劉 偉,柴文戍
銅綠假單胞菌是機(jī)體免疫力低下者急性院內(nèi)感染的重要原因,也是肺纖維化或支氣管擴(kuò)張患者慢性或反復(fù)肺感染的最常見原因[1]。綠膿菌素(PCN)是銅綠假單胞菌產(chǎn)生的毒力因子,對(duì)哺乳類細(xì)胞有很多破壞性作用。研究證明了PCN通過產(chǎn)生活性氧(ROS)對(duì)內(nèi)皮細(xì)胞[2]和上皮細(xì)胞[3]產(chǎn)生氧化損傷作用。一氧化氮(NO)是哺乳類動(dòng)物宿主防御的重要成分,是獨(dú)特的抗菌劑,NO抑制各種微生物的生長(zhǎng),包括病毒、細(xì)菌、寄生蟲和真菌[4]。NO衍生的活性分子,如過氧亞硝基(ONOO-),可以誘導(dǎo)病原體氧化損傷。研究證明NO在缺血再灌注損傷時(shí)能夠防止氧化損傷,并減少哺乳動(dòng)物宿主細(xì)胞的氧化壓力[5]。S-亞硝基-N-乙酰半胱氨酸(SNAC)是NO供體,可以改善細(xì)胞氧化損傷。本實(shí)驗(yàn)主要探索PCN對(duì)感染鼠體內(nèi)ROS、超氧化物歧化酶(SOD)、白介素8(IL-8)的作用及其機(jī)制,進(jìn)一步探討SNAC對(duì)此作用的影響。
1.1 材料 PCN購(gòu)買于Sigma公司。實(shí)驗(yàn)所用動(dòng)物均為無(wú)病原體的8~12周齡、體質(zhì)量230~250 g的健康雄性Sprague-Dawley(SD)大鼠(遼寧醫(yī)學(xué)院動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心提供)。試劑盒購(gòu)自南京建成生物工程研究所,N-乙酰半胱氨酸(NAC)與亞硝酸鈉(NaNO2)購(gòu)買于生工生物工程(上海)股份有限公司。
1.2 方法
1.2.1 動(dòng)物模型制備及分組 采用隨機(jī)數(shù)字表法將90只健康雄性SD大鼠分為對(duì)照組、PCN組和SNAC組,每組30只。對(duì)照組和PCN組大鼠分別腹腔注射1 ml/100 g 0.9%氯化鈉溶液,SNAC組大鼠腹腔注射SNAC(1 ml/100 g)。用1%戊巴比妥鈉溶液(40 mg/kg)行大鼠腹腔注射麻醉,對(duì)照組氣管內(nèi)接種0.9%氯化鈉溶液0.2 ml,PCN組和SNAC組分別氣管內(nèi)接種PCN 0.2 ml(6×108CFU/ml)。
1.2.2 SNAC準(zhǔn)備 NAC和NaNO2用于SNAC準(zhǔn)備[6]。由等摩爾的NAC和NaNO2混合生成SNAC水溶液,室溫條件下避光混合攪拌20 min。0.9%氯化鈉溶液稀釋SNAC到終濃度100 nmol/L并立即使用。
1.2.3 病理標(biāo)本取材及處理 分別于PCN感染后6、18、30、48、72 h,用1%戊巴比妥鈉溶液(40 mg/kg)進(jìn)行腹腔麻醉,處死大鼠。然后分離氣管,經(jīng)氣管注入5 ml無(wú)菌磷酸鹽緩沖液(PBS)行右側(cè)支氣管肺泡灌洗,反復(fù)5次,回收后注入無(wú)菌試管,回收率≥80%?;厥盏闹夤芊闻莨嘞匆?BALF)離心(離心半徑 13.5 cm,2 000 r/min,10 min),取上清液保存于-20 ℃,統(tǒng)一進(jìn)行BALF細(xì)胞總數(shù)和中性粒細(xì)胞計(jì)數(shù)。取左上肺浸泡于10%甲醛溶液中,做蘇木素-伊紅(HE)染色;取左肺余肺1 g加入9 ml 0.86%冷氯化鈉溶液制成肺組織勻漿,離心,取上清液保存于-70 ℃,統(tǒng)一進(jìn)行生化指標(biāo)測(cè)定。
1.2.4 大體觀察 分別于PCN感染后6、18、30、48、72 h觀察大鼠精神狀態(tài)、進(jìn)食及飲水情況及肺炎癥狀,并觀察肺組織外觀顏色、水腫、出血等炎性表現(xiàn)及鏡下觀察相應(yīng)時(shí)間點(diǎn)肺臟病理組織形態(tài)學(xué)變化。
1.2.5 肺組織ROS含量、SOD活性的測(cè)定 肺組織勻漿ROS含量及SOD活性測(cè)定按試劑盒說明書操作步驟進(jìn)行。
1.2.6 肺組織IL-8含量的測(cè)定 使用酶聯(lián)免疫吸附法(ELISA)測(cè)定肺組織勻漿IL-8含量,按試劑盒說明書操作步驟進(jìn)行。
