張 哲, 李同明, 曾勇慶, 陳 偉, 徐正剛, 楊 云, 房國鋒, 王守棟, 楚青惠
(山東農業(yè)大學動物科技學院 動物遺傳育種學實驗室, 山東 泰安 271018)
近年來豬肉品質受到消費者和生產者的廣泛重視,生產優(yōu)質高檔豬肉已經成為生產者追求的目標,其中肌內脂肪含量與抗氧化性能是影響豬肉品質的重要性狀。錢源等克隆豬磷酸酪氨酸互作結構域1(phosphotyrosine interaction domain containing1,PID1)基因,分析其表達與肌內脂肪的含量存在正相關[1-2]。楊倫等構建靶向小鼠RNA干擾沉默PID1基因表達載體,進一步揭示PID1基因影響豬的肌內脂肪沉積[3]。銅鋅超氧化物歧化酶(CuZnSOD)是超氧化物歧化酶(SODs)的一類,能轉移性的清除超氧陰離子自由基,抑制脂質氧化反應進行。2010年杜金芳等對豬CuZnSOD基因克隆表達,分析其在多種組織中表達,其表達顯著提高商品豬的抗氧化性能,改善商品豬的肉質[4]。本實驗室成功構建PID1和CuZnSOD真核表達載體,在真核細胞中成功表達,通過精子載體法獲得的轉基因兔,經性能測定肌內脂肪含量與肉質抗氧化性能顯著提高[5-6]。日常屠宰后肌內脂肪含量高的豬肉極易氧化,影響了豬肉品質,而豬肉抗氧化性能的提高正好解決此問題。目前研究也著力于對PID1與CuZnSOD基因的單獨研究。本研究構建PID1與CuZnSOD基因共表達載體,不僅提高了轉基因效率,同時表達兩種內源基因,而且在獲得高肌內脂肪含量豬肉品質的同時,提高了豬肉的抗氧化性能,為進一步制備肌內脂肪顯著提高并兼?zhèn)涓呖寡趸阅艿霓D基因豬等育種新材料奠定基礎。
多基因共表達技術在生物醫(yī)藥和農業(yè)研究中占有重要位置,多順反子載體構建以其表達高效而被廣泛應用[7]。構建多順反子載體常用方法:多啟動子表達載體、mRNA剪接、融合基因表達、內部核糖體進入位點(IRES)、 2A剪切。其中2A肽介導的多順反子載體已被證明是同時多基因表達的優(yōu)選[8]。2A肽被稱為“順式作用水解酶元素”(CHYSEL),屬小核糖核酸病毒[9]。2A肽調控“核糖體跳過”,在保守區(qū)2A脯氨酸和2B甘氨酸之間發(fā)生斷裂,完成多蛋白獨立表達共翻譯過程[10]。目前研究已經證實2A介導多轉基因的共表達可行性[11-12],其介導多因素共同誘導多能干細胞產生獲得巨大成功[13-14]。在哺乳動物上已經證實2A肽介導多個外源熒光報告基因共表達,但在轉與動物性狀相關聯的內源基因的應用研究為空白。本研究利用2A肽同時介導與肉質性狀關聯的內源基因PID1基因與CuZnSOD基因,在細胞水平上證實雙基因蛋白表達高效獨立,提高了轉基因效率,為應用于轉多基因育種新材料的制備在分子水平上奠定基礎。
萊蕪豬耳組織樣品,限制性內切酶、TaqDNA聚合酶、T4連接酶等分子試劑購自TaKaRa公司。DNA純化回收試劑盒、質粒提取試劑盒購自天根生物科技有限公司??蛰d體pIRES2-AcGFP1(Clontech),轉染試劑X-tremeGENE HP (Roche),DMEM-F12培養(yǎng)基、胎牛血清購自Gibco公司。大腸桿菌DH5α與PK15細胞系均由本實驗室保存。
1.2.1 真核表達載體構建
取100 mg萊蕪豬耳組織樣品使用Trizol法提取總RNA,所得RNA利用核酸蛋白測定儀進行濃度及純度檢測,采用1%瓊脂糖凝膠電泳驗證完整性,分裝后置于超低溫冰箱中-80 ℃保存。取耳組織RNA 2 μL,按PrimeScriptTM RT-PCR (TaKaRa)試劑盒進行,去除RNA樣品中殘留的基因組DNA,反轉錄反應合成cDNA。
根據NCBI基因數據庫中豬PID1基因與CuZnSOD基因序列,設計合適的引物。2A肽接頭經上海生工合成并克隆于PUC57載體上。2A序列: CCGGAATTCGGCAGTGGAGAGGGCA GAGGAAGTCTGCTAACATGCGGTGACGTCGAGGAGAATCCTGGCCCAGTCGAC。PCR擴增體系:PID1/CuZnSOD1 μL,10×Taq Buffer 2 μL,dNTPs (2.5 mmol/L) 4 μL,DNA聚合酶0.5 μL,P1/P2,S1/S2 (10 μmol/mL) 1 μL,滅菌雙蒸水15.5 μL。反應條件:95 ℃預變性5 min,95 ℃變性30 s,58 ℃退火30 s,72 ℃延伸30 s,35個循環(huán),72 ℃補延伸10 min。
