。選取10個(gè)高倍鏡的視野計(jì)數(shù)細(xì)胞總數(shù)以及陽性細(xì)胞數(shù), 計(jì)算誘導(dǎo)率。誘導(dǎo)率=陽性細(xì)胞/細(xì)胞總數(shù)×100%。
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1. 3. 3統(tǒng)計(jì)學(xué)方法采用SPSS11.5軟件處理數(shù)據(jù), 計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差( x-±s)來表示, 進(jìn)行t檢驗(yàn), P<0.05表示差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
1. 4胰島樣細(xì)胞移植造模糖尿病大鼠
1. 4. 1大鼠糖尿病模型的制備[8]將12只SD大鼠隨機(jī)分為實(shí)驗(yàn)組8只和對(duì)照組4只。實(shí)驗(yàn)組大鼠空腹12 h后, 經(jīng)腹腔注射70 mg/kg鏈脲佐菌素(以0.1 mol/L枸櫞酸緩沖液溶解), 對(duì)照組腹腔注射等體積的生理鹽水。兩組大鼠注射后2 d, 4 d, 6 d從尾靜脈采血檢測(cè)空腹血糖, 選連續(xù)3次血糖濃度高于16.7 mmol/L(正常值為2.80~7.56 mmol/L)的大鼠作為糖尿病模型。
1. 4. 2胰島樣細(xì)胞團(tuán)的移植8只實(shí)驗(yàn)組分為4只胰島樣細(xì)胞組, 4只模型對(duì)照組。取2×106個(gè)的第4~8代HUCB-MSCs用900 μl PBS重懸細(xì)胞, 吸入1 ml注射器內(nèi)經(jīng)尾靜脈注入糖尿病鼠體內(nèi)。模型對(duì)照組注入等體積的生理鹽水。各組大鼠均于移植前及移植后2 d檢測(cè)空腹血糖濃度, 以后每周定點(diǎn)檢測(cè)空腹血糖1次。
2結(jié)果
2. 1貼壁細(xì)胞鑒定對(duì)第4代貼壁細(xì)胞通過免疫細(xì)胞化學(xué)染色, 結(jié)果顯示貼壁的細(xì)胞CD49d表達(dá)陽性, 細(xì)胞質(zhì)呈棕黃色(見圖1);而CD34表達(dá)陰性, 大部分細(xì)胞質(zhì)未著色, 細(xì)胞核為藍(lán)色(見圖2)。說明貼壁細(xì)胞為HUCB-MSCs。
2. 2誘導(dǎo)胰島細(xì)胞的檢測(cè)
2. 2. 1胰島細(xì)胞雙硫腙(DTZ)染色結(jié)果實(shí)驗(yàn)組細(xì)胞在DTZ染色的過程中, 多數(shù)細(xì)胞由貼壁狀態(tài)變成懸浮細(xì)胞, 只有少數(shù)細(xì)胞保持貼壁狀態(tài)。DTZ是鉛試劑, 與胰島β細(xì)胞內(nèi)豐富的鋅離子結(jié)合染成了棕紅色。在倒置顯微鏡下觀察, 經(jīng)DTZ染色顯示多數(shù)細(xì)胞為棕紅色(見圖3)。對(duì)照組的細(xì)胞DTZ染色不著色。
2. 2. 2免疫細(xì)胞化學(xué)染色在高糖等誘導(dǎo)環(huán)境下, UCB-MSCs聚集成為細(xì)胞團(tuán), 實(shí)驗(yàn)組細(xì)胞可觀察到特異性的胰島素表達(dá), 陽性細(xì)胞質(zhì)表現(xiàn)為棕褐色(見圖4)。說明細(xì)胞質(zhì)中有胰島素分泌, 細(xì)胞核淡黃色。對(duì)照組細(xì)胞質(zhì)染色呈陰性, 不含胰島素。實(shí)驗(yàn)組以及對(duì)照組的誘導(dǎo)分化陽性率及灰度值見表1, 表2, 圖5, 圖6。
表112 d兔抗人胰島素抗體檢測(cè)結(jié)果( x-±s, %)
組別 n 誘導(dǎo)率
實(shí)驗(yàn)組 8 23.75±3.59a
對(duì)照組 4 1.52±0.89
注:兩組比較, a P<0.05
圖512 d誘導(dǎo)細(xì)胞兔抗人胰島素抗體表達(dá)柱形圖
表212 d圖像分析系統(tǒng)灰度值測(cè)定結(jié)果( x-±s)
(背景染色:183.3674±3.2865)
組別 兔抗人胰島素抗體
實(shí)驗(yàn)組 112.68±5.41a
對(duì)照組 184.14±1.24
注:兩組比較, a P<0.05
圖612 d兔抗人胰島素抗體免疫細(xì)胞化學(xué)結(jié)果灰度值比較
2. 3胰島樣細(xì)胞團(tuán)移植效果檢測(cè)血糖濃度正常的大鼠經(jīng)腹腔注射鏈脲菌素2 d后, 大鼠血糖的濃度迅速升高;4 d、6 d后大鼠血糖濃度均高于16.7 mmol/L。胰島樣細(xì)胞移植后2周, 胰島樣細(xì)胞組大鼠血糖濃度明顯降低, 模型對(duì)照組血糖濃度一直處于糖尿病血糖濃度范圍內(nèi)(見表3)。
表3胰島樣細(xì)胞移植后不同時(shí)間點(diǎn)大鼠空腹
血糖濃度的變化( x-±s, n=3, mmol/L)
組別 n 2周 4周 6周
胰島樣細(xì)胞組 4 23.57±5.23a 18.67±4.51a 16.42±1.42
模型對(duì)照組 4 25.36±3.35 25.36±3.35 24.52±8.72
