亚洲免费av电影一区二区三区,日韩爱爱视频,51精品视频一区二区三区,91视频爱爱,日韩欧美在线播放视频,中文字幕少妇AV,亚洲电影中文字幕,久久久久亚洲av成人网址,久久综合视频网站,国产在线不卡免费播放

        ?

        植物響應(yīng)低磷脅迫的功能基因組研究進(jìn)展

        2013-09-13 11:46:42邢國(guó)芳郭平毅
        生物技術(shù)通報(bào) 2013年7期
        關(guān)鍵詞:基因組學(xué)擬南芥根系

        邢國(guó)芳 郭平毅

        磷作為植物生長(zhǎng)發(fā)育所必需的大量元素之一,幾乎參與了植物所有的生命活動(dòng)過程。土壤中的磷大多數(shù)以無效態(tài)的形式存在,而能被植物吸收利用的有效態(tài)的磷含量通常在1μmol/L左右,遠(yuǎn)不能滿足植物獲取充足磷營(yíng)養(yǎng)的需求,土壤有效供磷不足已經(jīng)成為我國(guó)乃至全世界農(nóng)業(yè)生產(chǎn)中限制谷物產(chǎn)量的主要因素之一。據(jù)統(tǒng)計(jì),全世界130億hm2的耕地中,缺磷耕地占43%[1],我國(guó)耕地中約有2/3的土壤缺磷[2]。另外,由于磷肥是不可再生資源,據(jù)估計(jì)全世界磷礦儲(chǔ)藏量在未來的幾十年將被耗盡[3],而且,大量施用磷肥,將消耗大量資源,增加農(nóng)業(yè)生產(chǎn)成本,與此同時(shí)還將帶來環(huán)境污染。因此,在世界范圍內(nèi),缺磷已經(jīng)成為限制作物生長(zhǎng)和影響作物產(chǎn)量的主要非生物脅迫之一[4]。

        基因組學(xué)(genomics)是20世紀(jì)90年代以來興起的一門新興學(xué)科,是指對(duì)生物的所有基因進(jìn)行基因組作圖,核苷酸序列分析,基因定位和基因功能分析的一門科學(xué)[5]。功能基因組學(xué)(functional genomics)又稱后基因組學(xué)(postgenomics),是在基因組學(xué)的基礎(chǔ)上通過新的技術(shù)和手段(如差減雜交技術(shù)、cDNA芯片、高通量測(cè)序和蛋白質(zhì)雙向電泳技術(shù)等)全面系統(tǒng)地解析基因的功能,其研究的主要內(nèi)容包括基因功能的發(fā)現(xiàn)、基因組的表達(dá)及時(shí)空調(diào)控及蛋白質(zhì)組[6]。

        應(yīng)用功能基因組學(xué)技術(shù)闡明植物對(duì)低磷脅迫響應(yīng)的分子機(jī)制,已成為科學(xué)領(lǐng)域的一大熱點(diǎn),近期很多科研機(jī)構(gòu)開展了植物耐低磷脅迫應(yīng)答相關(guān)的功能基因組學(xué)研究,這無疑能促進(jìn)人們對(duì)于植物耐低磷脅迫機(jī)制的系統(tǒng)認(rèn)識(shí),也更有助于作物耐低磷脅迫的分子育種。