PCR產物經DNA純化試劑盒純化,用BglII/EcoR I雙酶切CuZnSOD,并同時酶切空載體pIRES2-acGFP1,對酶切產物進行純化回收后用T4連接酶連接。將連接產物轉化到大腸桿菌里,用卡那抗性的培養(yǎng)平板均勻涂板,37℃恒溫培養(yǎng)進行抗性篩選。提取陽性克隆質粒,利用酶切與測序鑒定得到質粒pIRES2-CuZnSOD。用SalI/HindIII雙酶切P1/P2擴增的PID1產物,亞克隆至質粒PUC57-2A,克隆轉化得到質粒PUC57-2A-PID1。質粒PUC57-2A-PID1經EcoR I/SacII雙酶切,純化回收片段2A-PID1,克隆入質粒pIRES2-CuZnSOD中,轉化后得到pIRES2-CuZnSOD-PID1載體。
表1 CuZnSOD基因與PID1基因引物設計
1.2.2 PK15細胞培養(yǎng)與轉染
PK15細胞用完全培養(yǎng)液(DMEM-F12+10% FBS),在37 ℃,5% CO2恒溫培養(yǎng)箱培養(yǎng)。將處于對數生長期的細胞以1×105密度接種于6孔板,待細胞生長至70%~90%密度后進行細胞轉染。將構建pIRES2-CuZnSOD-PID1載體、空載體轉染到細胞中,每組設3個重復。每孔按0.8 μg質粒、 2 μL脂質體加樣。培養(yǎng)48 h后,觀察熒光拍照后收集細胞。
1.2.3 Real-time PCR檢測mRNA表達
向每孔細胞中加入1 mL Trizol提取總RNA,測定其濃度與純度,按PrimeScriptTM RT-PCR Kit (TaKaRa)說明書合成cDNA。采用SYBR Green染料法,以GAPDH為內參基因,分析PID1基因與CuZnSOD基因表達量。反應體系為:P3/P4,S3/S4 (10 μmol/mL)各0.5 μL,2 μL cDNA,12.5 μL SYBR Green,0.5 μL Plus Solution,補ddH2O至25 μL。反應條件:95 ℃預變性30 s,95 ℃變性15 s,58 ℃退火20 s,72 ℃延伸20 s,35個循環(huán),最后72 ℃延伸10 min。檢測每個待測樣品設置3個重復, 2-△△t的方法計算基因的表達水平。
1.2.4 Western blot檢測蛋白表達
將構建pIRES2-CuZnSOD-PID1載體、空載體轉染至細胞中,每組設3個重復,以轉染空載體細胞為陰性對照,未轉染的細胞為空白對照。收集轉染48 h細胞至1.5 mL離心管中,加入細胞裂解液,收集細胞總蛋白。再進行電泳分離、轉膜、封閉、I抗及II抗孵育后,曝光洗片,用Image J軟件分析灰度值[6],應用統計軟件分析蛋白表達量。
1.2.5 數據分析
各組表達數據表示為平均值±標準誤,計算各基因相對表達量,應用SAS 8.2軟件統計分析,以P<0.05為差異具有顯著性。
以合成的cDNA為模板,擴增PID1基因與CuZnSOD基因編碼區(qū),大小分別為654 bp與462 bp,經瓊脂糖凝膠電泳分析,PCR產物條帶大小與預期相同且無雜帶,如圖1所示。
圖1 PCR擴增PID1基因與CuZnSOD基因CDS區(qū)
M—2000 bp; 1—CuZnSOD; 2—PID1。
構建的pIRES2-CuZnSOD-PID1載體分別經BglII/EcoR I、SalI/SacII雙酶切,酶切產物經瓊脂糖凝膠電泳顯示,片段大小與PID1基因與CuZnSOD基因相一致,如圖2所示。對酶切鑒定正確的重組載體,進行克隆轉化測序。測序結果證實插入的基因堿基序列與GenBank中的PID1、CuZnSOD、2A序列完全一致,表明重組表達載體構建成功。構建成功的pIRES2-CuZnSOD-PID1重組質粒圖譜如圖3所示。
圖2 重組載體pIRES2-CuZnSOD-PID1酶切鑒定結果
M—2000 bp; 1—雙酶切產物PID1; 2—雙酶切產物CuZnSOD; 3—單酶切產物。
圖3 構建成功的重組質粒簡圖
將重組質粒按X-tremeGENE HP說明書轉染至PK15細胞,培養(yǎng)48 h后使用倒置熒光顯微鏡觀察并拍照。如圖4所示,pIRES2-CuZnSOD-PID1載體所攜帶的熒光蛋白基因在細胞內高效表達,其中(a)為轉染前在普通顯微鏡下拍到細胞照片;(b)為熒光顯微鏡下拍到熒光出現。
圖4 質粒pIRES2-CuZnSOD-PID1在PK15細胞中表達
2.4.1 重組載體中CuZnSOD基因的表達
定量結果顯示(圖5),載體轉染對CuZnSOD基因的表達量的差異顯著,具體表現為pIRES2-CuZnSOD-PID1載體>空白細胞>pIRES2-AcGFP1空載體。其中轉染pIRES2-CuZnSOD-PID1載體的CuZnSOD基因表達量(1.995±0.012),明顯高于陰性對照組(0.937±0.037)與空白組(0.952±0.039),差異顯著(P<0.05)。
