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        羔羊卵母細(xì)胞體外胚胎生產(chǎn)影響因素分析

        2013-12-31 00:00:00郭洪等
        湖北農(nóng)業(yè)科學(xué) 2013年19期

        摘要:利用幼畜胚胎體外生產(chǎn)與胚胎移植(Juvenile in vitro embryo transfer,JIVET)技術(shù)能夠獲得大量卵母細(xì)胞,縮短世代間隔,加快育種進(jìn)程。但幼畜卵母細(xì)胞形態(tài)及代謝與成年動(dòng)物存在差異,這導(dǎo)致幼畜胚胎發(fā)育能力低。目前,對(duì)JIVET技術(shù)的研究主要是通過(guò)改進(jìn)激素處理方案及體外培養(yǎng)條件來(lái)增加卵母細(xì)胞數(shù)量并增強(qiáng)卵母細(xì)胞發(fā)育能力。從供體羔羊的選擇、激素處理和卵母細(xì)胞的發(fā)育等方面對(duì)該技術(shù)進(jìn)行了分析。

        關(guān)鍵詞:幼畜胚胎體外生產(chǎn)與胚胎移植(Juvenile in vitro embryo transfer,JIVET)技術(shù);羔羊;卵母細(xì)胞

        中圖分類號(hào):S826;S814.6 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:A 文章編號(hào):0439-8114(2013)19-4726-04

        幼畜胚胎體外生產(chǎn)與胚胎移植(Juvenile in vitro embryo transfer,JIVET)技術(shù)是集幼畜超數(shù)排卵、卵母細(xì)胞的體外成熟和體外受精、胚胎體外培養(yǎng)和胚胎移植為一體的高新技術(shù)體系。利用JIVET技術(shù)能夠獲得大量卵母細(xì)胞,縮短優(yōu)良母畜繁殖的世代間隔,加快品種培育的進(jìn)程[1]。與傳統(tǒng)的綿羊超數(shù)排卵和胚胎移植(MOET)方案相比,由于生產(chǎn)體外胚胎的卵母細(xì)胞供體母畜的年齡提前到8~12周齡,故生產(chǎn)后代羔羊的世代間隔縮短為6個(gè)月,同時(shí)還大大增加了后代數(shù)量,繁殖效率成倍提高。此外,JIVET技術(shù)結(jié)合性控精液進(jìn)行后代生產(chǎn),也能提高基因遺傳率約5%,這為該技術(shù)的商業(yè)化應(yīng)用提供了非常廣闊的應(yīng)用前景。

        JIVET技術(shù)應(yīng)用的原理在于羔羊出生后的前2個(gè)月卵巢生長(zhǎng)較快,卵巢的質(zhì)量在4周齡和8周齡時(shí)分別增加了6.8倍和10.8倍,生長(zhǎng)卵泡數(shù)量在4周齡時(shí)顯著增加[2]。生長(zhǎng)卵泡數(shù)量和卵巢的質(zhì)量在8~12周齡時(shí)下降,一直持續(xù)到33周齡[2]。卵泡在4周齡時(shí)出現(xiàn)閉鎖信號(hào),在8~10周齡時(shí)達(dá)到最大值[3]。這些結(jié)果顯示3~8周齡時(shí)卵泡生長(zhǎng)旺盛,能搜集到大量的未閉鎖卵母細(xì)胞。研究表明,羔羊?qū)ν庠创傩韵偌に仄鸱磻?yīng),但部分羔羊?qū)に夭幻舾衃3]。與成年羊相比,羔羊胚胎體外培養(yǎng)時(shí)以及移植到受體后的發(fā)育能力都很低[4],這導(dǎo)致胚胎移植后胎兒流產(chǎn)和畸形率高[5],極大地制約了JIVET技術(shù)的商業(yè)化應(yīng)用。而通過(guò)選擇適當(dāng)?shù)募に靥幚矸桨负腕w外胚胎生產(chǎn)體系能顯著提高3~4周齡羔羊生產(chǎn)后代的能力[6,7]。目前研究表明,影響JIVET效率的因素主要包括供體的選擇、超排方案和卵母細(xì)胞的發(fā)育能力等[8,9]。本文就羔羊JIVET技術(shù)的影響因素進(jìn)行系統(tǒng)分析。