        1 植物適應(yīng)低磷脅迫的形態(tài)變化

        當(dāng)外界的磷濃度低于一定水平時(shí),植物就會(huì)適時(shí)地作出一些反應(yīng),這種適應(yīng)性變化能夠提高植物的磷吸收并加強(qiáng)體內(nèi)磷的代謝能力,從而提高磷的利用效率。例如,植物在缺磷條件下,主根的生長(zhǎng)受到抑制,而側(cè)根的數(shù)量和長(zhǎng)度增加,從而擴(kuò)大了根系對(duì)土壤磷的吸收面積,提高其對(duì)磷的吸收效率,進(jìn)而提高植物對(duì)磷脅迫的適應(yīng)能力[7]。缺磷可以促進(jìn)根毛的形成,使根毛的長(zhǎng)度和密度增加,以促進(jìn)根系對(duì)磷的吸收[8],相關(guān)報(bào)道表明植物需磷量的60%是由根毛吸收的[9]。缺磷還可導(dǎo)致植物根系構(gòu)型發(fā)生改變,使基部根的向地性反應(yīng)減弱,根系分布變淺,根系生長(zhǎng)角度變小,從而增大了在土壤有效磷含量較高區(qū)域的根系分布密度,進(jìn)而提高了根系對(duì)磷的吸收效率[10]。另外,缺磷還能影響植物光合作用和碳水化合物的分配,導(dǎo)致在低磷條件下,植物的根冠比增加[11,12],對(duì)磷利用率高效的物種(如小麥、燕麥)的根冠比普遍大于磷低效的物種(如洋蔥、番茄和大豆),即使同一物種在低磷條件下,根系的生長(zhǎng)量也會(huì)較正常磷水平條件下明顯增加[13]。最后,在缺磷條件下植物的地上部分也表現(xiàn)出明顯的癥狀,如植株矮小,生物量降低,葉片顏色變紫,花青素積累,抗性減弱,植物的營(yíng)養(yǎng)周期變短,提前開花完成生活史等[14]。此外,一些植物如豆科植物白羽扇豆在遇到低磷脅迫時(shí),可以形成排根(又稱簇生根),來提高植物根系與土壤的接觸面積,從而提高根系對(duì)磷的吸收能力[15,16]。

        2 低磷脅迫前后基因的差異表達(dá)譜

        植物體對(duì)低磷響應(yīng)的一系列適應(yīng)性變化過程是某些基因時(shí)空表達(dá)的結(jié)果。因此,許多研究者構(gòu)建磷脅迫誘導(dǎo)的表達(dá)譜,對(duì)磷脅迫誘導(dǎo)的基因進(jìn)行高通量的深入分析和功能研究,相繼在擬南芥、水稻、玉米和大豆等作物中發(fā)現(xiàn)低磷脅迫后大量的基因差異表達(dá),而且差異基因幾乎涉及到生理生化的所有途經(jīng)[17-20]。Wu 等[21]和 Misson 等[22]分別采用Microarray和Affymetrix芯片技術(shù)在擬南芥中發(fā)現(xiàn):磷脅迫前后有相當(dāng)一部分基因的表達(dá)發(fā)生了改變,且存在時(shí)空表達(dá)差異性,差異基因幾乎涉及到擬南芥所有的代謝途徑。Wasaki等[23]采用cDNAarray的方法對(duì)水稻磷脅迫不同時(shí)期的表達(dá)譜分析發(fā)現(xiàn):磷脅迫后糖酵解途經(jīng)、碳代謝途徑、脂代謝途經(jīng)、硫脂的合成和代謝,以及細(xì)胞壁的組分,金屬離子的代謝的相關(guān)基因的表達(dá)均發(fā)生了變化。Morcuende等[17]結(jié)合擬南芥Affymetrix芯片和qRT-PCR表達(dá)分析以及部分代謝關(guān)鍵酶活性的測(cè)定發(fā)現(xiàn),1000個(gè)以上的基因受到磷水平變化的調(diào)節(jié)。該研究還表明轉(zhuǎn)錄水平的變化并不必然導(dǎo)致蛋白或酶學(xué)水平的改變。綜合轉(zhuǎn)錄組的研究結(jié)果,根據(jù)低磷脅迫響應(yīng)基因的表達(dá)模式,可以將它們分成兩類:一類是早期快速響應(yīng)基因,研究發(fā)現(xiàn)在擬南芥中,低磷脅迫24-72d后,磷濃度發(fā)生變化,但植株的生物量未受到影響,所以這段時(shí)間內(nèi)誘導(dǎo)表達(dá)的基因稱為早期響應(yīng)基因。這些基因多數(shù)不是低磷脅迫的特異響應(yīng)基因,且在其啟動(dòng)子區(qū),PHO和TATA-box元件出現(xiàn)的頻率較高[14];另一類是低磷脅迫晚期響應(yīng)基因,其中大部分是隨著低磷脅迫的加劇而誘導(dǎo)表達(dá)的,是與低磷脅迫下植物形態(tài)、生理和代謝反應(yīng)相關(guān)的基因[14]。近年來蛋白質(zhì)組學(xué)的發(fā)展也為磷脅迫研究提供了新的手段。張舉仁教授實(shí)驗(yàn)室采用2-D技術(shù)結(jié)合質(zhì)譜鑒定了玉米缺磷脅迫17d后蛋白水平的變化發(fā)現(xiàn),差異蛋白涉及碳代謝、激素合成,細(xì)胞周期和信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)等途徑,并進(jìn)一步通過突變體分析發(fā)現(xiàn),在低磷條件下,根系中有13.6%的蛋白存在質(zhì)和量的顯著差異[24,25]。馮萬軍等[26]采用蛋白質(zhì)雙向電泳在小麥中檢測(cè)到1144個(gè)蛋白點(diǎn),有 87個(gè)在磷脅迫前后發(fā)生了表達(dá)變化,其中39個(gè)通過質(zhì)譜技術(shù)鑒定涉及到代謝、轉(zhuǎn)錄調(diào)控等功能類別。這些結(jié)果也進(jìn)一步印證了轉(zhuǎn)錄水平的研究結(jié)果。

