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        設(shè)施菜田土壤微生物學(xué)障礙研究進展

        2013-09-10 04:44:34田永強王敬國高麗紅
        中國蔬菜 2013年20期

        田永強 王敬國 高麗紅

        (1中國農(nóng)業(yè)大學(xué)農(nóng)學(xué)與生物技術(shù)學(xué)院,設(shè)施蔬菜生長發(fā)育調(diào)控北京市重點實驗室,北京 100193;2中國農(nóng)業(yè)大學(xué)資源與環(huán)境學(xué)院,北京 100193)

        設(shè)施菜田土壤微生物學(xué)障礙研究進展

        田永強1,2王敬國2高麗紅1*

        (1中國農(nóng)業(yè)大學(xué)農(nóng)學(xué)與生物技術(shù)學(xué)院,設(shè)施蔬菜生長發(fā)育調(diào)控北京市重點實驗室,北京 100193;2中國農(nóng)業(yè)大學(xué)資源與環(huán)境學(xué)院,北京 100193)

        單一種植(連作和簡單輪作)和水肥高投入是我國設(shè)施蔬菜種植中的普遍現(xiàn)象,這使得設(shè)施菜田土壤極易出現(xiàn)微生物多樣性下降、病原菌增多和寄生線蟲為害等土壤微生物學(xué)障礙問題。土壤微生物學(xué)障礙已對我國設(shè)施蔬菜種植體系土壤的可持續(xù)利用構(gòu)成了很大的威脅。土壤微生物是影響植物生長、進化進程和生產(chǎn)力的重要因素之一。目前我國有關(guān)設(shè)施菜田土壤微生物學(xué)障礙的研究已取得了顯著的進展。但是,多數(shù)研究側(cè)重于人為管理對土壤微生物學(xué)因子影響的一般性變化的了解,缺乏對土壤生態(tài)服務(wù)功能變化的深入研究。為此,本文闡述了國內(nèi)外土壤微生物學(xué)障礙研究,并在此基礎(chǔ)上概述了土壤微生物-作物互作的生態(tài)學(xué)效應(yīng),分析了設(shè)施菜田土壤微生物學(xué)障礙研究的關(guān)鍵點。此外,本文簡要介紹了目前我國設(shè)施菜田土壤微生物學(xué)障礙調(diào)控的主要生態(tài)措施,并對未來深入揭示設(shè)施菜田土壤微生物學(xué)障礙的潛在成因的關(guān)鍵切入點提出了建議。

        設(shè)施蔬菜;土壤微生物學(xué)障礙;調(diào)控措施;綜述

        種植設(shè)施蔬菜是目前我國農(nóng)民增收的主要途徑之一。我國設(shè)施園藝(主要是蔬菜)種植面積由20世紀80年代的0.03萬hm2(劉步洲和陳端生,1989)發(fā)展到2010年的467萬hm2(設(shè)施蔬菜350萬hm2)(喻景權(quán),2011),且依舊呈逐年上升的趨勢(郭世榮 等,2012)。但是,由于土地資源短缺、農(nóng)民種植習(xí)慣和經(jīng)濟利益驅(qū)動等諸多原因(王敬國,2011),單一種植(包括連作和簡單輪作)和水肥高投入(包括高氮有機肥和無機肥)是我國設(shè)施蔬菜種植中的普遍現(xiàn)象(Yao et al.,2006;Guo et al.,2010)。同時,與大田的全開放體系不同,設(shè)施菜田在全年多數(shù)時間內(nèi)(北方日光溫室常在夏季進行揭膜曬棚,此時這些設(shè)施菜田也處于全開放體系中)處于半封閉狀態(tài)下,其小氣候環(huán)境具有高溫多濕的特點(吳鳳芝,2000;Gao et al.,2010)。上述人為直接和間接影響的綜合作用,使得設(shè)施菜田種植蔬菜幾年以后極易發(fā)生土壤理化性狀惡化、土壤生物區(qū)系失衡(包括微生物區(qū)系失衡和土傳動物病害加重)和植物源有害物(包括自毒物質(zhì))累積等土壤質(zhì)量惡化現(xiàn)象(吳鳳芝,2000),進而直接或間接造成土壤微生物學(xué)障礙和作物產(chǎn)量下降等問題。例如,以黃瓜為例,單一種植(連作)土壤中作物致病菌數(shù)是合理輪作土壤的1.5~2.7倍,微生物多樣性下降5%~23%(王敬國,2011)。正確認識土壤微生物在設(shè)施蔬菜作物生長障礙發(fā)生方面的作用,對有效控制土壤微生物學(xué)障礙發(fā)生,促進設(shè)施蔬菜產(chǎn)業(yè)體系的可持續(xù)發(fā)展,具有十分重要的意義。

