亚洲免费av电影一区二区三区,日韩爱爱视频,51精品视频一区二区三区,91视频爱爱,日韩欧美在线播放视频,中文字幕少妇AV,亚洲电影中文字幕,久久久久亚洲av成人网址,久久综合视频网站,国产在线不卡免费播放

        ?

        梔子ERF基因的克隆及其在果實(shí)成熟過程中的表達(dá)

        2013-09-13 11:46:48高藍(lán)盧靜雯
        生物技術(shù)通報(bào) 2013年7期
        關(guān)鍵詞:梔子擬南芥乙烯

        高藍(lán) 盧靜雯

        植物激素通過調(diào)節(jié)有關(guān)基因的表達(dá)來調(diào)控植物的生長發(fā)育和植株對逆境脅迫的應(yīng)答反應(yīng)。其中乙烯可以調(diào)控植物的生長發(fā)育。如花的發(fā)育[1],果實(shí)的成熟過程[2],以及對病源侵染[3,4]、低氧[5]、低溫及干旱等逆境脅迫的應(yīng)答反應(yīng)[6]。在一些植物中,已知被植物激素乙烯調(diào)節(jié)的相關(guān)基因含有順式作用元件GCC盒(AGCCGCC序列)[7]。乙烯反應(yīng)元件因子(ERF)可以辨認(rèn)結(jié)合GCC盒[8],是乙烯信號傳導(dǎo)中涉及的一類轉(zhuǎn)錄因子,已在多種植物中被分離鑒定。如煙草中的NtERF[9]、擬南芥的AtERF[10]、番茄的 leERF 和 Pti[3,11]、矮牽牛(Petuniahybrida)的 PhERF[1]、水稻的 OsERF[12]和大豆的GmEREBP1[13]等。ERF轉(zhuǎn)錄因子家族都含有一個(gè)保守的由60個(gè)左右氨基酸組成的結(jié)構(gòu)域(ERF結(jié)構(gòu)域),與擬南芥中的蛋白APETALA2的AP2結(jié)構(gòu)域相似[14],是AP2/ERF轉(zhuǎn)錄因子家族中的ERF亞類,與DNA以單體的形式結(jié)合。ERF結(jié)構(gòu)域含有3個(gè)反平行的β-折疊和一個(gè)α-螺旋結(jié)構(gòu)[15],其中這3個(gè)β-折疊結(jié)構(gòu)在識別順式作用元件的過程中具有重要作用。全基因組分析表明,擬南芥有122個(gè)ERF蛋白基因,水稻有139個(gè)ERF蛋白基因[12]。對各種植物的ERF的功能和表達(dá)研究則相對不多,如在擬南芥中只有少數(shù)ERF蛋白已經(jīng)確認(rèn)參與了對脅迫或?qū)σ蚁┑膽?yīng)答反應(yīng)[10,16]。在番茄中,已知Pto蛋白激酶是對丁香假單胞桿菌番茄致病變種(Pseudomonas syringae pv.Tomato)的抗性蛋白,Pti4、Pti5和Pti6蛋白可結(jié)合于Pto蛋白激酶基因的順式作用元件,促進(jìn)該激酶的表達(dá)[3]。蘋果的MdERF3,MdERF4,MdERF5和MdERF6因子在灰霉病菌(Botrytis cinerea)感染時(shí)表達(dá)增加,并可受乙烯的誘導(dǎo)[4],瞬間在煙草中表達(dá)MdERF3可增加含GCC盒的幾丁質(zhì)酶的表達(dá)。在番茄中的LeERF1與果實(shí)的成熟相關(guān),過表達(dá)ERF可增進(jìn)番茄果實(shí)的軟化和成熟[2]。

        ERF類轉(zhuǎn)錄因子參與植物的多種生理過程和生長發(fā)育的調(diào)節(jié),對于相關(guān)基因的分離及其表達(dá)和功能的研究有重要意義。本研究從梔子中分離GjERF的cDNA,并分析其在梔子不同組織和發(fā)育時(shí)期轉(zhuǎn)錄水平的表達(dá),旨為研究其作用機(jī)理奠定基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        梔子(Cardenia jasminoides)培養(yǎng)于廣東藥學(xué)院,隨著梔子果實(shí)的發(fā)育,采摘果肉為無色(發(fā)育期Ⅰ)及果肉為橙黃色(發(fā)育期Ⅱ)的梔子果實(shí)。并采摘梔子的成熟葉片。果實(shí)及葉片均經(jīng)液氮中速凍后,冷凍于-80℃。