        3 磷脅迫前后差異表達(dá)基因的功能類別

        綜合前人在轉(zhuǎn)錄和蛋白質(zhì)組上的研究結(jié)果發(fā)現(xiàn),磷脅迫相關(guān)的基因涉及到各個(gè)功能類別,包括代謝、發(fā)育過程、轉(zhuǎn)錄和翻譯、脅迫響應(yīng)等多個(gè)分子生物學(xué)途徑,其中代謝相關(guān)基因?yàn)樽疃唷@?,Hernández等[20]對(duì)菜豆在缺磷和富磷條件下進(jìn)行功能基因組學(xué)研究發(fā)現(xiàn),有126個(gè)基因差異表達(dá),其中上調(diào)表達(dá)的基因有78個(gè),編碼產(chǎn)物分別參與次生代謝途徑/脅迫與防御反應(yīng)(23%)、磷循環(huán)、碳代謝、氮代謝、酯類代謝和氨基酸/蛋白質(zhì)合成和降解(24%)、膜蛋白/胞內(nèi)和胞間運(yùn)輸(13%)和細(xì)胞結(jié)構(gòu)/細(xì)胞周期/發(fā)育(8%),功能未知的基因占9%。缺磷的根中下調(diào)表達(dá)的基因有48個(gè),最大的一類基因(11個(gè),23%)參與氨基酸和蛋白質(zhì)代謝,參與C/N代謝途徑的有5個(gè)基因(10%),屬于轉(zhuǎn)運(yùn)/膜蛋白類和細(xì)胞結(jié)構(gòu)/細(xì)胞周期/發(fā)育蛋白類的基因分別有9個(gè)(19%)和7個(gè)(15%),參與調(diào)控/信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)和次生代謝/防御途徑的基因分別占8%和6%。在過去的10年間,一些對(duì)低磷脅迫響應(yīng)基因相繼被分離鑒定。例如,Wasaki 等[23]在白羽扇豆中發(fā)現(xiàn),酸性磷酸酶(ACP)基因在低磷脅迫下的排根中表達(dá),其活性增強(qiáng)有利于土壤中有機(jī)磷的分解。分離出了負(fù)責(zé)植物體中磷的吸收和轉(zhuǎn)運(yùn)的磷轉(zhuǎn)運(yùn)子,其主要包括Pht1、Pht2 Pht3、Pho1和Pho2五大家族成員[27,28]、各種低磷脅迫反應(yīng)的調(diào)控基因-轉(zhuǎn)錄因子基因如MYB類轉(zhuǎn)錄因子PHR1,PHR2,受低磷誘導(dǎo)表達(dá)的WRKY類轉(zhuǎn)錄因子WRKY75,鋅指類轉(zhuǎn)錄因子ZAT6和BHLH類轉(zhuǎn)錄因子BHLH32[29-33],以及與磷吸收利用有關(guān)的核酸酶(RNases)基因等[34]。這些基因通過復(fù)雜的調(diào)控網(wǎng)絡(luò)參與植物對(duì)低磷的應(yīng)答。

        4 植物響應(yīng)低磷脅迫的基因表達(dá)網(wǎng)絡(luò)

