張峻山,王自立,施建黨,劉海濤,肖慧霞,牛寧奎
由于復合抗結(jié)核藥物的人工緩釋材料置入病灶清除術(shù)后的骨缺損部位之后既能提高脊柱結(jié)核病變部位的藥物濃度,又能充填骨缺損、完成病變部位的修復重建,近年在脊柱結(jié)核治療的研究中頗受關(guān)注。硫酸鈣/氨基酸聚合物因其具有較高的組織相容性、緩釋性能、成骨效果、無毒副作用而被廣泛應(yīng)用并取得了良好的臨床效果[1-2]。然而該人工材料復合抗結(jié)核藥物之后在病灶局部的抗結(jié)核效果到底如何目前尚未見報道。本研究復合三聯(lián)抗結(jié)核藥異煙肼(isonicotinyl hydrazide,INH)、利福平(rifampin,RFP)、吡嗪酰胺(pyrazinamide, PZA)硫酸鈣/氨基酸聚合物人工緩釋材料,采用BacT/ALERT 3D全自動結(jié)核分支桿菌快速培養(yǎng)系統(tǒng),對載藥人工緩釋材料不同時間點浸提液與標準結(jié)核分枝桿菌共同培養(yǎng)并檢測,評價該載藥人工緩釋材料的體外抗結(jié)核性能。
INH、RFP、PZA標準品(純度分別為99.5%、95.2%、99.5%,北京中科三捷公司),硫酸鈣、聚氨基酸(四川國納科技有限公司),標準結(jié)核分枝桿菌H37Rv(國家菌種保藏中心),BacT/ALERT 3D全自動結(jié)核分支桿菌快速培養(yǎng)系統(tǒng)(法國梅里埃公司),電子分析天平(梅特勒-托利爾儀器有限公司),D-2000高效液相色譜儀(日本日立公司)。
1.2.1 載藥及未載藥人工緩釋材料的制備
按口服給藥劑量得出3種抗結(jié)核藥的比值及載藥人工緩釋材料力學性能檢測結(jié)果,按45∶5∶1∶1∶3的比例,分別稱取硫酸鈣0.45 g、氨基酸0.05 g、INH 0.01 g、RFP 0.01 g、PZA 0.03 g,制作載三聯(lián)抗結(jié)核藥硫酸鈣/聚氨基酸人工緩釋材料[3]。未載藥緩釋材料制作過程同上(見圖1)。
1.2.2 模擬體液的制備
取700 mL蒸餾水置于1 000 mL的塑料燒杯,緩慢攪拌,將水溫調(diào)至36.5°C。分別稱取一定質(zhì)量
圖1人工緩釋材料
Fig.1Artificial release material
的藥品,按照順序逐一加入燒杯中(見表1),攪拌至藥品完全溶解,調(diào)節(jié)pH接近7.45。將配好的模擬體液轉(zhuǎn)移入1 000 mL定容瓶,待溶液溫度降至20°C時,定容后既得模擬體液。
表1 模擬體液中加入化學物質(zhì)的量
1.2.3 載藥及未載藥人工緩釋材料浸提液的制備及濃度檢測
取模擬體液10 mL加入15 mL EP管中,然后分別加入1.2.1項中制備的載藥與未載藥人工緩釋材料,采取避光措施后加入恒溫振蕩器中。分別于第4周、第8周、第12周取其浸提液,每取5 mL浸提液回補同樣體積。將所取得浸提液1 mL用濾器過濾后加入新的EP管中,置入-24℃環(huán)境中保存,待用。應(yīng)用高效液相色譜(high performance liquid chromatography , HPLC)法檢測剩余浸提液中INH、RFP、PZA濃度。采用色譜條件:CN(5 μm),250 mm×4.6 mm色譜柱;流動相采用0.01 mol/L庚烷磺酸鈉(pH=2.2),甲醇∶乙腈=55∶44;檢測波長270 nm;進樣體積10 μL。
1.2.4 實驗分組
實驗分為A、B、C 3組,A組為實驗組、B組為實驗對照組、C組為空白對照組。A組為第4、8、12周采集的載藥人工緩釋材料浸提液,分為3個亞組:4周組(A4W)、8周組(A8W)、12周組(A12W),每個亞組20個樣本。B組為第4、8、12周采集的未載藥人工緩釋材料浸提液,分為3個亞組:4周組(B4W)、8周組(B8W)、12周組(B12W),每個亞組20個樣本。C組為等量蒸餾水,分為C4W、C8W、C12W3個亞組,每個亞組均為20個樣本。
