程振玉,楊英杰 ,劉治剛
(1.東北師范大學(xué)化學(xué)學(xué)院,吉林長(zhǎng)春130024;2.吉林化工學(xué)院化學(xué)與制藥工程學(xué)院,吉林吉林132022)
北 五 味 子 [Schisandra chinensis(Turcz.)Baill]作為一種滋補(bǔ)性、鎮(zhèn)靜、鎮(zhèn)咳、抗衰老的傳統(tǒng)中藥,廣泛應(yīng)用于我國(guó)和日本[1].其主要活性成分五味子多糖,具有保肝、抗疲勞、抗氧化、抗腫瘤、免疫促進(jìn)等重要作用[2-4].而最常用的傳統(tǒng)的天然藥物提取方法耗時(shí)、耗溶劑,且提取率很低,嚴(yán)重阻礙了五味子藥用資
源的充分利用,因此高效率提取五味子多糖的新方法有待于急需開(kāi)發(fā),最近超聲波輔助法[5-7]、酶法[8]、
超臨界流體萃取等已被報(bào)道.據(jù)我們所知,微波輔助提取技術(shù)在北五味子多糖提取領(lǐng)域報(bào)道較少.
目前微波輔助提取技術(shù)已經(jīng)被廣泛應(yīng)用于天然藥物研究領(lǐng)域[9-10],該提取技術(shù)具有穿透力強(qiáng)、選擇性好、耗能少、加熱效率高、成本低、操作簡(jiǎn)單等優(yōu)點(diǎn).本研究我們的目標(biāo)是充分探索微波與回流有機(jī)結(jié)合提取北五味子多糖的工藝條件,使多糖的提取率得到顯著提高,準(zhǔn)確分析北五味子中多糖的含量,為北五味子入藥評(píng)價(jià)和質(zhì)量控制提供更全面的分析工具和數(shù)據(jù)支持.
五味子藥材(Schisandra chinensis(Turcz.)Baill.)購(gòu)買于吉林省通化市,產(chǎn)地為長(zhǎng)白山地區(qū),清洗、晾干備用.
葡萄糖(天津大茂化學(xué)試劑廠生產(chǎn),生產(chǎn)批號(hào):20120728),無(wú)水乙醇,苯酚,濃硫酸均為分析純.
微波合成/萃取儀XH-100A(北京祥鵠科技發(fā)展有限公司),722可見(jiàn)分光光度計(jì)(上海欣茂儀器有限公司),旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀RE-52A(上海亞榮生化儀器廠),離心機(jī) Allegra 64R(BACKMAN),循環(huán)水式真空泵SHZ-D(河南省鞏義市英峪儀器一廠).
1.2.1 多糖的提取
五味子粉碎,過(guò)不同孔徑的篩子,于60℃烘干后精確稱量10.0 g,放入圓底燒瓶,加入一定量的蒸餾水,以一定功率的微波在恒溫下輻射一段時(shí)間,完成萃取.然后用傳統(tǒng)回流水提的方法,將該燒瓶置于100℃下加熱回流提取2 h.提取液經(jīng)4 000 r/min離心15 min、去沉淀,用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀濃縮到原體積的五分之一,加入無(wú)水乙醇至80%(v/v),沉淀,靜置過(guò)夜,沉淀物經(jīng)真空干燥得到五味子粗多糖.
1.2.2 多糖含量的測(cè)定
準(zhǔn)確稱量105℃干燥至恒重的葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)樣品100.00 mg,加蒸餾水溶解、搖勻,定容到100 mL,制成1.00 mg/mL貯備液,取出25 mL上述貯備液置于250 mL容量瓶中,制成0.1 mg/mL的葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)溶液[11-12].
分別精密量取上述葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)溶液5、10、15、20、25、30、35 mL,置于 7 個(gè) 50 mL 容量瓶中,加蒸餾水搖勻定容.分別取上述標(biāo)準(zhǔn)溶液1 mL,置于7個(gè)25 mL的帶塞比色管,加入新制5%的苯酚溶液1.0 mL,再迅速加入5 mL濃硫酸,充分搖勻,另取1 mL蒸餾水做空白對(duì)照.于恒溫25℃放置30 min,在490 nm下用722可見(jiàn)分光光度記測(cè)定吸光度,以吸光度(A)為縱坐標(biāo),葡萄糖濃度mg/mL為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線.