        1.2 方法

        1.2.1 梔子cDNA文庫的構(gòu)建及隨機(jī)測序獲得GjERF基因序列 從梔子果實(shí)(發(fā)育期Ⅱ)中以CTAB[17]改良法提取總RNA,在液氮中研磨梔子果實(shí),加入65℃ CTAB提取液(2% CTAB(W/V),2% PVPK30(W/V),100mmol/L Tris-HCl(pH8.0),25mmol/L EDTA(pH8.0),2.0mol/L NaCl)和 4%(V/V)β-疏基乙醇,保溫30min。接著以12000×g 在4℃離心10min,上清液加等體積苯酚∶氯仿∶異戊醇(25/24/1,V/V)抽提,接著以12000×g離心20min。水相加等體積4mol/L LiCl溶液沉淀RNA,4℃過夜。以12000 ×g離心20min,RNA沉淀以DEPC水溶解,接以0.1體積的3mol/L NaOAC(pH5.2)和2倍體積的無水乙醇在-20℃沉淀1h。最后以12000 ×g離心20min,RNA沉淀以75%乙醇洗滌,揮干后以DEPC水溶解??俁NA用于構(gòu)建cDNA文庫,采用CreatorTMSMARTTMcDNA文庫構(gòu)建試劑盒(Clontech公司,美國)構(gòu)建梔子果實(shí)的cDNA文庫,按試劑盒說明書提供的方法操作。梔子的cDNA插入在質(zhì)粒pDNR-LIB中,轉(zhuǎn)入Escherichia coli strain DH5α。

        在cDNA文庫中,隨機(jī)挑取單克隆,分別對每個(gè)單克隆進(jìn)行菌落PCR。挑取單克隆加入到25μL的超純水中,在PTC-200 PCR儀(MJ Research,USA)上加熱至95℃裂解5min,制得裂解液。接著以M13引物對用于檢測pDNR-LIB中的插入序列(CreatorTMSMARTTMcDNA文庫構(gòu)建試劑盒中提供),即對以上裂解液進(jìn)行PCR擴(kuò)增反應(yīng)。采用PrimeStarTMHS DNA polymerase(TaKaRa公 司, 大連寶生物公司),反應(yīng)條件為:94℃變性5min,40輪循環(huán)的 94℃ 30s,60℃ 30s,72℃ 2min,最后72℃延伸7min。擴(kuò)增產(chǎn)物以1.2%的瓊脂糖凝膠電泳檢測,將片段長度大于750bp的相應(yīng)的單克隆挑出進(jìn)行液體培養(yǎng),送華大基因完成測序。在隨機(jī)測序的序列中獲得了GjERF序列。

        為了獲得GjERF基因的ORF序列,設(shè)計(jì)了以下引物,5'端引物為5'-GGAATTCCATATGTGTGGA GGTGCAATCATCGACG-3',含有NdeI酶切位點(diǎn)。 3'端引物為5'-CCGACTCGAGTTAATACAGCAGATTAT TAGGCTGCTGGGCT-3',含有Xho I酶切位點(diǎn)。將含有目的基因的菌種加入含氯霉素抗性的LB培養(yǎng)液,在37℃,150r/min搖床培養(yǎng)過夜。接著以4000r/min離心菌液5min。挑取菌體沉淀加入到50μL的超純水中,95℃裂解5min,制得裂解液。做菌落PCR,得到目的DNA。PCR反應(yīng)條件為94 ℃變性5min,接 35輪循環(huán)的 94℃ 30s,63.5℃ 30s,72℃ 1.5min,最后72℃延伸7min。擴(kuò)增產(chǎn)物以1.2%的瓊脂糖凝膠電泳檢測。

