周雪松,張娜,劉曉飛,馬永強*
米糠中的多糖,是醛糖或酮糖由糖苷鍵鏈接在一起的聚合物,由a-1,6葡萄糖苷鍵連接的葡萄糖構(gòu)成,廣泛存在于稻谷穎果皮層中。其中水溶性多糖與一般均聚糖不同,是一種結(jié)構(gòu)復(fù)雜的雜聚糖[1-3]。米糠多糖在抗腫瘤、免疫增強、抗細菌感染及降血糖血脂等方面也具有較高的生物活性[4]。
國內(nèi)對米糠資源的深度開發(fā)利用還不夠廣泛深入,對米糠的綜合利用還只局限于肌醇、植酸等傳統(tǒng)產(chǎn)品的開發(fā),綜合利用價值急需提高。盡管近年來也作了一系列多層次的開發(fā)和利用,如米糠纖維飲料的研制、米糠油的提取、植酸和肌醇的制備、米糠營養(yǎng)素和營養(yǎng)纖維的制備等。但總體而言對其中的多糖進行深度開發(fā)利用則較少。
1.1.1 樣品
米糠產(chǎn)自“長粒香”品種大米,購自黑龍江伊春鐵力農(nóng)場
1.1.2 試劑
所有試劑均為分析純。
ALC-110.4型電子分析天平,北京賽多利斯儀器系統(tǒng)有限公司;722型分光光度計,上海精密科學(xué)儀器有限公司;FZ102型微型植物粉碎機,天津泰斯特儀器有限公司;TDL80-2B臺式離心機,上海安亭科學(xué)儀器廠;KQ-500VDE雙頻超聲波清洗器,昆山市超聲儀器有限公司。
1.3.1 超聲輔助提取米糠多糖
(1)樣品前處理。取適量米糠置于105℃電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱中干燥1h,除去水分;粉碎,過40目篩;加入5倍于樣品體積的石油醚浸泡4h,重復(fù)一次,除去脂肪;抽濾之后,于通風(fēng)櫥中45℃水浴除去石油醚。
(2)酶液制備。準確稱取α-淀粉酶0.2367g(酶活為3380U/g),用pH 5.0的檸檬酸-磷酸氫二鈉緩沖溶液(0.1mol/mL)溶解,并定容至100mL。
(3)提取工藝。稱取經(jīng)前處理后的米糠樣品10g置于錐形瓶中,加入料液比為15∶1(V∶W)的蒸餾水,在60℃條件下,設(shè)置功率為400W、頻率為45kHz進行超聲輔助提取,時間為30min;提取完畢后,以3000r/min轉(zhuǎn)速離心20min,合并上清液置于錐形瓶,加入10mLα-淀粉酶溶液,調(diào)節(jié)pH為6.0,于60℃保溫,至碘反應(yīng)為陰性為止,除去淀粉,再升溫至100℃保持15min,除去α-淀粉酶酶活;加入五分之一于樣液體積的12%三氯乙酸溶液,調(diào)節(jié)pH至4.5,震蕩10min,除去蛋白質(zhì);調(diào)至中性,以1200r/min轉(zhuǎn)速離心10min,合并上清液,加入3倍體積比的95%乙醇,靜置過夜后,再以2000r/min轉(zhuǎn)速離心10min,獲得白色沉淀即為米糠多糖[5-6]。
1.3.2 超聲輔助提取米糠多糖單因素實驗
分別設(shè)置功率為300、350、400、450、500W;溫度分別調(diào)為40、50、60、70、80℃;料液比分別為1∶5、1∶10、1∶15、1∶20、1∶25(V∶W);時間分別為20、25、30、35、40min進行單因素試驗[7]。
1.3.3 超聲輔助提取米糠多糖條件優(yōu)化正交試驗
在上述單因素實驗結(jié)果的基礎(chǔ)上,對影響米糠多糖得率的四大因素:溫度、超聲功率、料水比、時間,按L9(34)正交表進行正交試驗,以篩選得到最優(yōu)化的超聲輔助提取米糠多糖的工藝參數(shù)。
1.3.4 多糖含量測定 采用硫酸苯酚法對米糠中提取的多糖含量進行測定[8]。
量取0.lmg/mL葡萄糖標準溶液0、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7mL置干燥比色管中,分別加蒸餾水使成1.0mL,再分別加入5%苯酚溶液1mL,搖勻。然后加濃硫酸5.0mL,充分搖勻,室溫放置25min,在490nm處測定其吸光度值,結(jié)果如圖1所示。從圖1分析可知,回歸方程y(A)=0.8182 x(mL)+0.0035,相關(guān)系數(shù) R2=0.9948,可以看出,標準曲線的回歸性較好,能夠通過該方程進行米糠多糖含量的分析。
圖1 米糠多糖的標準曲線
2.2.1 超聲功率對米糠多糖提取率的影響
選用不同功率(300~500W)的超聲輔助提取米糠多糖,考察其在米糠多糖的提取過程中,對米糠多糖得率的影響。利用硫酸苯酚法測得該實驗組提取液的吸光度值,通過計算,相應(yīng)的米糠多糖得率變化趨勢如圖2所示。
圖2 超聲功率對米糠多糖提取率的影響
從圖2可以看出,功率在300~450W的范圍內(nèi),隨著功率的增大,多糖提取率也不斷增大,但450~500W的范圍內(nèi),多糖的提取率增長緩慢。