1.2.3 換算因子的測(cè)定
精確稱量精制干燥的五味子多糖50 mg,蒸餾水溶解后定容到100 mL,制成0.50 mg/mL溶液,取出4 mL上述溶液置于25 mL容量瓶中,制成80 μg/mL的多糖貯備液.精確量取1 mL,按照測(cè)定標(biāo)準(zhǔn)曲線的方法測(cè)定吸光度值[4,13-15].
按下式計(jì)算換算因子:f=W/CD式子中W:多糖質(zhì)量(mg);D:多糖的稀釋因子;C:多糖溶液中葡萄糖的濃度(mg/mL)
1.2.4 正交實(shí)驗(yàn)優(yōu)化設(shè)計(jì)
在單因素基礎(chǔ)之上,選用L16(44)正交表[16],對(duì)實(shí)驗(yàn)條件進(jìn)行優(yōu)化,確定五味子中可溶性多糖提取的最佳工藝參數(shù),擬定因素與水平,見(jiàn)表1.
表1 正交試驗(yàn)因素水平表
1.2.5 驗(yàn)證試驗(yàn)
準(zhǔn)確稱取60℃干燥至恒重的40目五味子,在微波的最佳工藝條件提取,重復(fù)試驗(yàn)3次,取平均值,驗(yàn)證試驗(yàn)結(jié)果.
實(shí)驗(yàn)制備葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線,回歸曲線和直線方程,見(jiàn)圖1.
圖1 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線
2.2.1 微波輔助萃取時(shí)間的選擇
準(zhǔn)確稱取60℃干燥至恒重粒徑為80目的北五味子10.0 g,加入300 mL蒸餾水,于100℃以700 W 的功率微波分別萃取 5、10、15、20、25、30、35、40 min,用傳統(tǒng)加熱水提的方法,在100℃下回流提取2 h.實(shí)驗(yàn)結(jié)果如圖2所示.
回歸分析表明,在0.01~0.07 mg/mL范圍內(nèi)相關(guān)系數(shù)良好,葡萄糖含量與吸光度值呈良好的線性關(guān)系,實(shí)驗(yàn)測(cè)得換算因子f=1.76.
圖2 處理時(shí)間對(duì)提取率的影響
2.2.2 料液比的選擇
準(zhǔn)確稱取60℃干燥至恒重粒徑為80目的北五味子 10.0 g,分別加入 50、100、200、300、400、500 mL蒸餾水,在100℃下以700 W的微波功率萃取25 min,用傳統(tǒng)加熱水提的方法,在100℃下回流提取2 h.實(shí)驗(yàn)結(jié)果如圖3所示.
圖3 料液比對(duì)提取率的影響
2.2.3 溫度的選擇
準(zhǔn)確稱取60℃干燥至恒重粒徑為80目的北五味子10.0 g,加入200 mL蒸餾水,分別在40、50、60、70、80、90、100 ℃ 下以 700 W 的功率微波輔助萃取25 min,然后用傳統(tǒng)加熱水提的方法,在100℃下回流提取2 h.實(shí)驗(yàn)結(jié)果如圖4所示.
圖4 溫度對(duì)提取率的影響
2.2.4 微波功率的選擇
準(zhǔn)確稱取60℃干燥至恒重粒徑為80目的北五味子10.0 g,加入200 mL蒸餾水,于100℃分別以 400、500、600、700、800、900、1000 W 的功率微波輔助萃取25 min,然后用傳統(tǒng)加熱水提的方法,在100℃下回流提取2 h.實(shí)驗(yàn)結(jié)果如圖5所示.
圖5 溫度對(duì)提取率的影響
2.2.5 藥材粒徑的選擇
圖6 藥材粒徑對(duì)提取率的影響
準(zhǔn)確稱取60℃干燥至恒重粒徑分別為20、40、60、80、100、120 目的北五味子 10.0 g ,加入200 mL蒸餾水,于100℃以800 W的功率微波輔助萃取25 min,然后用傳統(tǒng)加熱水提的方法,在100℃下回流提取2 h.實(shí)驗(yàn)結(jié)果如圖6所示.時(shí)提取率逐漸升高,25 min后,提取率增幅趨緩且逐漸降低,這可能是因?yàn)槲⒉ㄌ幚頃r(shí)電磁波把能量直接傳入分子內(nèi)部,使之瞬時(shí)加熱,因此在短時(shí)間內(nèi)對(duì)細(xì)胞膜的破碎作用較大,溶出物較多,所以提取率上升較快.但當(dāng)達(dá)到飽和時(shí),有效成分不再被溶解,而且還有可能引起多糖的降解,因此提取率也就不再提高,故選擇15~30 min進(jìn)行工藝優(yōu)化.