        1.2.2 序列分析和空間結(jié)構(gòu)預(yù)測 基因序列中的ORF以及預(yù)測編碼蛋白的保守域的搜索以O(shè)RF Finder(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/gorf/)和 BLAST進(jìn)行。多重序列比對以在線ClustalW2(http://www.ebi.ac.uk/clustalw/index.html)進(jìn)行。進(jìn)化分析以Mega 4軟件中的neighbor-joining算法完成??臻g結(jié)構(gòu)預(yù)測以SWISS-PDB軟件在線分析完成。

        1.2.3 GjERF基因的轉(zhuǎn)錄水平表達(dá)分析 分別取梔子發(fā)育期Ⅰ和Ⅱ的果實(shí)及梔子的成熟葉片,3種樣品按1.2.1方法提取總RNA,以Prime Script one step RT-PCR試劑盒(TaKaRa,大連寶生物公司),按試劑盒說明書將GjERF的mRNA反轉(zhuǎn)錄為cDNA。引物為:正向:5'-GCTTCCAAGCTCAGCCTTACTA-3',反 向:5'- AGATCATCCAGCATCCAGAGAC-3'。RTPCR的內(nèi)標(biāo)為梔子的RPS25-1(核糖體小亞基的25-1蛋白,GenBank登錄號GU797554),其擴(kuò)增引物為:正向:5'- CAGAAGAAGAAGAAGTGGAGCAA-3',反向:5'- GTTCTTGAACCACTTGATGGTCT-3'。擴(kuò)增反應(yīng)進(jìn)行二次,PCR反應(yīng)條件均為:94℃變性5min,接 35輪循環(huán)的 94℃ 30s,55℃ 30s,72℃ 1min,最后72℃延伸10min。

        2 結(jié)果

        2.1 梔子GjERF基因的克隆

        從梔子果實(shí)cDNA文庫中隨機(jī)篩選獲得梔子乙烯反應(yīng)元件結(jié)合蛋白ERF的cDNA,命名為GjERF,GenBank登錄號為HQ599862。該基因全長962bp,5'端非翻譯區(qū)長82bp,3'端非翻譯區(qū)長100bp,預(yù)測ORF為780bp,編碼259個(gè)氨基酸,分子量為28.6kD,等電點(diǎn)為6.764。GjERF基因的ORF擴(kuò)增結(jié)果見圖1。

        2.2 GjERF蛋白序列分析和空間結(jié)構(gòu)預(yù)測

        圖1 GjERF 的ORF擴(kuò)增電泳圖

        圖2 GjERF的聚類分析

        通過BLAST分析,GjERF的蛋白質(zhì)序列含有AP2/ERF結(jié)構(gòu)域,與多種植物的ERF相似。經(jīng)ClustalW2比對和MEGA4.0分析,得到GjERF與20條在BLAST比對中與GjERF最相似的ERF的親緣關(guān)系圖,見圖2。GjERF與唇形超目唇形科的丹參(Salviamiltiorrhiza)的ERF關(guān)系最近(序列相似度50.57%),梔子和丹參同屬唇形超目。GjERF與金縷梅超目山毛櫸科的歐洲栗(Castanea sativa)的關(guān)系較遠(yuǎn)(序列相似度25.86%)。將GjERF與丹參、棉花(Gossypiumhirsutum)、葡萄(Vitis vinifera)、番茄(Solanum lycopersicum)的ERF,以及來自擬南芥(Arabidopsis thaliana)AtERF1的ERF結(jié)構(gòu)域(在PDB中的編號為1GCC_A,序列范圍145-206)進(jìn)行了比對,序列相似度分別為50.57%、49.09%、48.39%、44.09%和16.54%;而GjERF的AP2/ERF結(jié)構(gòu)域(序列范圍75-133)與這幾種植物ERF的AP2/ERF結(jié)構(gòu)域的相似度則在68.25%-86.89%范圍,而在此結(jié)構(gòu)域中推測與DNA有相互作用的氨基酸殘基則在所有參比的ERF中完全相同,見圖3。以1GCC_A為模板,由Swiss-model預(yù)測的GjERF中AP2/ERF結(jié)構(gòu)域的二級結(jié)構(gòu)也在圖中標(biāo)出。按照GjERF的序列結(jié)構(gòu),其N端具有未知功能的MC結(jié)構(gòu)域(MCGGAII),因?yàn)檫@個(gè)顯著特征,將其劃分為ERF因子中的第Ⅶ類。