        1 供體羔羊的選擇

        理想的供體羔羊在激素處理后將產(chǎn)生大量的卵泡和高發(fā)育能力的卵母細(xì)胞。影響供體羔羊選擇的因素包括遺傳背景、年齡等。

        1.1 遺傳背景

        羔羊遺傳背景主要包括品種、基因型和個(gè)體差異等。國(guó)內(nèi)外研究結(jié)果表明,成年后排卵數(shù)高的綿羊品種性成熟前卵巢和卵泡發(fā)育滯后于成年后排卵數(shù)低的品種,且前者對(duì)激素的敏感性低于后者[10,11]。Sonjaya等[12]對(duì)剛出生的羔羊卵巢進(jìn)行組織切片觀察,發(fā)現(xiàn)法蘭西(成年后排卵數(shù)低)各級(jí)卵泡數(shù)比羅姆尼(成年后排卵數(shù)高)多,且前者各級(jí)卵泡直徑大于后者。4周齡時(shí),法蘭西3級(jí)卵泡數(shù)量多于羅姆尼,且前者直徑大于后者。外源激素分別處理4周齡羔羊,能夠誘導(dǎo)法蘭西羔羊排卵,而羅姆尼不反應(yīng)。白佳樺[10]用相同激素處理方法處理幾個(gè)品種的羔羊,平均每只羔羊采集到的卵母細(xì)胞數(shù)排卵數(shù)高的品種顯著低于排卵數(shù)低的品種。多胎基因FecB能夠影響羔羊卵泡發(fā)育,3月齡不攜帶FecB基因的布魯拉羊(Booroola)比攜帶FecB基因的布魯拉羊擁有更多的大卵泡[11]。Ptak等[13]發(fā)現(xiàn)一只羔羊卵母細(xì)胞具有很高的發(fā)育能力,其生產(chǎn)的5只同胞羔羊的卵母細(xì)胞同樣具有很高的發(fā)育能力,這說(shuō)明基因型一致的羔羊卵母細(xì)胞發(fā)育能力也趨于一致。

        1.2 供體年齡

        不同年齡段羔羊激素處理后卵巢反應(yīng)不同。Armstrong[14]認(rèn)為激素處理羔羊的最佳年齡為4~6周齡,因?yàn)榇藭r(shí)大部分卵泡處于應(yīng)答狀態(tài)。O’Brien等[15]指出,3~6周齡羔羊卵母細(xì)胞超排效果好于16~24周齡羔羊。Morton等[6]用激素處理不同年齡(3~4周齡和6~7周齡)羔羊,發(fā)現(xiàn)羔羊年齡影響到子宮質(zhì)量,但對(duì)卵巢質(zhì)量、卵泡數(shù)量和獲得的卵母細(xì)胞數(shù)量沒(méi)有影響。然而,6~7周齡羔羊卵母細(xì)胞囊胚率(27.9%)高于3~4周齡羔羊(20.4%),證明羔羊隨著年齡的增長(zhǎng)其卵母細(xì)胞發(fā)育能力增強(qiáng)。盡管如此,年輕的羔羊(4~6周齡)激素處理效果和最終獲得的后代數(shù)顯著高于年長(zhǎng)的羔羊。