        植物通過體內(nèi)的信號(hào)感受器獲得土壤有效磷缺乏的低磷脅迫信號(hào),通過復(fù)雜的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo),啟動(dòng)體內(nèi)與磷脅迫相關(guān)的基因表達(dá),通過調(diào)控植物體內(nèi)的生理生化過程,最終表現(xiàn)出一系列與低磷脅迫有關(guān)的形態(tài)特征,如地下部根系的變化-主根變短,側(cè)根、根毛的數(shù)目和密度增加,根冠比增加以及地上部的變化-花青素的積累增加等。Schachtman等[35]總結(jié)了目前已經(jīng)鑒定的與低磷反應(yīng)相關(guān)的基因,包括激素受體、轉(zhuǎn)錄因子、磷轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白及小RNA等(圖1)。這些基因的產(chǎn)物有的參與了低磷反應(yīng)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)過程,如細(xì)胞分裂素受體CRE1磷濃度變化的指示劑;轉(zhuǎn)錄因子PHR1是目前發(fā)現(xiàn)的低磷反應(yīng)的關(guān)鍵調(diào)控因子[36];編碼z2型磷脂酶D的基因(PLDz2)既參與低磷條件下植物根系的形態(tài)發(fā)生,又參與植物體中脂類成分的轉(zhuǎn)換;泛素連接酶PHO2、小RNA基因miR399以及磷轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白基因等是低磷反應(yīng)調(diào)控網(wǎng)絡(luò)中的下游基因,它們共同維持低磷條件下植物體磷穩(wěn)態(tài);SIZ1是一個(gè)植物小泛素樣修飾子(small ubiquitin-likemodifier,SUMO),即一個(gè)E3連接酶,是控制低磷反應(yīng)的關(guān)鍵因子,低磷脅迫時(shí)可以促使PHR1蛋白發(fā)生SUMO化,從而激活一系列低磷反應(yīng),并且負(fù)調(diào)控一些低磷響應(yīng)的下游基因如PSI、At4等的表達(dá)[37]。目前認(rèn)為以轉(zhuǎn)錄因子PHR1為中心,包括小RNA及蛋白泛素化途徑,是迄今為止首次發(fā)現(xiàn)的磷脅迫信號(hào)的轉(zhuǎn)錄后調(diào)控途徑[38]。

        圖1 植物體在正常及缺磷條件下的調(diào)控網(wǎng)絡(luò)系統(tǒng)[35]

        5 非編碼RNA參與的植物耐低磷脅迫途徑

        目前關(guān)于非編碼RNA與植物耐低磷脅迫的研究報(bào)道較少,且主要集中于模式植物擬南芥。

        5.1 小分子非編碼RNA參與的低磷脅迫信號(hào)機(jī)制

        Bari等[39]報(bào)道,miR399作為一種長(zhǎng)距離信號(hào)調(diào)節(jié)植株體內(nèi)的磷穩(wěn)態(tài),并通過系統(tǒng)分析PHO2、miR399和PHR1基因在磷脅迫誘導(dǎo)后的表達(dá)模式,提出了它們之間的上下游調(diào)控網(wǎng)絡(luò)(圖2)。推測(cè)miR399的靶基因是PHO2(AtUBC24),其編碼泛素化蛋白降解途徑中的泛素連接酶E2[38-40]。miR399由核基因編碼,成熟的miRNA399進(jìn)入細(xì)胞質(zhì)后與PHO2mRNA 3'端非編碼區(qū)的互補(bǔ)序列結(jié)合,誘發(fā)靶mRNA降解或抑制蛋白質(zhì)翻譯。磷饑餓時(shí)誘導(dǎo)miRNA399表達(dá),同時(shí)E2連接酶基因UBC24的表達(dá)受到抑制,而供磷恢復(fù)后miR399的表達(dá)水平則快速下降,使得UBC24的表達(dá)抑制被解除,這樣就提供了一個(gè)機(jī)制,即供磷水平在轉(zhuǎn)錄水平上調(diào)節(jié)miR399的表達(dá)豐度,進(jìn)而調(diào)控植物體內(nèi)與磷分配相關(guān)基因的表達(dá),從而維持植物體內(nèi)的磷穩(wěn)態(tài)。Pant等[41]通過微嫁接試驗(yàn),進(jìn)一步證實(shí)miR399是通過韌皮部從地上部莖轉(zhuǎn)運(yùn)到地下部根系,作為一種長(zhǎng)距離信號(hào)調(diào)節(jié)植物體磷穩(wěn)態(tài)。我們?cè)谟衩字醒芯堪l(fā)現(xiàn)小分析非編碼RNAmiR399以及miR447在磷脅迫后迅速發(fā)生差異表達(dá),表明其參與玉米對(duì)低磷脅迫的響應(yīng)(結(jié)果未發(fā)表)。