1.2.5 標準結(jié)核分枝桿菌的增殖培養(yǎng)
將標準結(jié)核分枝桿菌接種至L-J培養(yǎng)基培養(yǎng)。對通過培養(yǎng)所得菌落行抗酸染色涂片,按要求觀察300個視野尋找抗酸陽性結(jié)核桿菌。培養(yǎng)陽性者均以鑒別培養(yǎng)基對其菌種進行鑒定,將非結(jié)核分枝桿菌除外。
1.2.6 BacT/ALERT 3D系統(tǒng)培養(yǎng)
將A、B組浸提液及C組蒸餾水各1 mL分別加入BacT/ALERT 3D系統(tǒng)培養(yǎng)瓶,并加入0.5 mL營養(yǎng)液及100 μL結(jié)核菌液(1 mg/mL),置入BacT/ALERT 3D系統(tǒng)培養(yǎng),期間觀察結(jié)果,最終培養(yǎng)至第6周,全程嚴格無菌操作。
觀察培養(yǎng)瓶底部的CO2變色指示劑顏色變化,若指示劑顏色由綠色變?yōu)辄S色,則結(jié)果為陽性,表示培養(yǎng)瓶內(nèi)有細菌生長。若指示劑顏色無變化則結(jié)果為陰性,培養(yǎng)瓶中無細菌生長,記錄培養(yǎng)結(jié)果(見圖2)。
所統(tǒng)計數(shù)據(jù)均采用SPSS 18.0統(tǒng)計軟件處理,2組間比較采用χ2檢驗,P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
應(yīng)用HPLC法檢測載藥人工緩釋材料藥物濃,可見載藥人工緩釋材料第4周浸提液中INH、RFP、PZA濃度均高于其最低殺菌濃度。第8周載藥人工緩釋材料浸提液中INH、RFP仍顯著高于其最低殺菌濃度,然而PZA雖然高于其最低殺菌濃度,但是差距不大。第12周載藥人工緩釋材料浸提液中INH濃度高于其最低殺菌濃度,PZA濃度明顯低于其最低殺菌濃度,RFP濃度已測不到(見表2,圖3)。
a: 培養(yǎng)瓶底部顏色未見變化 b: 培養(yǎng)瓶底部由綠色變?yōu)辄S色
a: No significant changes in colour were observed at bottom of flasks b: Colour changes from green to yellow at bottom of flasks
圖2經(jīng)BacT/ALERT 3D系統(tǒng)培養(yǎng)后陽性與陰性結(jié)果對比
Fig.2Contrast of positive and negative results after cultured by BacT / ALERT 3D fast training instrument
表2載藥人工緩釋材料浸提液抗結(jié)核藥物濃度值
Tab.2Extracts concentration of calcium sulfate/ poly amino acids artificial release material compounded triple anti- tuberculosis drugs μg/mL,n=20
圖3載藥人工緩釋材料浸提液藥物濃度曲線
Fig.3Extracts concentration curve of calcium sulfate/poly amino acids artificial release material compounded triple anti-tuberculosis drugs
各組第4周、第8周、第12周的浸提液在BacT/ALERT 3D系統(tǒng)內(nèi)培養(yǎng)3周后陽性結(jié)果分別