        2 激素誘導(dǎo)應(yīng)答

        幼畜對(duì)激素的應(yīng)答個(gè)體差異很大[5,13]。Ptak等[13]發(fā)現(xiàn)50%~72%的2~7月齡羔羊?qū)に胤磻?yīng)(卵泡數(shù)量和大小)不明顯。相反,Morton等[6]發(fā)現(xiàn)所有3~4周齡羔羊卵巢對(duì)激素應(yīng)答,其中24%應(yīng)答弱,44%應(yīng)答中等,32%應(yīng)答強(qiáng);對(duì)6~7周齡羔羊的試驗(yàn)結(jié)果也相差不大。Ptak等[5,13]發(fā)現(xiàn)對(duì)激素應(yīng)答弱的羔羊卵母細(xì)胞體外培養(yǎng)后不能發(fā)育至囊胚。相反,Morton等[6]發(fā)現(xiàn)3~4周齡和6~7周齡羔羊卵巢激素應(yīng)答弱的卵母細(xì)胞具有發(fā)育到囊胚的能力。然而,激素應(yīng)答弱和應(yīng)答中等的羔羊卵巢其可用卵母細(xì)胞百分比無(wú)顯著差異,但高于激素應(yīng)答強(qiáng)的羔羊。3~4周齡羔羊不同激素應(yīng)答強(qiáng)度的卵母細(xì)胞卵裂率和囊胚率無(wú)顯著差異;但6~7周齡羔羊激素應(yīng)答強(qiáng)的卵母細(xì)胞卵裂率低[6]。激素處理方案的改變使更多的羔羊?qū)に貞?yīng)答,提高了JIVET效率。選擇適當(dāng)?shù)募に靥幚矸椒苁勾蟛糠指嵫驊?yīng)答明顯。

        3 激素處理方法

        激素處理羔羊能增加卵巢中可用卵泡數(shù)量,并獲得大量卵母細(xì)胞[6,15]。激素處理后羔羊卵母細(xì)胞發(fā)育速度加快[6,15]。幼畜卵巢對(duì)激素應(yīng)答及卵母細(xì)胞發(fā)育能力增強(qiáng)的確切機(jī)制還不清楚。激素應(yīng)答過(guò)程伴隨著卵泡變大及卵母細(xì)胞生物合成反應(yīng)的進(jìn)行[14],為卵母細(xì)胞受精后的發(fā)育做準(zhǔn)備。激素處理后,羔羊卵泡細(xì)胞內(nèi)化學(xué)物質(zhì)和卵泡內(nèi)環(huán)境發(fā)生改變[15]。例如,誘導(dǎo)顆粒細(xì)胞內(nèi)促性腺激素受體的形成,促使卵泡對(duì)促性腺激素反應(yīng)能力增強(qiáng),從而提高卵母細(xì)胞質(zhì)量和功能。羔羊超數(shù)排卵的激素用法一般參照成年羊超排方案,即促性腺激素法或孕酮結(jié)合促性腺激素法。

        3.1 促性腺激素法

        單次或多次注射促卵泡成熟激素(FSH)不能影響每只羔羊采集的卵母細(xì)胞數(shù)量[5,16]。然而,多次FSH處理能提高卵母細(xì)胞發(fā)育到囊胚的能力[5,17]。羔羊超數(shù)排卵的激素用量低于成年綿羊,因?yàn)楦嵫蝮w重低于成年羊且羔羊卵泡對(duì)激素非常敏感[2]。但相比成年動(dòng)物,低劑量促性腺激素造成激素與卵母細(xì)胞結(jié)合的量減少,這就造成卵母細(xì)胞體外成熟時(shí)發(fā)育能力減弱。研究表明大劑量促性腺激素能提高幼畜卵母細(xì)胞細(xì)胞質(zhì)成熟能力。目前,羔羊JIVET的最佳FSH劑量為130~160 mg[6,17,18]。馬絨毛膜促性腺激素(eCG)不能增加羔羊超數(shù)排卵后采集的卵母細(xì)胞數(shù)量,但能提高其囊胚率[17,18]。目前報(bào)道的能顯著提高卵母細(xì)胞囊胚率的超排方法是每隔12 h注射1次FSH(40 mg/次),連續(xù)注射4次,最后1次注射FSH時(shí)同時(shí)注射500 IU eCG,在第一次注射FSH后48 h采集卵母細(xì)胞[17]。

        3.2 孕酮+促性腺激素法

        促性腺激素和孕酮一起使用能增加幼畜超排的卵母細(xì)胞數(shù)量和體外發(fā)育能力[6,15]。孕酮處理7 d后停藥,卵巢上可見(jiàn)卵泡比未用藥前多了2倍[16]。然而,停藥后卵母細(xì)胞處于不同的成熟期,說(shuō)明孕激素處理雖然增加了卵泡的數(shù)量,但降低了卵母細(xì)胞質(zhì)量。且孕激素處理后再注射FSH與僅注射FSH相比沒(méi)有影響采集到卵母細(xì)胞數(shù)量。