        5.2 長(zhǎng)鏈非編碼RNA(lncRNA)與植物耐低磷脅迫的關(guān)系

        有資料顯示,lncRNA TPSI1/Mt4基因家族成員參與了擬南芥植株體內(nèi)磷的分配和磷穩(wěn)態(tài)調(diào)控[42]。在磷饑餓條件下,家族成員At4在維管組織中被誘導(dǎo)表達(dá),在低磷條件下,at4根吸收磷的速度下降而向地上部的轉(zhuǎn)運(yùn)速率增加,結(jié)果導(dǎo)致根中無機(jī)磷含量降低。該家族的另一成員AtIPS1,受磷饑餓誘導(dǎo)表達(dá),且在野生型中表現(xiàn)為組成型表達(dá);而在富磷環(huán)境下的pho1突變體內(nèi),AtIPS1的表達(dá)則僅限于根的內(nèi)皮層中。表明其控制植株體內(nèi)磷分配的系統(tǒng)信號(hào)是以負(fù)調(diào)控的方式發(fā)揮作用[42]。

        隨著基因芯片及高通量測(cè)序技術(shù)的發(fā)展,一些新的低磷脅迫相關(guān)的非編碼RNA的發(fā)現(xiàn),為這一領(lǐng)域的研究提供了更詳實(shí)的證據(jù)[43]。miR399包括多個(gè)家族成員,在玉米和水稻中分別有10和11個(gè)。miR399及其靶基因PHO2/UBC24在單子葉和雙子葉植物之間相當(dāng)保守[44]。

        6 植物激素參與低磷脅迫信號(hào)的傳導(dǎo)

        目前認(rèn)為植物激素細(xì)胞分裂素(CTK)參與了植物對(duì)體內(nèi)磷營(yíng)養(yǎng)信號(hào)通路的感應(yīng)[45],在低磷條件下植物體內(nèi)CTK含量顯著降低,外源施加CTK可以抑制低磷響應(yīng)基因IPS1、At4等基因的表達(dá)[46]。生長(zhǎng)素也可能在植物根系響應(yīng)低磷反應(yīng)中起重要作用,據(jù)報(bào)道低磷脅迫增加擬南芥根系對(duì)生長(zhǎng)素的敏感性,并且外源生長(zhǎng)素處理可以使高磷植株表現(xiàn)出低磷條件下的形態(tài)特征[47]。徐中平[48]發(fā)現(xiàn),低磷使得玉米植株根系的構(gòu)型發(fā)生了改變,這與生長(zhǎng)素和玉米素在根部的水平和分布以及兩種激素濃度比例的變化有關(guān)。Borch等[49]發(fā)現(xiàn),在低磷脅迫條件下,菜豆根系中乙烯含量增加且表型發(fā)生變化,乙烯還參與低磷脅迫條件下擬南芥主根的伸長(zhǎng)和根毛的形成[50]。此外,ABA和赤霉素等植物激素、糖信號(hào)和包括JA在內(nèi)的生物逆境調(diào)節(jié)途徑可能也參與了磷脅迫基因的調(diào)節(jié)。

        圖 2miRNA399介導(dǎo)的磷脅迫信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑[38]

        7 展望

        植物在低磷脅迫條件下,體內(nèi)的新陳代謝、生理生化反應(yīng)發(fā)生改變,進(jìn)而導(dǎo)致根系以及地上部發(fā)生變化,這些適應(yīng)性改變有利于提高植物對(duì)土壤中磷的吸收利用效率,降低植物對(duì)低磷脅迫所造成的傷害。近年來,一些與磷吸收和利用以及低磷脅迫下根系發(fā)育相關(guān)的突變體被篩選出來,低磷脅迫導(dǎo)致根系發(fā)育異常的分子機(jī)制研究取得了很大進(jìn)展。研究發(fā)現(xiàn)相關(guān)蛋白、激素、轉(zhuǎn)錄因子基因通過復(fù)雜的代謝網(wǎng)絡(luò)調(diào)控低磷脅迫下植物的生長(zhǎng)發(fā)育,但這一復(fù)雜的基因調(diào)控網(wǎng)絡(luò)目前尚未解析,采用轉(zhuǎn)錄組測(cè)序以及功能基因組研究技術(shù),將有助于深入解析相關(guān)基因的功能及其參與的代謝網(wǎng)絡(luò)的調(diào)控機(jī)制。另外,由于目前對(duì)于低磷脅迫分子機(jī)制的研究多集中于模式植物擬南芥中,在相關(guān)作物中的研究相對(duì)較少,相信借助于擬南芥的研究成果,解析植物耐低磷的分子機(jī)制,克隆重要候選基因,對(duì)于培育磷高效的作物新品種將具有深遠(yuǎn)的意義。

        [1] Li JY, Liu XD, Zhou W.Study on the new technology of crop breeding on available utilizing phosphate in soils[J].Sciences in China(Ser B), 1995, 25:41-48.