2.1 大鼠的一般狀態(tài)及肺組織外觀 PCN感染6 h后大鼠出現(xiàn)精神萎靡、食欲不振、寒顫、發(fā)熱、呼吸困難,感染30 h最明顯。對(duì)照組大鼠肺外觀呈粉紅色,無(wú)明顯異常改變;PCN組PCN感染后6 h時(shí)可見肺組織表面散在點(diǎn)狀出血;18~72 h肺體積增大,肺組織暗紅色,呈片狀出血;SNAC組肺組織病變較PCN組明顯減輕。
2.2 肺組織形態(tài)學(xué)變化 光鏡下可見對(duì)照組肺組織結(jié)構(gòu)清晰,肺泡間隔無(wú)增厚及炎性細(xì)胞浸潤(rùn);PCN組肺組織肺泡壁結(jié)構(gòu)完整性被破壞,肺泡間隔增厚,明顯充血、水腫,肺泡內(nèi)大量炎性細(xì)胞浸潤(rùn),30 h出現(xiàn)典型肺炎表現(xiàn);與PCN組相比,SNAC組肺組織炎性表現(xiàn)明顯減輕,肺泡壁結(jié)構(gòu)完整性較好,充血、水腫減輕,炎性細(xì)胞浸潤(rùn)減少(見圖1)。
2.3 3組大鼠不同時(shí)間BALF細(xì)胞總數(shù)及中性粒細(xì)胞計(jì)數(shù)比較 3組大鼠PCN感染后6、18、30、48、72 h BALF細(xì)胞總數(shù)及中性粒細(xì)胞計(jì)數(shù)比較,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);其中PCN組和SNAC組各時(shí)間點(diǎn)BALF細(xì)胞總數(shù)及中性粒細(xì)胞計(jì)數(shù)較對(duì)照組均增高,SNAC組各時(shí)間點(diǎn)BALF細(xì)胞總數(shù)及中性粒細(xì)胞計(jì)數(shù)較PCN組均降低,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05,見表1、2)。
2.4 3組大鼠不同時(shí)間ROS含量比較 3組大鼠PCN感染后6、18、30、48、72 h ROS含量比較,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);其中PCN組和SNAC組各時(shí)間點(diǎn)ROS含量較對(duì)照組均增高,SNAC組各時(shí)間點(diǎn)ROS含量較PCN組均降低,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05,見表3)。
2.5 3組大鼠不同時(shí)間SOD活性比較 3組大鼠PCN感染后6、18、30、48、72 h SOD活性比較,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);其中PCN組和SNAC組各時(shí)間點(diǎn)SOD活性較對(duì)照組均降低,SNAC組各時(shí)間點(diǎn)SOD活性較PCN組均增高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05,見表4)。
2.6 3組大鼠不同時(shí)間IL-8含量比較 3組大鼠PCN感染后6、18、30、48、72 h IL-8含量比較,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);其中PCN組和SNAC組各時(shí)間點(diǎn)IL-8含量較對(duì)照組均增高,SNAC組各時(shí)間點(diǎn)IL-8含量較PCN組均降低,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05,見表5)。
注:a對(duì)照組肺組織結(jié)構(gòu)清晰,肺泡間隔無(wú)增厚及炎性細(xì)胞浸潤(rùn);b PCN組肺泡壁結(jié)構(gòu)完整性被破壞,肺泡間隔增厚,明顯充血、水腫,肺泡內(nèi)大量炎性細(xì)胞浸潤(rùn);c SNAC組肺組織炎性表現(xiàn)減輕,肺泡壁結(jié)構(gòu)完整性好,充血、水腫減輕,炎性細(xì)胞浸潤(rùn)減少
圖1 PCN感染后30 h肺組織形態(tài)學(xué)變化(HE染色,×200)