        4 幼畜卵母細(xì)胞形態(tài)和代謝特點(diǎn)

        研究表明,幼年動(dòng)物和成年動(dòng)物卵母細(xì)胞的細(xì)胞器在形態(tài)上存在明顯不同。比如,同期幼年動(dòng)物卵母細(xì)胞比成年動(dòng)物卵母細(xì)胞的直徑小,但GV期時(shí)其胞質(zhì)細(xì)胞器(如線粒體、高爾基體、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)和脂滴)形態(tài)和成年動(dòng)物相似[19]。而幼年動(dòng)物放射冠細(xì)胞觸角比成年動(dòng)物少,體外成熟時(shí)皮質(zhì)顆粒遷移延遲[16]。

        卵母細(xì)胞成熟時(shí)蛋白質(zhì)的合成依靠卵母細(xì)胞和卵丘細(xì)胞相互作用,這是卵母細(xì)胞減數(shù)分裂及胚胎正常發(fā)育的前提[20]。體外成熟過(guò)程中卵母細(xì)胞攝入的氨基酸[21-23]及合成的蛋白質(zhì)[23]很少,幼年動(dòng)物卵母細(xì)胞蛋白質(zhì)合成峰值出現(xiàn)的時(shí)間與成年動(dòng)物不同[23],這是因?yàn)槁亚?卵母細(xì)胞間相互作用存在缺陷[21,22]。此外,幼年動(dòng)物卵母細(xì)胞內(nèi)成熟促進(jìn)因子(MPF)合成水平和構(gòu)象與成年動(dòng)物相似,但成熟后幼年動(dòng)物卵母細(xì)胞MPF活性低于成年動(dòng)物[22]。

        幼年動(dòng)物卵母細(xì)胞代謝也不同于成年動(dòng)物。體外成熟過(guò)程中幼年動(dòng)物卵母細(xì)胞谷氨酰胺代謝水平低于成年動(dòng)物,葡萄糖和丙酮酸代謝水平和成年動(dòng)物相似。以上結(jié)果表明幼年動(dòng)物卵母細(xì)胞形態(tài)、代謝和超微結(jié)構(gòu)與成年動(dòng)物有所不同,但這些研究所用的羔羊年齡范圍大(40 d至6個(gè)月),且所用的激素處理方案不同,這些可能影響到試驗(yàn)結(jié)果。

        5 幼年動(dòng)物卵母細(xì)胞的體外發(fā)育潛力

        與成年動(dòng)物卵母細(xì)胞相比,幼年動(dòng)物卵母細(xì)胞成熟時(shí)減數(shù)分裂速率相差不大[22], 且幼年動(dòng)物卵母細(xì)胞體外生產(chǎn)的囊胚在形態(tài)上無(wú)差別,其總細(xì)胞數(shù)[23,24]及內(nèi)細(xì)胞團(tuán)細(xì)胞數(shù)與總細(xì)胞數(shù)比率[23,24]差異不顯著,但其異常受精率高[22,23]且囊胚率低[13,17]。目前一般將這種情況歸結(jié)于細(xì)胞質(zhì)成熟的紊亂。細(xì)胞質(zhì)成熟紊亂會(huì)造成受精異常,不能形成正常的雄原核,不能阻止多精入卵,阻止受精卵繼續(xù)發(fā)育。最終造成胚胎基因組表達(dá)異常,預(yù)附植時(shí)胚胎丟失,附植后胚胎發(fā)育失敗[14]。不僅胚胎成活率低,胎兒丟失率[5,13,15]和木乃伊化比率[5]也高。Ptak等[25]報(bào)道稱妊娠中斷發(fā)生在妊娠第40~60天,胎兒丟失發(fā)生在妊娠第80~100天,僅僅6%胚胎能發(fā)育并完成整個(gè)妊娠期。