為:A4W15%(3組)、A8W25%(5組)、A12W55%(11組); B4W80%(16組)、B8W85%(17組)、B12W80%(16組); C4W90%(18組)、C8W95%(19組)、C12W90%(18組)。繼續(xù)觀察至第6周,傳感器顏色始終沒有變化。
A、B各亞組對應(yīng)時間點比較P<0.05,2組間差異有統(tǒng)計學意義,說明載藥人工緩釋材料對結(jié)核桿菌具有殺菌作用。B、C各亞組對應(yīng)時間點比較P>0.05,2組之間差異無統(tǒng)計學意義,說明未載藥人工緩釋材料對結(jié)核桿菌生長無影響。
A組中,第4周、第8周、第12周浸提液培養(yǎng)陽性率分別為15%、25%、55%,說明載三聯(lián)抗結(jié)核藥人工緩釋材料隨時間的延長殺菌作用逐漸減弱。
抗結(jié)核藥物的濃度對殺滅結(jié)核分枝桿菌有著至關(guān)重要的作用,抗結(jié)核緩釋藥物可明顯提高局部的藥物濃度,增強局部抗結(jié)核桿菌的效果[4-5]。藥代動力學研究證明保持病灶周圍持續(xù)穩(wěn)定的有效殺菌濃度是殺滅結(jié)核桿菌的關(guān)鍵,INH、RFP、PZA在服藥后2 h左右血藥濃度幾乎都達到或接近峰濃度,而4~6 h進入藥物的清除相[6]。傳統(tǒng)的用藥方式使抗結(jié)核藥物在病灶局部難以起到持續(xù)的殺菌作用,是脊柱結(jié)核病療效不佳的原因之一,并容易產(chǎn)生藥物抵抗性[7-8]。保持病灶局部抗結(jié)核藥濃度大于最低殺菌濃度成為脊柱結(jié)核治療的關(guān)鍵,載有抗結(jié)核藥的緩釋材料由此被引入脊柱結(jié)核的治療。Makino等[9]將RFP包被于微球中,發(fā)現(xiàn)其釋放周期可達20 d。伍衛(wèi)剛等[10]研制出能承載多藥并有控釋特性的載藥人工骨,該控釋載藥人工骨具有藥物控釋和緩釋特性,可以同時實現(xiàn)藥物聯(lián)合治療與骨缺損修復的治療。然而這些研究存在載藥單一或未描述體外抗結(jié)核性能的不足。目前脊柱結(jié)核術(shù)后骨缺損重建的材料主要有自體骨、異體骨、骨修復材料等[11],其中自體骨及異體骨在臨床應(yīng)用中取得了良好的效果[12],然而由于來源有限、可能導致傳染病的傳播等問題使其應(yīng)用受到限制。骨修復材料縮短了成骨時間,提高了成骨質(zhì)量[13],而以骨修復材料為藥物緩釋體系的載體,更能達到修復骨缺損和藥物治療的雙重目的。醫(yī)用硫酸鈣是普遍應(yīng)用的人工材料之一,具有極強的生物相容性、高效誘導成骨活性及骨爬行替代作用,降解吸收的速率與新骨形成基本一致[14-15],是一種安全可靠的骨移植替代品。且本實驗結(jié)果證實本研究所研制材料可使抗結(jié)核藥在體外較長時間保持最低殺菌濃度,殺菌效果良好。
目前結(jié)核病的確診仍然依賴于病原學檢查,有無結(jié)核分枝桿菌生長是診斷結(jié)核病的“黃金標準”[16]。傳統(tǒng)的結(jié)核桿菌檢測方法有抗酸染色法(AFP)、改良羅氏法(L-J)分離培養(yǎng)、核酸擴增法、基因測序法等,方法眾多,但是均存在不同的缺點。BacT/ALERT 3D快培系統(tǒng)采用全封閉式的比色法原理,通過比色計傳感器和反射光感應(yīng)結(jié)核桿菌生長代謝產(chǎn)生的CO2,利用培養(yǎng)瓶底部的指示劑顏色變化來連續(xù)自動顯示培養(yǎng)瓶內(nèi)是否有細菌生長。其檢測速度接近被譽“金標準”的BACTEC 460系統(tǒng)[17],陽性檢出時間為11.8~21 d[18],陽性率為44%[19]。