注:與對(duì)照組比較,*P<0.05;與PCN組比較,△P<0.05
表2 3組大鼠不同時(shí)間BALF中性粒細(xì)胞計(jì)數(shù)比較
注:與對(duì)照組比較,*P<0.05;與PCN組比較,△P<0.05
表3 3組大鼠不同時(shí)間ROS含量比較
注:與對(duì)照組比較,*P<0.05;與PCN組比較,△P<0.05
表4 3組大鼠不同時(shí)間SOD活性比較
注:與對(duì)照組比較,*P<0.05;與PCN組比較,△P<0.05
表5 3組大鼠不同時(shí)間IL-8含量比較
注:與對(duì)照組比較,*P<0.05;與PCN組比較,△P<0.05
本研究結(jié)果表明PCN感染后,PCN組肺組織明顯充血、水腫,大量炎性細(xì)胞浸潤(rùn),BALF檢測(cè)到炎性細(xì)胞顯著增加,以中性粒細(xì)胞為主,ROS含量增高,SOD活性降低,IL-8含量增加,說明PCN發(fā)揮毒性作用與氧化損傷有關(guān)。而SNAC干預(yù)后,SNAC組大鼠一般狀態(tài)較好,肺組織炎性表現(xiàn)減輕,BALF檢測(cè)到的炎性細(xì)胞明顯減少,ROS含量減少,SOD活性增加,IL-8含量減少,表明SNAC對(duì)小鼠體內(nèi)的PCN氧化損傷具有保護(hù)作用。研究還表明大鼠的一般狀態(tài)、肺組織病理炎性表現(xiàn)在PCN感染后30 h時(shí)表現(xiàn)最明顯。
上述表現(xiàn)其原因考慮為,SNAC是NO供體,NO不僅具有免疫調(diào)節(jié)作用而且直接作用于微生物,NO既可以殺死病原體又可以抑制其復(fù)制。許多機(jī)制參與氮氧化物的抗菌作用,包括改變蛋白質(zhì)硫醇和金屬中心的相互作用[7-8],阻塞微生物基本生理過程[9-10],破壞細(xì)菌的蛋白質(zhì)鐵硫集群而導(dǎo)致催化毒性氧化反應(yīng)的游離鐵的釋放[11]。NO和相關(guān)物質(zhì)通過擾亂參與DNA復(fù)制的鋅蛋白和與酪氨酰激酶反應(yīng)抑制核苷酸還原酶,進(jìn)而抑制細(xì)菌DNA復(fù)制[12]。此外,線粒體是ROS的重要來源,其損傷可能導(dǎo)致細(xì)胞氧化損傷,SNAC能改善線粒體的功能,因此導(dǎo)致ROS產(chǎn)生減少[6],發(fā)揮其保護(hù)氧化損傷的作用。而且有報(bào)道認(rèn)為在假單胞菌肺炎動(dòng)物模型中,吸入NO可以減少細(xì)菌的負(fù)荷[13]。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明PCN通過氧化應(yīng)激導(dǎo)致細(xì)胞核組織損傷。SNAC作為NO供體,不僅具有抗菌作用,而且對(duì)氧化損傷具有一定的保護(hù)作用。
研究表明PCN主要通過介導(dǎo)ROS的產(chǎn)生造成氧化應(yīng)激而發(fā)揮其毒性作用,PCN可以被NAD(P)H 或硫醇直接還原,通過有氧氧化循環(huán)產(chǎn)生超氧化物(O2-)和過氧化氫(H2O2)[14]。氧化損傷是氧化和抗氧化過程失衡的結(jié)果,抗氧化防御系統(tǒng)(如SOD)在消除體內(nèi)氧化循環(huán)中起著重要作用。SOD是機(jī)體內(nèi)重要的抗氧化劑,可消除過剩的氧自由基及其衍生物,保護(hù)細(xì)胞免受損傷[15-17]。IL-8為重要的中性粒細(xì)胞趨化因子,是宿主防御病原菌感染機(jī)制中起重要作用的前炎性細(xì)胞因子,對(duì)中性粒細(xì)胞具有較強(qiáng)的趨化作用和激活作用[18-19],IL-8釋放的增加是導(dǎo)致感染肺部中性粒細(xì)胞增多最主要的原因。研究證據(jù)表明,氧化應(yīng)激可以引發(fā)炎癥,反過來炎癥加劇了活性氧的產(chǎn)生[20];肺炎性疾病[21]、暴露于環(huán)境微粒肺細(xì)胞[22]的氧化應(yīng)激誘導(dǎo)IL-8表達(dá)并乙?;?;氧化應(yīng)激能硝基化人組蛋白脫乙?;?(HDAC2),導(dǎo)致IL-8表達(dá)增加[23];Ivison等[24]研究表明H2O2通過磷酸化p-38 MAP酶和延長(zhǎng)I-κB降解與核因子(NF)-κB激活的協(xié)同作用使IL-8產(chǎn)生增加。因此氧化應(yīng)激引發(fā)IL-8表達(dá)上調(diào)可能是聯(lián)系氧化應(yīng)激和炎癥之間的一個(gè)重要環(huán)節(jié)。