        6 小結(jié)與展望

        限制JIVET技術(shù)商業(yè)化的因素包括幼畜對(duì)激素的反應(yīng)不穩(wěn)定、卵母細(xì)胞發(fā)育能力低等。但通過(guò)使用高劑量FSH能誘導(dǎo)所有羔羊卵巢發(fā)育[6]。品種和基因型也會(huì)影響幼畜超數(shù)排卵效果[17,18]。目前,有學(xué)者研究的羔羊卵母細(xì)胞發(fā)育能力和成年羊沒(méi)有區(qū)別,且移植后妊娠率高[17,18,26]。所以通過(guò)選育特定基因型通過(guò)JIVET技術(shù)育種或許是一個(gè)不錯(cuò)的選擇。

        基因組學(xué)能讓我們更深入地研究成年動(dòng)物和幼年動(dòng)物的區(qū)別。目前已發(fā)現(xiàn)幼畜胚胎內(nèi)幾種重要的發(fā)育相關(guān)基因的表達(dá)與成年動(dòng)物不同[27,28]。Ptak等[25]發(fā)現(xiàn)羔羊胚胎移植后胎兒發(fā)育停滯是由于全基因組甲基化水平低造成的。這些基因表達(dá)水平上的研究將使我們更深入地了解幼年動(dòng)物和成年動(dòng)物卵母細(xì)胞和胚胎的差異,為進(jìn)一步改進(jìn)幼畜胚胎體外生產(chǎn)技術(shù)提供理論支持。

        目前,幼畜胚胎體外生產(chǎn)技術(shù)已經(jīng)取得了很大的進(jìn)步,Kelly等[18]進(jìn)行羔羊胚胎體外生產(chǎn)并移植,平均每只供體羔羊能生產(chǎn)16只羔羊后代。而隨著幼畜胚胎體外生產(chǎn)效率的不斷提高,該技術(shù)也將為優(yōu)良家畜繁育及新品種培育等領(lǐng)域提供更加廣闊的應(yīng)用前景。

        參考文獻(xiàn):

        [1] GRAZYNA P, MARIAN T, NICOLA B, et al. Donor-dependent developmental competence of oocytes from lambs subjected to repeated hormonal stimulation[J]. Biol Reprod,2003,69(1):278-285.

        [2] KENNEDY J P, WORTHINGTON C A, COLE E R. The post-natal development of the ovary and uterus in the Merino lamb[J]. J Reprod Fertil,1974,36(2):275-282.

        [3] TASSELL R,CHAMLEY W A, KENNEDY J P. Gonadotrophin levels and ovarian development in the neonatal ewe lamb[J]. Aust J Biol Sci, 1978,31(3):267-273.

        [4] MCMILLAN W H,MCDONALD M F. Survival of fertilized ova from ewe lambs and adult ewes in the uteri of ewe lambs[J]. Anim Reprod Sci,1985,8(3):235-240.

        [5] PTAK G, LOI P, DATTENA M, et al. Offspring from one-month-old lambs: Studies on the developmental capability of prepubertal oocytes[J]. Biol Reprod,1999,61(6):1568-1574.

        [6] MORTON K M, CATT S L, MAXWELL W M C, et al. Effects of lamb age, hormone stimulation and response to hormone stimulation on the yield and in vitro developmental competence of prepubertal lamb oocytes[J]. Reprod Fertil Dev, 2005,17(6):593-601.

        [7] 郭 洪,萬(wàn)鵬程,石文艷,等. EGF和β-巰基乙醇對(duì)羔羊卵母細(xì)胞體外受精和體外發(fā)育的影響[J]. 安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2012,40(11):6537-6540.

        [8] MENCHACA A, VILARINO M, CRISPO M, et al. New approaches to superovulation and embryo transfer in small ruminants[J]. Reprod Fertil Develop,2010,22(1):113-118.

        [9] 陳曉勇,田樹(shù)軍,桑潤(rùn)滋,等. 誘導(dǎo)幼羔卵泡發(fā)育及體外胚胎生產(chǎn)[J]. 農(nóng)業(yè)生物技術(shù)學(xué)報(bào),2008,16(3):456-460.

        [10] 白佳樺. 性成熟前綿羊、牛 JIVET技術(shù)的研究[D]. 北京:中國(guó)農(nóng)業(yè)大學(xué),2008.