圖5 轉染質粒48 h后CuZnSOD基因的mRNA表達量Fig 5 The mRNA levels of CuZnSOD gene of vectors transfected after 48 h
1—pIRES2-CuZnSOD-PID1; 2—pIRES2-AcGFP1; 3—空白。
圖6 轉染質粒48 h后PID1基因的mRNA表達量Fig 6 The mRNA levels of PID1 gene of vectors transfected after 48 h
1—pIRES2-CuZnSOD-PID1; 2—pIRES2-AcGFP1; 3—空白。
2.4.2 重組載體中PID1基因的表達
定量結果顯示(圖6),載體轉染對PID1基因的表達量差異顯著,具體表現為pIRES2-CuZnSOD-PID1載體>空白細胞> pIRES2-AcGFP1空載體。其中轉染pIRES2-CuZnSOD-PID1載體的PID1基因表達量(11.382±0.424)明顯高于陰性對照組(1.002±0.046)與空白組(2.039±0.049),差異顯著(P<0.05)。
重組質粒轉染PK15細胞48 h后,Western blot檢測CuZnSOD蛋白與PID1蛋白表達量(圖7),用Image J軟件分析比較條帶灰度值發(fā)現,陽性組的CuZnSOD蛋白與PID1蛋白表達量較陰性組和空白對照組有顯著提高(P<0.05),見圖8和圖9,結果表明CuZnSOD蛋白與PID1蛋白得到穩(wěn)定有效表達。
圖7 轉染質粒48 h后CuZnSOD蛋白與PID1蛋白表達情況
1—pIRES2-CuZnSOD-PID1; 2—pIRES2-AcGFP1; 3—空白。
圖8 CuZnSOD蛋白的表達水平Fig 8 Expression levels of CuZnSOD protein
1—pIRES2-CuZnSOD-PID1; 2—pIRES2-AcGFP1; 3—空白。
圖9 PID1蛋白的表達水平Fig 9 Expression levels of PID1 protein
1—pIRES2-CuZnSOD-PID1; 2—pIRES2-AcGFP1; 3—空白。
豬肌內脂肪(IMF)是影響豬肉品質重要的性狀之一,它是由多基因控制的性狀。研究發(fā)現,PID1基因表達與脂類代謝相關,且與肌內脂肪含量存在正相關,提示PID1基因影響肌內脂肪沉積表達[1-2]。張春梅[15]等研究發(fā)現,PID1基因過表達通過下調胰島素刺激的GLUT4的轉位而減少脂肪細胞的葡萄糖攝取率,降低對胰島素的敏感性,調節(jié)脂肪代謝。石元[16]等通過構建雙熒光素酶報告基因重組載體,分析CuZnSOD核心啟動子區(qū)的活性,揭示CuZnSOD影響抗氧化性能。因此,在控制瘦肉率與背膘厚的條件下,PID1基因表達提高肉質風味,同時CuZnSOD基因表達提高抗氧化水平,為生產優(yōu)質豬肉提供思路,為獲得分子育種材料提供分子依據。本研究成功構建PID1與CuZnSOD共表達載體,獨立表達兩基因,對于同時提高豬肌內脂肪含量和抗氧化性能,提高豬肉品質具有重要意義。
IRES是在單啟動子的控制下,實現多基因獨立共表達的常用方法[17]。然而,IRES因自身序列較大以及前后連接基因表達不平衡而存在缺陷[18-19]。2A肽自身具有裂解活性,平均長度短,而且相對平衡了上下游基因的表達,成為IRES介導表達很好的替代。有報道稱,增強型綠色熒光的表達蛋白(EGFP)在MGMT-2A-EGFP雙順反子載體比在IRES介導表達高約3倍[20]。2A肽介導共表達技術表現出廣泛的應用前景。Trichas等利用2A肽介導獲得紅色與綠色熒光蛋白共表達的轉基因小鼠,介導的基因已整合到染色體并獲得穩(wěn)定遺傳[21]。本研究利用2A肽高效共表達,構建內源雙基因共表達模型,構建的真核雙表達載體pIRES2-CuZnSOD-PID1在PK15細胞上驗證PID1基因與CuZnSOD基因分別穩(wěn)定有效表達。在細胞水平上證明2A肽介導PID1與CuZnSOD基因共表達載體成功構建,能夠完成哺乳動物內源雙基因共翻譯過程。
本文通過2A肽構建PID1與CuZnSOD內源雙基因載體,驗證在PK15真核細胞中重組載體成功獨立表達,研究結果在細胞水平上證實內源雙基因共表達,為同時表達PID1與CuZnSOD基因,改善肉質性狀提供方法支持,為進一步制備肌內脂肪顯著提高并兼?zhèn)涓呖寡趸阅艿霓D基因豬等育種新材料奠定分子基礎。
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