總之,本研究結(jié)果提示,作為NO供體的SNAC不僅具有抗菌作用,并可能通過影響ROS、SOD的表達(dá)而發(fā)揮一定抗氧化作用,但本實(shí)驗(yàn)檢測(cè)的炎性因子及抗氧化酶有限,仍需實(shí)驗(yàn)進(jìn)一步研究。
1 Muller M.Premature cellular senescence induced by pyocyanin,a redox-active Pseudomonas aeruginosa toxin[J].Free Radic Biol Med,2006,41(11):1670-1677.
2 Muller M.Pyocyanin induces oxidative stress in human endothelial cells and modulates the glutathione redox cycle[J].Free Radic Biol Med,2002,33(11):1527-1533.
3 O′Malley YQ,Abdalla MY,McCormick ML,et al.Subcellular localization of Pseudomonas pyocyanin cytotoxicity in human lung epithelial cells[J].Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol,2003,284(2):L420-430.
4 Fang FC.Antimicrobial reactive oxygen and nitrogen species:concepts and controversies[J].Nat Rev Microbiol,2004,2(10):820-832.
5 Husain M,Bourret TJ,McCollister BD,et al.Nitric oxide evokes an adaptive response to oxidative stress by arresting respiration[J].J Biol Chem,2008,283(12):7682-7689.
6 Andraus W,Souza GF,Oliveira MG,et al.S-nitroso-N-acetylcysteine ameliorates ischemia-reperfusion injury in the steatotic liver[J].Clinics,2010,65(7):715-721.
7 Foster MW,Hess DT,Stamler JS.Protein S-nitrosylation in health and disease:current perspective[J].Trends in Molecular Medicine,2009,15(9):391-404.
8 Han G,Zippin JH,Friedman A.From bench to bedside:the therapeutic potential of nitric oxide in dermatology[J].J Drugs Dermatol,2009,8(6):586-594.
9 Gusarov I,Shatalin K,Starodubtseva M,et al.Endogenous nitric oxide protects bacteria against a wide spectrum of antibiotics[J].Science,2009,325(5946):1380-1384.
10 Akaike T,Okamoto T,Zaki MH,et al.New paradigm of host defense against intracellular pathogens by nitric oxide[J].Nihon Hansenbyo Gakkai Zasshi,2009,78(1):41-47.