        [11] MCNATTY K P, LUN S, HEATH D A, et al. Ovarian follicular activity in Booroola lambs with and without a fecundity gene[J]. J Reprod Fert,1987,79(1):57-66.

        [12] SONJAYA H,DRIANCOURT M A. Ovarian follicles during infancy in Romanov and Ile-de-France ewe lambs[J]. J Reprod Fert,1987,81(1):241-248.

        [13] PTAK G, TISCHNER M, BERNABO N, et al. Donor-dependant developmental competence of oocytes from lambs subjected to repeated hormonal stimulation[J]. Biol Reprod,2003,69(1): 278-285.

        [14] ARMSTRONG D T. Effects of maternal age on oocyte developmental competence[J]. Theriogenology,2001,55(6):1303-1322.

        [15] O’BRIEN J K, BECK N F, MAXWELL W M, et al. Effect of hormone pre-treatment of prepubertal sheep on the production and developmental capacity of oocytes in vitro and in vivo[J]. Reprod Fertil Dev,1997,9(6):625-631.

        [16] PAWLAK P, CIESLAK A, WARZYCH E, et al. No single way to explain cytoplasmic maturation of oocytes from prepubertal and cyclic gilts[J]. Theriogenology,2012,78(9):2020-2030.

        [17] KELLY J M, KLEEMAN D O, WALKER S K. Enhance effciency in the production of offspring from 4-to 8-week-old lambs[J]. Theriogenology,2005,63(7):1876-1890.

        [18] KELLY J M, KLEEMAN D O, MAXWELL W M, et al. Effect of GnRH treatment on the maturation and in vitro development of oocytes collected from 4- to 6-week-old Merino lambs[J]. Reprod Fertil Dev,2007,19(8):947-953.

        [19] LEDDA S, BOGLIOLO L, LEONI G, et al. Production and lambing rate of blastocysts derived from in vitro matured oocytes after gonadotropin treatment of prepubertal ewes[J]. J Anim Sci,1999,77(8):2234-2239.

        [20] ROSE R D, GILCHRIST R B, KELLY J M, et al. Regulation of sheep oocyte maturation using cAMP modulators[J]. Theriogenology,2013, 79(1):142-148.

        [21] LEDDA S, BOGLIOLO L, LEONI G, et al. Influence of vasoactive intestinal peptide (VIP), atrial natiuretic peptide (ANP) and insulin-like growth factors-1(IGF-1) on in vitro maturation of prepubertal and adult sheep oocytes[J]. Zygote,1996,4(4):343-348.

        [22] LEDDA S, BOGLIOLO L, LEONI G, et al. Cell coupling and maturation-promoting factor activity in in vitro matured prepubertal and adult sheep oocytes[J]. Biol Reprod,2001, 65(1):247-252.

        [23] KOCHHAR H P, WU B, MORRIS L H, et al. Maturation status, protein synthesis and developmental competence of oocytes derived from lambs and ewes[J]. Reprod Domest Anim,2002, 37(1):19-25.

        [24] LEONI G G, SUCCU S, BERLINGUER F, et al. Delay on the in vitro kinetic development of prepubertal ovine embryos[J]. Anim Reprod Sci,2006,92(3-4):373-383.

        [25] PTAK G, MATSUKAWA K, PALMIERI C, et al. Developmental and functional evidence of nuclear immaturity in prepubertal oocytes[J]. Hum Reprod,2006,21(9):2228-2237.

        [26] ROMAQUERA R, MOLL X, MORATO R, et al. Prepubertal goat oocytes from large follicles result in similar blastocyst production and embryo ploidy than those from adult goats[J]. Theriogenology,2011,76(1):1-11.

        [27] DORJI, OHKUBO Y, MIYOSHI K, et al. Gene expression profile differences in embryos derived from prepubertal and adult Japanese Black cattle during in vitro development[J]. Reproduction,F(xiàn)ertility and Development,2012,24(2):370-381.

        [28] DORJI, OHKUBO Y, MIYOSHI K, et al. Gene expression differences in oocytes derived from adult and prepubertal Japanese Black Cattle during in vitro maturation[J]. Reproduction in Domestic Animals,2012,47(3):392-402.

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