        [2] 沈善敏.中國(guó)土壤肥力[M].北京:中國(guó)農(nóng)業(yè)出版社, 1998:212-273.

        [3] Raghothama KG.Phosphate acquisition[J].Plant Mol Biol, 1999,50:665-693.

        [4] Sanchez PA, Salinas JG.Low input technology formanaging oxisols and ultisols in tropical[J].America Adv Agron, 1981, 34:279-406

        [5] 李偉, 印莉萍.基因組學(xué)相關(guān)概念及其研究進(jìn)展[J].生物學(xué)通報(bào) , 2000, 35(11):1-3.

        [6] 解濤, 梁衛(wèi)平, 丁達(dá)夫.后基因組時(shí)代的基因組功能注釋[J].生物化學(xué)與生物物理進(jìn)展, 2000, 27(2):166-170.

        [7] Sánchez-Calderón L, López-Bucio J, Chacón-López A, et al.Characterization of low phosphorus insen-sitivemutants reveals a crosstalk between low phosphorus-induced determinate root development and the activation of genes involved in the adaptation of Arabidopsis to phosphorus deficiency[J].Plant Physiol, 2006, 140:879-889.

        [8] Bates TR, Lynch JP.Roothairs confer a competitive advantage under low phosphorus availability[J].Plant Soil, 2001, 236:243-250.

        [9] 邢國(guó)芳.植物根系發(fā)育及其激素調(diào)控機(jī)理[M].北京:中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)技術(shù)出版社, 2012:84-92.

        [10] 嚴(yán)小龍, 廖紅, 戈振揚(yáng), 等.植物根構(gòu)型特性與磷吸收效率[J].植物學(xué)通報(bào), 2000, 171(6):511-519.

        [11] Osmont KS, Sibout R, Hardtke CS.Hidden branches:developments in root system architecture[J].Ann Rev Plant Biol, 2007,58:93-113.

        [12] Desnos T.Root branching responses to phosphate and nitrate[J].Curr Opin Plant Biol, 2008, 11:82-87.

        [13] Chapin FS.Themineral nutrition of wild plants[J].Ann Rev Ecol Syst, 1980, 11:233-260.

        [14] Hammond JP, Bennett MJ, Bowen HC.Changes in gene expression in Arabidopsis shoots during phosphate starvation and the potential for developing[J].Plant Physiology, 2003, 132:578-596.

        [15] Keerthisinghe G, Hocking PJ, Ryan PR, et al.Effect of phosphorus supply on the formation and function of proteoid roots of white lupin(Lupinus albus L.)[J].Plant Cell Environ, 1998, 21:467-478.

        [16] Neumann G, Massonneau A, Martinoia E, et al.Physiological adaptation to phosphorus deficiency during proteoid root development in white lupin[J].Planta, 1999, 208:373-382.

        [17] Morcuende R, Bari RP, Gibon Y, et al.Genome-wide reprogramming ofmetabolism and regulatory networks of Arabidopsis in response to phosphorus[J].Plant Cell and Environt, 2007, 30(1):85-112.

        [18] Wasaki J, Shinano T, Onishi K, et al.Transcriptomic analysis indicates putativemetabolic changes caused bymanipulation of phosphorus availability in rice leaves[J].Jour of Expe Bota,2006, 57(9):2049-2059.

        [19] Calderon-Vazquez C, Ibarra-Laclette E, Caballero-Perez J, et al.Transcript profiling of Zeamays roots reveals gene responses to phosphate deficiency at the plant-and species-specific levels[J].J Exp Bot, 2008, 59:2479-2497.

        [20] Hernández G, Ramírez M, Valdés-López O, et al.Phosphorus stress in common bean :root transcript andmetabolic responses[J].Plant Physiol, 2007, 144:752-767.

        [21] Wu P, Ma LG, Hou XL.Phosphate starvation triggers distinct alterations of genome expression in Arabidopsis roots and leaves[J].Plant Physiology, 2003, 132:260-1271.

        [22] Misson J, Raghothama KG, Jain A.A genome-wide transcriptional analysis using Arabidopsis thaliana Affymetix gene chips determined plantresponses to phosphate deprivation[J].Proc Natl Acad Sci,2005, 102(33):11934-11939.