11 Keyer K,Imlay JA.Superoxide accelerates DNA damage by elevating free-iron levels[J].Proc Natl Acad Sci U S A,1996,93(24):13635-13640.
12 Schapiro JM,Libby SJ,F(xiàn)ang FC.Inhibition of bacterial DNA replication by zinc mobilization during nitrosative stress[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2003,100(14):8496-8501.
13 Webert KE,Vanderzwan J,Duggan M,et al.Effects of inhaled nitric oxide in a rat model of Pseudomonas aeruginosa pneumonia[J].Crit Care Med,2000,28(7):2397-2405.
14 Rada B,Jendrysik MA,Pang L,et al.Pyocyanin-enhanced neutrophil extracellular trap formation requires the NADPH oxidase[J].PLoS One,2013,8(1):e54205.
15 羅招凡,勞偉思,梁偉南,等.血清同型半胱氨酸和SOD水平與急性腦梗死的相關(guān)性研究[J].中國(guó)衛(wèi)生檢驗(yàn)雜志,2011,21(10):2463-2464.
16 高天.顱內(nèi)復(fù)雜動(dòng)脈瘤患者圍術(shù)期血清基質(zhì)金屬蛋白酶-9、超氧化物歧化酶、丙二醛及一氧化氮水平變化研究[J].實(shí)用心腦肺血管病雜志,2012,20(1):52.
17 蘇顯明,智曉文,劉景委,等.丹紅注射液對(duì)老年冠心病患者血中對(duì)氧磷酶1、超氧化物歧化酶活性及丙二醛水平的影響研究[J].中國(guó)全科醫(yī)學(xué),2011,14(11):3804.
18 Kunkel SL,Standiford T,Kasahara K,et al.Interleukin-8(IL-8):the major neutrophil chemotactic factor in the lung[J].Exp Lung Res,1991,17(1):17-23.
19 程剛,陸士奇,李巖.急性胰腺炎患者血清降鈣素原和腫瘤壞死因子α及白介素8的動(dòng)態(tài)變化及臨床意義[J].中國(guó)全科醫(yī)學(xué),2012,15(9):3180.
20 Zhou J,Jang YP,Kim SR,et al.Complement activation by photooxidation products of A2E,a lipofuscin constituent of the retinal pigment epithelium[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2006,103(44):16182-16187.
21 Ito K,Ito M,Elliott WM,et al.Decreased histone deacetylase activity in chronic obstructive pulmonary disease[J].N Engl J Med,2005,352(19):1967-1976.
22 Gilmour PS,Rahman I,Donaldson K,et al.Histone acetylation regulates epithelial IL-8 release mediated by oxidative stress from environmental particles[J].Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol,2003,284(3):L533-540.
23 Ito K,Hanazawa T,Tomita K,et al.Oxidative stress reduces histone deacetylase 2 activity and enhances IL-8 gene expression:role of tyrosine nitration[J].Biochem Biophys Res Commun,2004,315(1):240-245.
24 Ivison SM,Wang C,Himmel ME,et al.Oxidative stress enhances IL-8 and inhibits CCL20 production from intestinal epithelial cells in response to bacterial flagellin[J].Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol,2010,299(3):G733-741.
本文鏈接
銅綠假單胞菌是一種定植于支氣管擴(kuò)張、肺囊性纖維化、慢性阻塞性肺疾病患者下呼吸道的機(jī)會(huì)致病菌,可持續(xù)刺激宿主免疫反應(yīng)而致進(jìn)展性的氣道破壞,具有多重耐藥的特點(diǎn)。一旦感染,臨床治療十分困難,現(xiàn)已成為院內(nèi)感染的主要致病菌。
綠膿菌素是銅綠假單胞菌分泌的重要的細(xì)菌毒力因子之一,可降低支氣管黏液流動(dòng)速度,有利于銅綠假單胞菌定植于呼吸道;同時(shí),它還逐步降低呼吸道纖毛擺動(dòng),最后可發(fā)展為廣泛的纖毛停滯,進(jìn)而導(dǎo)致上皮損傷。