        圖 3 GjERF與5個(gè)ERF的序列對比

        以來自擬南芥的AtE-RF1的ERF結(jié)構(gòu)域(序列范圍145-206)與DNA的GCC盒雙鏈的復(fù)合物(即1GCC_A)為模板,該復(fù)合物中的DNA編碼鏈序列為:5'-GCTAGCCGCCAGC-3',劃線序列為GCC盒核心序列,另一條為互補(bǔ)鏈。1GCC_A的蛋白序列與GjERF的ERF結(jié)構(gòu)域(序列范圍75-133)的相似度為75.44%,由該復(fù)合物作為模板預(yù)測的GjERF的ERF結(jié)構(gòu)域的3D結(jié)構(gòu),見圖4。

        圖4 1GCC-A中ERF結(jié)構(gòu)域與DNA復(fù)合物的空間結(jié)構(gòu)及預(yù)測的GjERF中ERF結(jié)構(gòu)域的空間結(jié)構(gòu)

        在1GCC_A結(jié)構(gòu)中,擬南芥的ERF結(jié)構(gòu)域與GCC盒通過3個(gè)β折疊在DNA的大溝處相互作用。從N到C端方向的第二個(gè)β-折疊幾乎與α-螺旋平行,也與DNA編碼鏈的5'到3'方向平行。主要涉及的作用有,結(jié)構(gòu)域中的精氨酸的胍基與GCC盒中的鳥嘌呤經(jīng)氫鍵互相作用,而精氨酸的骨架結(jié)構(gòu)則與嘧啶堿基有疏水性相互作用。色氨酸與嘌呤堿基有疏水性相互作用。這些精氨酸和色氨酸殘基除與堿基作用外,還與糖磷酸骨架有疏水性相互作用。DNA分子則在大溝的CG堿基對有約20℃的彎曲,有利于蛋白質(zhì)與DNA之間的相互作用。預(yù)測的GjERF的空間結(jié)構(gòu)與1GCC_A相似。

        2.3 GjERF基因在果實(shí)發(fā)育過程中的表達(dá)

        GjERF在梔子成熟葉片,發(fā)育期Ⅰ和Ⅱ的果實(shí)中的轉(zhuǎn)錄水平的表達(dá),見圖5。以特異引物擴(kuò)增cDNA,以梔子RPS25-1作為內(nèi)標(biāo)??煽吹剑珿jERF在葉片中的表達(dá)水平比在果實(shí)中高,隨著果實(shí)的發(fā)育過程,GjERF轉(zhuǎn)錄水平的表達(dá)維持不變。

        圖5 GjERP在葉片和果實(shí)兩個(gè)發(fā)育時(shí)期(Ⅰ和Ⅱ)轉(zhuǎn)錄水平的表達(dá)

        3 討論

        ERF類轉(zhuǎn)錄因子作為AP2/ERF類轉(zhuǎn)錄因子中的一類,參與植物多種基因的表達(dá)從而調(diào)節(jié)植物的生長發(fā)育和對乙烯、生物和非生物性脅迫的反應(yīng)。按照其蛋白質(zhì)一級結(jié)構(gòu)上的特點(diǎn),有幾種分類方法將ERF 類轉(zhuǎn)錄因子進(jìn)一步分類[11,12,18,19]。其中 Nakano等[12]將擬南芥的122個(gè)ERF蛋白分為12族,包括Ⅰ-Ⅴ,Ⅵ-Ⅹ,Ⅵ-L和Xb-L。其中第Ⅶ類ERF類轉(zhuǎn)錄因子在其蛋白序列N端具有MC結(jié)構(gòu)域。