        [23] Wasaki J, Yamamura T, Shinano T, et al.Secreted acid phosphatase is expressed in cluster roots of lupin in response to phosphorus deficiency[J].Plant & Soil, 2003, 248:129-136.

        [24] Li KP, Xu ZP, Zhang KW, et al.Efficient production and characterization formaize inbred lines with low-phosphorus tolerance[J].Plant Sci, 2007, 172:255-264.

        [25] Li KP, Xu CZ, Li ZX, et al.Comparative proteome analyses of phosphorus responses inmaize(Zeamays L.)roots of wild-type and low-P-tolerantmutant reveal root characteristics associated with phosphorus efficiency[J].Plant J, 2008, 55:927-939.

        [26] 馮萬軍, 李振興, 郭寶健, 等.小麥磷饑餓前后根系蛋白質(zhì)組差異表達(dá)蛋白譜建立及差異表達(dá)蛋白的鑒定[J].作物學(xué)報(bào),2012, 38(5):780-790.

        [27] Uta P, Scott K, Christophe R, et al.Rice phosphate transporters include an evolutionarily divergent gene specifically activated in arbuscularmycorrhizal symbiosis[J].Proc Natl Acad Sci USA,2002, 99:13324-13329.

        [28] Li ZX, Gao Q, Liu YZ, et al.Overexpression of transcription factor ZmPTF1 improves low phosphate tolerance ofmaize by regulating carbonmetabolism and root growth[J].Planta, 2011, 233:1129-1143.

        [29] Thibaud MC, Arrighi JF, Bayle V, et al.Dissection of local and systemic transcriptional responses to phosphate starvation in Arabidopsis[J].Plant J, 2010, 64:775-789.

        [30] Wu P, Wang X.Role of OsPHR2 on phosphorushomeostasis and roothairs development in rice(Oryza sativa L.)[J].Plant Signal Behav, 2008, 3:674-675.

        [31] Devaiah BN, Karthikeyan AS, Raghothama KG.WRKY75 transcription factor is amodulator of phosphate acquisition and root development in Arabidopsis[J].Plant Physiol, 2007, 143:1789-1801.

        [32] Devaiah BN, Nagarajan VK, Raghothama KG.Phosphatehomeostasis and root development in Arabidopsis are synchronized by the zinc finger transcription factor ZAT6[J].Plant Physol, 2007,145:147-159.

        [33] Chen ZH, Nimmo GA, Jenkins GI, et al.BHLH32modulates several biochemical andmorphological processes that respond to Pi starvation in Arabidopsis[J].Biochem J, 2007, 405:191-198.

        [34] Bariola PA, Howard CJ, Taylor CB, et al.The Arabidopsis ribonuclease gene RNS1 is tightly controlled in response to phosphate limitation[J].Plant J, 1994, 6:673-685.

        [35] Schachtman DP, Shin R.Nutrient sensing and signaling:NPKS[J].Annual Review of Plant Biology, 2007, 58:47-69.

        [36] Zhou J, Jiao FC, Wu ZC, et al.OsPHR2 is involved in phosphatestarvation signaling and excessive phosphate accumulation in shoots of plants[J].Plant Physiol, 2008, 146(4):1673-1686.

        [37] Miura K, Rus A, Sharkhuu A, et al.The Arabidopsis SUMO E3 ligase SIZ1 controls phosphate deficiency responses[J].Proc Natl Acad Sci USA, 2005, 102:7760-7764.

        [38] Aung K, Lin SI, Wu CC, et al.Pho2, a phospha over accumulator,is caused by a nonsensemutation in amicroRNA399 target gene[J].Plant Physiol, 2006, 141:1000-1011.

        [39] Bari R, Pant BD, Stitt M, et al.PHO2,microRNA399, and PHR1define a phosphate-signaling pathway in plants[J].Plant Physiol,2006, 141:988-999.

        [40] Chiou TJ, Aung K, Lin SI, et al.Regulation of phosphatehomeostasis bymicroRNA in Arabidopsis[J].Plant Cell, 2006, 18:412-421.

        [41] Pant BD, Buhtz A, Kehr J, et al.MicroRNA399 is a long-distance signal for the regulation of plant phosphatehomeostasis[J].Plant J, 2008, 53:731-738.

        [42] Shin H, Shin HS, Chen R, et al.Loss of At4 function impacts phosphate distribution between the roots and the shoots during phosphate starvation[J].Plant J, 2006, 45(5):712-726.