由圖3可以看出,隨著料液比逐漸增大多糖含量增加,但當(dāng)料液比超過(guò)130時(shí),五味子多糖提取量逐漸下降后趨于平緩.原因是溶劑體積較小時(shí)多糖尚未溶出便達(dá)到溶解平衡,致使產(chǎn)率較低,隨著溶劑的增加,多糖的溶出量增加.但溶劑過(guò)多,雜質(zhì)的析出也會(huì)增多,抑制目標(biāo)成分多糖的析出,因此選擇料液比1 15~1 30進(jìn)行工藝優(yōu)化.
由圖4可知,隨著溫度的升高,五味子多糖的提取率急劇增加.100℃的含量幾乎是70℃的2倍.這是因?yàn)檩^高的溫度一方面有利于植物細(xì)胞壁軟化,利于破壞組織結(jié)構(gòu),使有效物質(zhì)溶出,另一方面可增加提取分子的動(dòng)能,加快分子的運(yùn)動(dòng),加快擴(kuò)散,強(qiáng)化傳質(zhì)效果.故選擇70~100℃進(jìn)行工藝優(yōu)化.
由圖5可以看出,多糖在800 W之前隨著功率的增加而提高,大于800 W以后則降低,這可能是由于輻射功率越高,物系吸收微波能越多,分子運(yùn)動(dòng)加快,固液傳質(zhì)速度亦加快,從而有利于多糖的溶出.然而繼續(xù)增加功率則使提取率降低,可能是因?yàn)槲⒉üβ试黾拥揭欢ǔ潭葧r(shí),有可能促使多糖鏈斷裂,從而提取率下降,因此選擇700~1 000 W進(jìn)行工藝優(yōu)化.
由圖6可以看出顆粒過(guò)小或過(guò)大,提取率均呈下降趨勢(shì).因?yàn)樘崛“B透、溶解、擴(kuò)散三個(gè)過(guò)程,物料過(guò)細(xì),表面積太大,吸附作用增強(qiáng),同時(shí),大量細(xì)胞破裂致使細(xì)胞內(nèi)大量高分子物質(zhì)溶入外液,使外部藥液粘度增大,影響擴(kuò)散速率.從整體來(lái)看,粒徑對(duì)多糖提取率影響很不明顯,40目效果較好,因此本研究選擇40目為最佳粒徑.
2.3.1 正交實(shí)驗(yàn)直觀分析結(jié)果
微波正交試驗(yàn)結(jié)果,見(jiàn)表2.
由圖2可以看出,隨著提取時(shí)間的延長(zhǎng),開(kāi)始
表2 微波正交試驗(yàn)結(jié)果
2.3.2 正交試驗(yàn)方差分析
根據(jù)正交試驗(yàn)直觀分析結(jié)果表2,以因素B作為基準(zhǔn)對(duì)試驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行方差分析,結(jié)果見(jiàn)表3.
表3 方差分析
由表3可知,在影響北五味子多糖提取率的3個(gè)因素中,溫度(A)對(duì)五味子多糖得率有顯著性影響,微波功率(B)和料液比(C)影響較小,3個(gè)因素因數(shù)的影響順序依次為:溫度(A)>微波功率(C)>料液比(D).由此可以得出:微波輔助萃取北五味子多糖的最佳工藝條件是A4B3C3D1,即料液比為1 15,功率為900 W,提取時(shí)間為25 min,提取溫度為100℃.
準(zhǔn)確稱取60℃干燥至恒重的40目五味子,在優(yōu)化的工藝條件下,重復(fù)試驗(yàn)3次取平均值,驗(yàn)證試驗(yàn)結(jié)果.五味子多糖提取率為20.08%.
回流法:按照文獻(xiàn)[17]方法,稱取40目的北五味子粉末10.0 g,加入250 mL蒸餾水,100℃提取4 h,測(cè)得多糖得率14.27%.微波法:稱取40目的北五味子粉末10.0 g,加入150 mL蒸餾水,以900 W的輻射功率于100℃提取25 min,測(cè)得多糖得率為11.43%.微波-回流結(jié)合法:稱取40目北五味子粉末10.0 g,加入150 mL蒸餾水,先以900 W的輻射功率于100℃提取25 min,然后在100℃中水浴回流提取2 h,提取率達(dá)到20.08%,比回流提取率增加了約40%,比微波增加了約75%.