        在對第Ⅶ類ERF的研究中發(fā)現(xiàn)其在植物不同組織中的表達(dá)往往不同,并有多個(gè)ERF參與果實(shí)的成熟和衰老過程[20]。如番茄的LeERF2屬于第Ⅶ類,它可被乙烯誘導(dǎo),隨果實(shí)的成熟轉(zhuǎn)錄水平的表達(dá)增加,在成熟抑制的番茄突變體Nr(Never-ripe),nor(non-ripening)和 rin(ripening inhibitor)中幾乎不表達(dá)[20]。蘋果(Malus domestica)的 MdERF1主要在成熟果實(shí)中表達(dá),在其它組織中很少表達(dá)[21]。從李(Prunus salicina)中分離得到的PsERF2a和PsERF2b隨果實(shí)的發(fā)育過程的表達(dá)則沒有呈現(xiàn)遞增或遞減的規(guī)律,而是在花中高水平表達(dá)[22]。在獼猴桃(Actinidia deliciosa)中,AdERF4,AdERF5和AdERF6的表達(dá)則是AdERF4、AdERF 6隨果實(shí)的發(fā)育成熟表達(dá)逐漸下降。另外,AdERF4在葉中的表達(dá)僅次于果實(shí)發(fā)育初期的水平;AdERF5的表達(dá)水平在所有組織和果實(shí)發(fā)育過程中均很低,相對的在花和成熟果實(shí)中有少量表達(dá)[23]。葡萄中的第Ⅶ類的VvERF057、VvERF058和VvERF059在葡萄由轉(zhuǎn)熟期到全熟期的表達(dá)沒有任何變化,而第Ⅸ類的兩個(gè)ERF轉(zhuǎn)錄因子VvERF078和085則與幾丁質(zhì)酶,β-1,3-葡聚糖酶和甜蛋白隨葡萄果實(shí)的發(fā)育過程同步表達(dá)[24]。對甜瓜品種河套蜜瓜果實(shí)中的第Ⅶ類ERF因子CMeERF2的表達(dá)的研究發(fā)現(xiàn),隨著果實(shí)的發(fā)育成熟過程及乙烯含量的增加而逐漸增加,在受粉后38d內(nèi)其轉(zhuǎn)錄水平較低,乙烯含量較少;在受粉后40d時(shí),果實(shí)內(nèi)源乙烯含量達(dá)到峰值,其轉(zhuǎn)錄水平也達(dá)到峰值;在受粉后45d之后,隨著果實(shí)內(nèi)源乙烯水平的下降,其轉(zhuǎn)錄水平也下降。同時(shí),也發(fā)現(xiàn)不屬于第Ⅶ類ERF因子的CMeERF1的表達(dá)也有類似的規(guī)律[25]。所以第Ⅶ類ERF因子與果實(shí)的發(fā)育過程的關(guān)系也是復(fù)雜的,有時(shí)并不相關(guān),而其它亞類的ERF因子也有可能與果實(shí)的發(fā)育成熟過程有關(guān)。本研究獲得的GjERF基因在梔子葉片中的表達(dá)強(qiáng)于在果實(shí)中的表達(dá),并不隨果實(shí)的發(fā)育而增強(qiáng),顯示其表達(dá)與果實(shí)的發(fā)育無關(guān)并具有組織特異性。隨著對植物AP2/ERF轉(zhuǎn)錄因子基因的克隆及基因的表達(dá)和功能的研究,將更有助于對植物的抗逆機(jī)制和生長發(fā)育的調(diào)控機(jī)理的深入了解。這是首次在梔子中分離ERF類轉(zhuǎn)錄因子及考察其在不同組織和發(fā)育時(shí)期表達(dá)的報(bào)道。

        4 結(jié)論

        克隆了梔子的GjERF基因,該基因預(yù)測編碼第Ⅶ類ERF轉(zhuǎn)錄因子。該轉(zhuǎn)錄因子的ERF結(jié)構(gòu)域預(yù)測可與順式作用元件GCC盒發(fā)生相互作用。GjERF在梔子葉中的轉(zhuǎn)錄水平的表達(dá)強(qiáng)于在果實(shí)中的表達(dá),并不隨果實(shí)的發(fā)育而改變其表達(dá)水平。

        [1] Liu J, Li J, et al.Identification and expression analysis of ERF transcription factor genes in petunia during flower senescence and in response tohormone treatments[J].J Exp Bot, 2011, 62:825-840.