        [43] Pant BD, Musialak-lange M, Nuc P, et al.Identification of nutrientresponsive Arabidopsis and rapeseedmicroRNAs by comprehensive real-time polymerase chain reaction profiling and small RNA sequencing[J].Plant Physiol, 2009, 150:1541-1555.

        [44] Hu B, Zhu CG, Li F, et al.LEAF TIP NECROSIS 1 plays a pivotal role in the regulation ofmultiple phosphate starvation responses in rice[J].Plant Physiol, 2011, 156(3):1101-1115.

        [45] Martin AC, del Pozo JC, lglesias J.Influnce of cytokinins on the expression of phosphate starvation responsive genes in Arabidopsis[J].Plant J, 2000, 24(5):559-567.

        [46] Wang XM, Yi KK, Tao Y, et al.Cytokinin represses phosphatestarvation response through increasing of intracellular phosphate level[J].Plant Cell and Environment, 2006, 29:1924-1935.

        [47] López-Bucio J, Hernandez-Abreu E, Sunchez-Calderon L, et al.Phosphate availability alters architecture and causes changes inhormone sensitivity in the Arabidopsis root system[J].Plant Physiology, 2002, 129:244-256.

        [48] 徐中平.低磷脅迫對(duì)玉米磷吸收、轉(zhuǎn)運(yùn)及IAA和CTK水平與分布的影響[D].濟(jì)南:山東大學(xué), 2008:69-86.

        [49] Borch K, Bouma TJ, Lynch JP, et al.Ethylene:a regulator of root architectural responses to soil phosphorus availability[J].Plant Cell and Environment, 1999, 22:425-431.

        [50] Ma Z, Baskin TI, Brown KM, et al.Regulation of root elongation under phosphorus stress involves changes in ethylene responsiveness[J].Plant Physiology, 2003, 131:1381-1390.

        猜你喜歡
        基因組學(xué)擬南芥根系
        擬南芥:活得粗糙,才讓我有了上太空的資格
        基于基因組學(xué)數(shù)據(jù)分析構(gòu)建腎上腺皮質(zhì)癌預(yù)后模型
        雅安市:織密根治欠薪“根系網(wǎng)”
        系統(tǒng)基因組學(xué)解碼反芻動(dòng)物的演化
        科學(xué)(2020年2期)2020-08-24 07:56:44
        尿黑酸對(duì)擬南芥酪氨酸降解缺陷突變體sscd1的影響
        根系分泌物解鋁毒作用研究進(jìn)展
        兩種LED光源作為擬南芥生長(zhǎng)光源的應(yīng)用探究
        擬南芥干旱敏感突變體篩選及其干旱脅迫響應(yīng)機(jī)制探究
        烤煙漂浮育苗根系致腐細(xì)菌的分離與鑒定
        長(zhǎng)期膜下滴灌棉田根系層鹽分累積效應(yīng)模擬
        国产精品高清网站| 久久日日躁夜夜躁狠狠躁| 国产精品久久久三级18| 热99re久久精品这里都是精品免费| 国产综合在线观看| 久久久久久久人妻无码中文字幕爆| 国产精品一区二区暴白浆| 国产成人国产在线观看| 91精品亚洲一区二区三区| 蜜桃人妻午夜精品一区二区三区| 日本最新视频一区二区| 少妇真人直播免费视频| 亚洲av日韩精品久久久久久久| 欧美日韩亚洲国产精品| 国产成人AV无码精品无毒| 国产精品女同久久久久久| 国产一级一区二区三区在线播放| 狠狠色欧美亚洲狠狠色www| 性一交一乱一伦一色一情孩交| 91视频香蕉| 亚洲人成网站www| 久久精品国产精品亚洲艾| 国产精品第一二三区久久| 内射少妇36p亚洲区| 精品无码久久久久久久动漫| 久久精品国产热久久精品国产亚洲| 日本免费一区精品推荐| 一区二区高清免费日本| 国产成人精品999视频| 亚洲成av人片在线观看无码 | 色翁荡息又大又硬又粗视频| 国产99视频精品免视看9| 国产精品第1页在线观看 | 1000部精品久久久久久久久| 久久青草国产精品一区| 亚洲国产精品一区亚洲国产| 国产精品日韩av一区二区三区| 夜夜躁狠狠躁日日躁视频| 免费a级毛片无码a∨免费软件| 国产一区二区欧美丝袜| 少妇一区二区三区精选|