注:aP<0.05, 組間比較差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義
3討論
間充質(zhì)干細(xì)胞來源于胚胎發(fā)育期的中胚層, 是間充質(zhì)細(xì)胞起源于微環(huán)境中的一類多能性前體細(xì)胞。近年來UCB-MSCs作為一種同質(zhì)細(xì)胞群, 已經(jīng)被眾多實(shí)驗(yàn)室成功分離。UCB-MSCs不僅在適當(dāng)?shù)恼T導(dǎo)條件下可向外胚層、中胚層、內(nèi)胚層分化, 而且還有向傷處遷移的能力, 是基礎(chǔ)研究實(shí)驗(yàn)材料的理想細(xì)胞和基因治療的載體。本實(shí)驗(yàn)通過免疫細(xì)胞化學(xué)染色檢測(cè)分離培養(yǎng)的細(xì)胞表面標(biāo)記CD49d陽性表達(dá), CD34陰性表達(dá), 由此證明培養(yǎng)的細(xì)胞為HUCB-MSCs。
間充質(zhì)干細(xì)胞誘導(dǎo)分化胰島β細(xì)胞的誘導(dǎo)因素包括兩類:一類為啟動(dòng)胰島β細(xì)胞特異性轉(zhuǎn)錄因子的生物因子, 如bFGF、肝細(xì)胞生長因子、尼克酰胺等;另一類為誘導(dǎo) nestin 蛋白的表達(dá), 如β-巰基乙醇、DMSO 等[9]。本實(shí)驗(yàn)誘導(dǎo)方案分為三個(gè)階段, 第一、二階段HUCB-MSCs形態(tài)未見明顯變化, 細(xì)胞數(shù)量增長速度有所減慢;第三階段相鄰細(xì)胞發(fā)生明顯的形態(tài)變化, 開始逐漸變圓并聚集成胰島樣細(xì)胞團(tuán), 這些細(xì)胞團(tuán)呈類圓形, 大小不等。誘導(dǎo)后的細(xì)胞, 經(jīng)DTZ染色胰島細(xì)胞染成棕紅色, 經(jīng)胰島素免疫熒光染色檢測(cè), 呈陽性反應(yīng), 而對(duì)照組則沒有著色。說明HUCB-MSCs 經(jīng)誘導(dǎo)后得到了胰島素分泌細(xì)胞。胰島樣細(xì)胞經(jīng)糖尿病大鼠尾靜脈移植入體內(nèi)2周后, 糖尿病大鼠空腹血糖濃度明顯下降, 說明胰島樣細(xì)胞分泌的胰島素迅速發(fā)揮了降血糖的作用, 胰島樣細(xì)胞移植可以治療糖尿病。這種HUCB-MSCs移植入糖尿病大鼠體內(nèi)發(fā)揮降血糖作用的優(yōu)化條件和維持時(shí)間將成為今后研究的重點(diǎn)。
參考文獻(xiàn)
[1] Erices A, Conget P, Minguell JJ. Mesenchymal progenitor cells in human umbilical cord blood. BrJHaematol, 2000, 109(1):235-242.
[2] He QL, Wan C, Li G. Concise review: Multipotent mesenchymalstromal cells in blood. Stem Cells, 2007, 25(1):69-77.
[3] Deans RJ, Moseley AB. Mesenchymal stem cells: Biology and potential clinical uses. Experimental Hematology, 2000, 28 (8):875-884.
[4] Le Blanc K, Ringdén O. Mesenchymal stem cells: properties androle in clinical bone marrow transplantation. Current Opinion inImmunology, 2006, 18(5):586-591.
[5] Jang YK, Jung DH, Jung MH, et al. Mesenchymal stem cellsfeeder layer from human umbilical cord blood for ex vivo expandedgrowth and proliferation of hematopoietic progenitor cells. Annalsof Hematology, 2006, 85(4):212-225.
[6] 籍鳳宇, 李佳佳, 陳秀莉, 等.臍血干細(xì)胞向不同體細(xì)胞分化的研究進(jìn)展.生物技術(shù)通報(bào), 2012(1):30-36.
[7] 李偉中, 何紅燕, 王鴻武, 等.體外定向誘導(dǎo)人臍帶間充質(zhì)干細(xì)胞分化為胰島素分泌細(xì)胞的研究.中國輸血雜志, 2009, 22(3):192-195.
[8] 李俊林, 李德華, 趙寶東, 等. 人臍帶間充質(zhì)干細(xì)胞體外向胰島樣細(xì)胞誘導(dǎo)分化及其治療糖尿病效果. 中國組織工程研究與臨床康復(fù), 2009, 13(14):2636-2640.
[9] 于瑾, 王啟偉, 陳昭烈.間充質(zhì)干細(xì)胞誘導(dǎo)分化為胰島β細(xì)胞的研究進(jìn)展. 中國生物工程雜志, 2005, 25(8):6-9.
[收稿日期:2014-03-19]
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