        [2] Li Y, Zhu B, et al.LeERF1 positivelymodulated ethylene triple response on etiolated seedling, plant development and fruit ripening and softening in tomato[J].Plant Cell Rep, 2007, 26(11):1999-2008.

        [3] Zhou J, Tang X, Martin GB.The Pto kinase conferring resistance to tomato bacterial speck disease interacts with proteins that bind a ciselement of pathogenesis-related genes[J].EMBO J, 1997, 16(11):3207-3218.

        [4] Akagi A, Dandekar AM, Stotz HU.Resistance of Malus domestica Fruit to Botrytis cinerea depends on endogenous ethylene biosynthesis[J].Phytopathology, 2011, 101(11):1311-1321.

        [5] Gibbs DJ, Lee SC, Isa NM, et al.Homeostatic response tohypoxia is regulated by the N-end rule pathway in plants[J].Nature, 2011,479(7373):415-418.

        [6] Shinozaki K, Yamaguchi-Shinozaki K, Seki M.Regulatory network of gene expression in the drought and cold stress responses[J].Curr Opin Plant Biol, 2003, 6(5):410-417.

        [7] Ohme-Takagi M, Shinshi, H.Ethylene-inducible DNA binding proteins that interact with an ethylene-responsive element[J].Plant Cell, 1995, 7(2):173-182.

        [8] Hao D, Ohme-Takagi M, Sarai A.Uniquemode of GCC box recognition by the DNA-binding domain of ethylene-responsive elementbinding factor(ERF domain)in plant[J].J Biol Chem, 1998,273(41):26857-6861.

        [9] Fischer U, Dr?ge-Laser W.Over expression of NtERF5, a newmember of the tobacco ethylene response transcription factor family enhances resistance to tobaccomosaic virus[J].Mol Plant Microbe Interact, 2004, 17(10):1162-1171.

        [10] O?ate-Sánchez L, Singh KB.Identification of Arabidopsis ethyleneresponsive element binding factors with distinct induction kinetics after pathogen infection[J].Plant Physiol, 2002, 128(4):1313-1322.

        [11] Tournier B, Sanchez-Ballesta MT, Jones B, et al.Newmembers of the tomato ERF family show specific expression pattern and diverse DNA-binding capacity to the GCC box element[J].FEBS Lett,2003, 550(1-3):149-154.

        [12] Nakano T, Suzuki K, Fujimura T, et al.Genome-wide analysis of the ERF gene family in Arabidopsis and rice[J].Plant Physiol, 2006,140(2):411-432.

        [13] Zhang G, Chen M, Chen X, et al.Phylogeny, gene structures, and expression patterns of the ERF gene family in soybean(Glycinemax L.)[J].J Exp Bot, 2008, 59(15):4095-4107.

        [14] Okamuro JK, Caster B, et al.The AP2domain of APETALA2defines a large new family of DNA binding proteins in Arabidopsis[J].Proc Natl Acad Sci USA, 1997, 94(13):7076-7081.

        [15] Allen MD, Yamasaki K, Ohme-Takagi M, et al.A novelmode of DNA recognition by a beta-sheet revealed by the solution structure of the GCC-box binding domain in complex with DNA[J].EMBO J,1998, 17(18):5484-5496.

        [16] Sakuma Y, Liu Q, Dubouzet JG, et al.DNA-binding specificity of the ERF/AP2domain of Arabidopsis DREBs, transcription factors involved in dehydration- and cold-inducible gene expression[J].Biochem Biophys Res Commun, 2002, 290(3):998-1009.

        [17] Bekesiova I, Nap JP, Mlynarova L.Isolation ofhigh quality DNA and RNA from Leaves of the carnivorous plant Drosera rotundifolia[J].Plant Mol Biol Rep, 1999, 17(3):269-277.