由于超聲波可在液體中產(chǎn)生空化作用,而空化作用產(chǎn)生的沖擊波和射流可破壞植物細胞和細胞膜結(jié)構(gòu),從而增加細胞內(nèi)容物通過細胞膜的穿透能力,提高米糠多糖提取率。但在實驗過程中發(fā)現(xiàn)功率達到450W之后,隨功率升高,浸提液渾濁度也增加,影響后續(xù)的分離、純化,一味的增加功率已經(jīng)沒有任何意義,所以考慮到實驗的操作性和能源的節(jié)約,應(yīng)用超聲輔助提取米糠多糖時,選用450W左右的功率是比較適宜的。
2.2.2 溫度對米糠多糖提取率的影響
選用不同溫度(40~80℃)進行超聲輔助提取米糠多糖,考察其在米糠多糖的提取過程中對米糠多糖得率的影響。結(jié)果如圖3所示。
圖3 溫度對米糠多糖提取率的影響
從圖3可以看出,從40~60℃范圍內(nèi),隨著溫度的增加,多糖提取率也明顯增加,當(dāng)溫度為60℃時,多糖得率達到最大值,但超過60℃多糖得率反而下降。
這主要是由于過高的提取溫度會使糖苷鍵斷裂,使多糖分解,有效成分喪失,導(dǎo)致提取率降低。采用超聲輔助提取時,超聲波本身也會釋放大量的能量和熱量,若提取溫度設(shè)置過高,再加上超聲波的這種放熱作用會協(xié)助加速大分子多糖糖昔鍵斷裂,所以多糖的得率反而會有所下降。考慮到實驗效果和經(jīng)濟性,應(yīng)用超聲輔助提取米糠多糖時,選用60℃左右的中溫是比較適宜的。
2.2.3 料液比對米糠多糖提取率的影響
選用不同料液比(1∶5~1∶25)進行超聲輔助提取米糠多糖,考察其在米糠多糖的提取過程中,對米糠多糖得率的影響。結(jié)果如圖4所示。
圖4 料液比對米糠多糖提取率的影響
從圖4可以看出,料液比在1∶5~1∶15范圍內(nèi),隨著料液比的增加,提取率明顯升高,在1∶15~1∶25范圍內(nèi),隨著料液比的增加,提取率升高緩慢,總體來說米糠多糖提取率隨著料液比的升高呈現(xiàn)上升趨勢。
在1∶5~1∶15范圍,料液比越大,溶劑越多,溶質(zhì)擴散動力越大,多糖提取率越高,料液比達到1∶15時多糖已基本溶解到了提取液中,繼續(xù)增加料液比,米糠多糖提取率雖然有所增加 ,但是同時會導(dǎo)致雜質(zhì)的浸出率上升,而且料液比過高,導(dǎo)致提取液體積過大,為離心分離帶來極大的不便,另外,提取液體積過大還會造成后續(xù)實驗步驟中使用的酶和其他化學(xué)試劑的浪費,提高實驗成本,考慮到多糖的有效成分、實驗方便性和經(jīng)濟因素,超聲輔助浸提法選擇料液比l∶15為宜。
2.2.4 時間對米糠多糖提取率的影響
選用不同時間(20~40min)進行超聲輔助提取米糠多糖,考察其在米糠多糖的提取過程中,對米糠多糖得率的影響。結(jié)果如圖5所示。
圖5 時間對米糠多糖提取率的影響
從圖5可以看出提取時間在35min內(nèi),提取時間越長,米糠多糖的提取率就越高,但當(dāng)提取時間超過35min之后,多糖提取率緩慢下降。
在提取開始后,多糖提取率隨著超聲時間增加而明顯提高,是由于超聲波具有較強的空化作用和機械切力作用,從而使多糖提取率增加,在35min時達到最大值,之后隨著時間延長開始下降。原因是超聲作用時間過長,反而會使多糖糖苷鍵斷裂,使有效成分減少,從而使多糖的提取率降低,從實用性和經(jīng)濟性的角度出發(fā),超聲處理時間選擇在35min最合適。
在上述單因素實驗的基礎(chǔ)上,對影響米糠多糖得率的因素:溫度、超聲功率、料水比、時間按L9(34)正交表進行正交試驗,以篩選得到最優(yōu)化的超聲輔助提取米糠多糖條件組合。正交試驗結(jié)果如表1所示。
表1 米糠多糖提取正交實驗結(jié)果
從正交實驗結(jié)果看出,運用超聲波輔助提取影響米糠多糖提取因素的主次順序為D>B>C>A,即超聲功率>溫度>時間>料液比;最佳工藝為A2B2C2D3,即超聲功率為450W,料液比為1∶20,溫度為60℃,時間為35min,按此參數(shù)進行驗證試驗,提取率高達2.73%。
本論文就超聲輔助提取米糠多糖的影響因素,設(shè)計單因素實驗,并以之為基礎(chǔ)進行正交實驗,對米糠多糖提取參數(shù)進行優(yōu)化。優(yōu)化后的超聲輔助提取米糠多糖的最優(yōu)工藝參數(shù)為:超聲功率為450W,料液比為1∶20,溫度為60℃,時間為35min,此時提取率高達2.73%。
與傳統(tǒng)熱水浸提的方法相比較,采用超聲波輔助強化提取米糠多糖的方法能明顯縮短提取時間,降低提取溫度,避免了高溫對活性成分的破壞,提高了提取效率。具有迅速、節(jié)能、高效的特點,是強化輔助提取多糖的好方法。
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