通過(guò)系統(tǒng)的研究傳統(tǒng)回流法與現(xiàn)代微波法提取兩種工藝,發(fā)現(xiàn)單靠其中某一種方法都不能有效的提取多糖,而兩者按照一定的工藝條件有機(jī)結(jié)合則能使多糖提取率大幅度增加,實(shí)現(xiàn)高提取率,達(dá)到方法的優(yōu)化.
長(zhǎng)時(shí)間和高功率的微波輻射都可能會(huì)使多糖糖鏈斷裂,但是這并沒(méi)有影響微波工藝的優(yōu)越性,微波的輔助萃取仍為一個(gè)好方法.微波與回流有機(jī)結(jié)合在一起,短時(shí)間內(nèi)微波使植物細(xì)胞膜結(jié)構(gòu)破裂,在后續(xù)的水提過(guò)程中,加速了溶劑分子對(duì)基體的滲透和待提取成分的溶劑化,從而大大加快提取速度,提高了多糖的提取率.
微波輔助提取五味子多糖最佳工藝條件為料液比1 15、溫度100℃、萃取25 min、微波功率900 W、藥材粒徑為40目.在此條件下,提取率達(dá)到20.08%.表明微波微波輔助萃取五味子多糖耗費(fèi)時(shí)間少,溶劑用量小,且能顯著提高多糖的提取率,因此微波輔助法是提取北五味子多糖的一種優(yōu)先選擇方法.
[1] Huang T H,Shen P N,Shen Y J.J.Chromatography A[J].2005,1066:239-242.
[2] 可成友,馬春雁,邊薔,等.五味子多糖研究概況分析[J].時(shí)珍國(guó)醫(yī)國(guó)藥,2009,20(7):1729-1731.
[3] Amira M,Gamal-Eldeen,Eman F A h med,et al.In vitro canner chemo-preventive properties of polysaccharide extract from the brown alga,Sargassum latifolium[J].Food and Chemical Toxicology,2009,47(6):1378-1384.
[4] 閆舒,仰榴青,趙婷等.五味子多糖最新研究進(jìn)展[J].江蘇大學(xué)學(xué)報(bào):醫(yī)學(xué)版,2009,19(4):366-368.
[5] 孟憲軍,李冬男,汪艷群等.五味子多糖超聲波提取條件的研究[J].食品工業(yè)科技,2010,31(4):313-319.
[6] 高曉旭,孟憲軍,李繼海等.北五味子多糖超聲波提取條件的優(yōu)化[J].食品研究與開(kāi)發(fā),2008,29(9):27-30.
[7] 高曉旭,李繼海,姜貴全等.北五味子多糖超聲波提取及對(duì)油脂的抗氧化性能[J].東北林業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2009,37(4):34-36.
[8] 可成友,梁宏斌,吳曉芳等.北五味子多糖的酶法提取工藝研究[J].現(xiàn)代中藥研究與實(shí)踐,2010,24(2):47-50.
[9] 趙晨晨,承 偉,王立冬.微波輔助提取絡(luò)石藤總黃酮的工藝研究[J].中草藥,2012,43(3):718-720.
[10]皺建國(guó),劉飛,劉燕燕等.響應(yīng)面法優(yōu)化微波輔助提取枳殼中總黃酮工藝[J].食品科學(xué),2012,33(2):24-28
[11] Dubois M,Gilles K A,Hamilton,J K,et al.colorimetric method for determination ofsugars and related substances[J].Analytical Chemistry.1956,28:350-356.
[12]趙文竹,殷涌光,于志鵬等.玉米須多糖微波提取工藝及其紅外光譜結(jié)構(gòu)分析[J].吉林大學(xué):工學(xué)版,2012,42(2):515-519.
[13]薛梅,周靜.五味子多糖的提取及含量測(cè)定[J].陜西中醫(yī),2003,24(3):267-268.
[14]譚曉虹,王治寶,李如章.北五味子多糖的提取和含量測(cè) 定[J].時(shí) 珍 國(guó) 醫(yī) 國(guó) 藥,2007,18(6):1463-1464.
[15]孟憲軍,李冬男,汪艷群等.響應(yīng)曲面法優(yōu)化五味子多糖的提取工藝[J].食品科學(xué),2010,31(4):11-115.
[16]李超,王磊,仁遙等.黑木耳多糖的微波提取及含量測(cè)定[J].食品工業(yè),2012,33(8):128-131.
[17]李巧云,居紅芳,翟春.五味子多糖提取工藝的研究[J].食品科學(xué),2004,25(5):105-109.