        [18] Allen MD, Yamasaki K, Ohme-Takagi M, et al.A novelmode of DNA recognition by a beta-sheet revealed by the solution structure of the GCC-box binding domain in complex with DNA[J].EMBO J,1998, 17(18):5484-5496,

        [19] Fujimoto SY, Ohta M, Usui A, et al.Arabidopsis ethyleneresponsive element binding factors act as transcriptional activators or repressors of GCC box-mediated gene expression[J].Plant Cell, 2000, 12(3):393-404.

        [20] Zhang Z, Zhang H, Quan R, et al.Transcriptional regulation of ethylene response factor LeERF2 in the expression of ethylene biosynthesis genes controls ethylene production in tomato and tobacco[J].Plant Physiol, 2009, 150(1):365-377.

        [21] Wang A, Tan D, Takahashi A, et al.MdERFs, two ethyleneresponse factors involved in apple fruit ripening[J].J Exp Bot,2007, 58(13):3743-3748.

        [22] El-Sharkawy I, Sherif S, Mila I, et al.Molecular characterization of seven genes encoding ethylene-responsive transcriptional factors during plum fruit development and ripening[J].J Exp Bot, 2009,60(3):907-922.

        [23] Yin XR, Allan AC, Chen KS, et al.Kiwifruit EIL and ERF genes involved in regulating fruit ripening[J].Plant Physiol, 2010, 153(3):1280-1292.

        [24] Licausi F, Giorgi FM, Zenoni S, et al.Genomic and transcriptomic analysis of the AP2/ERF superfamily in Vitis vinifera[J].BMC Genomics, 2010, 11:719.

        [25] 高峰, 怡榮, 郝金鳳, 等.甜瓜乙烯應(yīng)答因子基因在果實(shí)發(fā)育成熟過程中的表達(dá)特性[J].西北植物學(xué)報(bào), 2012, 32(5):886-889.

        猜你喜歡
        梔子擬南芥乙烯
        擬南芥:活得粗糙,才讓我有了上太空的資格
        清熱消暑山梔子
        梔子(趙潤懷 攝)
        乙烷裂解制乙烯產(chǎn)業(yè)大熱
        尿黑酸對擬南芥酪氨酸降解缺陷突變體sscd1的影響
        兩種LED光源作為擬南芥生長光源的應(yīng)用探究
        擬南芥干旱敏感突變體篩選及其干旱脅迫響應(yīng)機(jī)制探究
        六月梔子香
        金色年華(2016年11期)2016-02-28 01:42:20
        少年情懷,梔子初心
        乙烯裂解爐先進(jìn)控制系統(tǒng)開發(fā)及工業(yè)應(yīng)用
        自動化博覽(2014年9期)2014-02-28 22:33:35
        久久久噜噜噜噜久久熟女m| 国产精品无套内射迪丽热巴| 色丁香久久| 国产亚洲精品成人av在线| 手机在线播放av网址| 少妇中文字幕乱码亚洲影视| 厨房玩丰满人妻hd完整版视频| 亚洲国产精品综合久久20 | 青青草国产精品一区二区| 日日噜噜夜夜狠狠久久无码区| 午夜免费福利一区二区无码AV | 国产欧美日韩网站| 中文字幕精品亚洲一区二区三区| 国内精品少妇高潮视频| 日韩人妻无码精品久久免费一 | 无码人妻一区二区三区免费看| 久久人人妻人人做人人爽| 精精国产xxxx视频在线播放器 | 亚洲丁香婷婷久久一区二区| 三级特黄60分钟在线观看| 久久国产成人免费网站| 亚洲av一二三四五区在线| 成人免费无码视频在线网站| 蜜臀av一区二区| 抖射在线免费观看视频网站| 日韩亚洲精品国产第二页| 99久久精品日本一区二区免费 | 国产老熟女狂叫对白| 亚洲色婷婷综合开心网| 精品久久综合日本久久综合网| 国产午夜伦鲁鲁| 久久夜色撩人精品国产小说| 性色av一区二区三区密臀av| 无码精品一区二区三区在线| 国产人妻精品一区二区三区不卡| 无码人妻丝袜在线视频| 中文字幕一区二区av| 少妇仑乱a毛片| 国产福利片无码区在线观看| 青青草视频免费在线播放| 精品国品一二三产品区别在线观看 |