本研究經(jīng)BacT/ALERT 3D系統(tǒng)對A、B各亞組培養(yǎng),其結(jié)果差異均具統(tǒng)計學意義 (P<0.05),證明A組各亞組均有效殺滅結(jié)核桿菌,且殺菌作用持續(xù)到第84天;A12W培養(yǎng)陽性率為55%,相較與A4W、A8W殺菌作用已變?nèi)?。C組為空白對照組,經(jīng)BacT/ALERT 3D系統(tǒng)培養(yǎng)后結(jié)核桿菌生長良好,說明此液體培養(yǎng)基適合結(jié)核桿菌生長,排除了結(jié)核桿菌及液體培養(yǎng)基對本實驗的影響。B組為實驗對照組,其生長狀況除取決于結(jié)核桿菌與液體培養(yǎng)基外,還受未載藥人工緩釋材料浸提液的影響。B、C各亞組之間差異無統(tǒng)計學意義,說明未載藥人工緩釋材料浸提液對結(jié)核桿菌的生長無影響,排除了其對本實驗的影響。文獻報道血液或細胞內(nèi)抗結(jié)核藥物濃度要達到最低抑菌濃度10倍以上才能殺滅結(jié)核桿菌,即最低殺菌濃度。目前已知INH、RFP、PZA的最低抑菌濃度為0.05 μg/mL、0.05 μg/mL、20 μg/mL,可得3種藥最低殺菌濃度為0.5 μg/mL、0.5 μg/mL、200 μg/mL。第4周時,INH、RFP、PZA濃度均顯著高于其最低殺菌濃度,經(jīng)BacT/ALERT 3D系統(tǒng)培養(yǎng)后亦能充分殺滅結(jié)核分枝桿菌。第8周時,INH、RFP濃度仍顯著高于其最低殺菌濃度,PZA濃度稍高于其最低殺菌濃度,經(jīng)BacT/ALERT 3D系統(tǒng)培養(yǎng)后其陽性率低于第4周,分析原因可能由于PZA濃度降低導致其殺菌效果減弱。第12周時,INH濃度稍高于其最低殺菌濃度,PZA濃度遠遠低于最低殺菌濃度,RFP濃度已測不到。理論上此浸提液殺菌效果應(yīng)低于第4、8周,經(jīng)BacT/ ALERT 3D系統(tǒng)培養(yǎng)的結(jié)果也驗證了此假設(shè)。
本研究表明復合三聯(lián)抗結(jié)核藥硫酸鈣/聚氨基酸人工緩釋材料在體外具有殺滅結(jié)核桿菌作用,其抗結(jié)核作用隨著3種藥在體外濃度的降低而降低。隨著抗結(jié)核藥的應(yīng)用,體內(nèi)結(jié)核桿菌含量減少,但同時可能誘導結(jié)核桿菌產(chǎn)生耐藥性,國內(nèi)李亮等[20]得出化療2個月內(nèi)及2個月以上標本培養(yǎng)陽性率有差異。因此該載藥緩釋材料在體內(nèi)是否能夠維持局部在最低殺菌濃度以上且能有效的殺滅結(jié)核桿菌,尚需進一步的體內(nèi)試驗證明。
參考文獻
[1] Watson TJ. The use of an injectable bone graft substitute in tibial metaphyseal fractures[J]. Orthopedics, 2004, 27(1 Suppl): s103-107.
[2] 袁凱, 陳建庭. 脊柱結(jié)核外科治療植骨材料的臨床應(yīng)用與研究進展[J]. 中國矯形外科雜志, 2012, 20(21): 1957-1959.
[3] 德向研, 施建黨, 王自立, 等. 載三聯(lián)抗結(jié)核藥硫酸鈣/氨基酸聚合物人工骨體內(nèi)緩釋實驗研究[J]. 中國脊柱脊髓雜志, 2013, 23(6): 531-536.
[4] Tomoda K, Kojima S, Kajimoto M, et al. Effects of pulmonary surfactant system on rifampicin release from rifampicin-loaded PLGA microspheres[J]. Colloids Surf B Biointerfaces, 2005, 45(1): 1-6.
[5] Pandey R, Sharma A, Zahoor A, et al. Poly(DL-lactide-co-glycolide) nanoparticle-based inhalable sustained drug delivery system for experimental tuberculosis[J]. J Antimicrob Chemother, 2003, 52(6): 981-986.
[6] Ge Z, Wang Z, Wei M. Measurement of the concentration of three antituberculosis drugs in the focus of spinal tuberculosis[J]. Eur Spine J, 2008, 17(11): 1482-1487.
[7] Campbell PJ, Morlock GP, Sikes RD, et, al. Molecular detection of mutations associated with first- and second-line drug resistance compared with conventional drug susceptibility testing of mycobacterium tuberculosis[J]. Antimicrob Agents Chemother, 2011, 55(5): 2032-2041.
[8] Babalik A, Mannix S, Francis D, et al. Therapeutic drug monitoring in the treatment of active tuberculosis[J]. Can Respir J, 2011, 18(4): 225-229.
[9] Makino K, Nakajima T, Shikamura M, et al. Efficient intracellular delivery of rifampicin to alveolar macrophages using rifampicin-loaded PLGA microspheres: effects of molecular weight and composition of PLGA on release of rifampicin[J]. Colloids Surf B Biointerfaces, 2004, 36(1): 35-42.
[10] 伍衛(wèi)剛, 鄭啟新, 郭曉東. 利福平-異煙肼-控釋型載藥人工骨的實驗研究[J]. 中國生物醫(yī)學工程學報, 2010, 29(1): 137-143.
[11] Ma Y, Cui X, Li HW, et al. Outcomes of anterior or posterior instrumentation under different surgical procedure in the treatment of thoracic and lumbar spinal tuberculosis in adults[J]. Int Orthop, 2012, 36(2): 299-305.
[12] Li M, Du J, Meng H, et al. One-stage surgical management for thoracic tuberculosis by anterior debridement, decompression and autogenous rib graft, and instrumentation[J]. Spine J, 2011, 11(8): 726-733.
[13] Calori GM, Mazza E, Colombo M, et al. The use of bone- graft substitutes in large bone defects: any specific needs? [J]. Injury, 2011, 42(Suppl 2): S56-63.
[14] Kolk A, Handschel J, Drescher W, et al. Current trends and future perspectives of bone substitute materials-From space holders to innovative biomaterials[J]. J Craniomaxillofac Surg, 2012, 40(8): 706-718.
[15] Dasmah A, Sennerby L, Rasmusson L, et al. Intramembraneous bone tissue responses to calcium sulfate: an experimental study in the rabbit maxilla[J]. Clin Oral Implants Res, 2011, 22(12): 1404-1408.
[16] Ocheretina O, Escuyer VE, Mabou MM, et al. Correlation between Genotypic and Phenotypic Testing for Resistance to Rifampin in Mycobacterium tuberculosis Clinical Isolates in Haiti: Investigation of Cases with Discrepant Susceptibility Results[J]. PLoS One, 2014, 9(3): e90569.
[17] Carricajo A, Fonsale N, Vautrin AC, et al. Evaluation of BacT/ALERT 3D liquid culture system for recovery of mycobacteria from clinical specimens using sodium dodecyl( lauryl) sulfate-NaOH decontamination[J]. J Clin Microbiol, 2001, 39(10): 3799-3800.
[18] Piersimoni C, Scarparo C, Callegaro A, et al. Comparison of MB/Bact alert 3D system with radiometric BACTEC system and Lowenstein-Jensen medium for recovery and identification of mycobacteria from clinical specimens: a multicenter study[J]. J Clin Microbiol, 2001, 39(2): 651-657.
[19] 劉斌, 蔣磊, 王自立. BacT/ALERT 3D結(jié)核分支桿菌快速培養(yǎng)系統(tǒng)在脊柱結(jié)核診斷中的應(yīng)用[J]. 寧夏醫(yī)科大學學報, 2010, 32(2): 217-219.
[20] 李亮, 唐俊航, 陳松峰, 等. 脊柱結(jié)核膿液結(jié)核分枝桿菌培養(yǎng)結(jié)果分析[J]. 中華臨床醫(yī)藥雜志, 2003, 8(4): 15-16.