        1 設(shè)施菜田土壤微生物學(xué)障礙的研究現(xiàn)狀

        自20世紀末開始,我國設(shè)施,尤其是北方日光溫室和大棚蔬菜的連作障礙問題日益突出。在一定程度上,設(shè)施蔬菜連作障礙的普遍發(fā)生與化肥使用量的逐年上升和設(shè)施蔬菜集約化種植帶來的“單一種植”習(xí)慣密切相關(guān)。這也是我國設(shè)施蔬菜連作障礙問題日益突出的人為驅(qū)動因素(Yao et al.,2006;Guo et al.,2010;Tian et al.,2011b)。為了探究連作障礙的內(nèi)在成因,我國科研工作者圍繞土壤理化性狀、蔬菜作物的化感自毒作用、土傳真菌病害和植物寄生線蟲(特別是根結(jié)線蟲)危害的控制等方面進行了大量的研究工作,取得了非常顯著的進展(吳鳳芝,2000;王敬國,2011;喻景權(quán),2011)。近年來的研究表明,除了連作,水肥的過量投入也是引起設(shè)施菜田土壤障礙因子產(chǎn)生的重要原因之一(Guo et al.,2010)。事實上,土壤障礙因子產(chǎn)生是上述諸多因素,包括人為直接和間接引起的土壤和氣候等因素綜合作用的結(jié)果。隨著研究工作的深入,研究者逐漸認識到土壤生物學(xué)因子在蔬菜作物生長障礙中起著非常重要的作用(Yao et al.,2006;Tian et al.,2009,2011b,2013)。土壤生物直接或間接參與調(diào)控土壤中的各個生物地球化學(xué)過程,能夠為作物協(xié)調(diào)養(yǎng)分和水分,同時提供良好的通氣條件,并能夠控制污染和凈化環(huán)境(Sanguin et al.,2009;Berendsen et al.,2012;Simard et al.,2012;Inselsbacher &N?sholm,2012;Kuzyakov & Xu,2013)。此外,土壤有害生物和病原生物可抑制蔬菜生長發(fā)育(Tian et al.,2011b),進一步影響土壤生態(tài)服務(wù)功能的正常發(fā)揮(Sanguin et al.,2009;Berendsen et al.,2012)。相對于土壤物理和化學(xué)的障礙,土壤微生物學(xué)障礙的控制要困難得多(王敬國,2011)。因此,探明土壤微生物學(xué)障礙的成因是設(shè)施蔬菜種植體系土壤可持續(xù)利用的前提,也是貫穿設(shè)施蔬菜土壤微生物學(xué)障礙調(diào)控過程的基礎(chǔ)科學(xué)問題。

        與其他種植體系相比,設(shè)施蔬菜生產(chǎn)體系具有較高的水肥投入(Guo et al.,2010),且設(shè)施內(nèi)部環(huán)境具有氣溫高、濕度大等特點(Gao et al.,2010)。隨著設(shè)施蔬菜生產(chǎn)的產(chǎn)業(yè)化、專業(yè)化、規(guī)模化,目前我國設(shè)施栽培的蔬菜種類主要局限于幾種經(jīng)濟效益相對較高的果菜類。但是,果菜類蔬菜隨著栽培年限(即使是簡單輪作)的增加,其土壤微生物學(xué)障礙引起的作物持續(xù)減產(chǎn)現(xiàn)象相當(dāng)普遍(王敬國,2011)。土壤微生物學(xué)障礙指“在自然或農(nóng)田生態(tài)系統(tǒng)中,植物-土壤的相互作用導(dǎo)致土壤生物種群發(fā)生了不利于某種植物生長和發(fā)育改變的現(xiàn)象”(王敬國,2011)。在設(shè)施菜田中,這種改變主要表現(xiàn)為植物有益微生物減少、病原菌增多和寄生線蟲為害等。設(shè)施菜田土壤微生物學(xué)障礙容易引起作物產(chǎn)量減少和品質(zhì)降低等一系列不良現(xiàn)象,直接威脅土壤健康及可持續(xù)生產(chǎn)。引起設(shè)施菜田土壤微生物學(xué)障礙的原因錯綜復(fù)雜,是土壤-作物系統(tǒng)內(nèi)部諸多因素綜合作用的結(jié)果。根據(jù)已有研究(吳鳳芝,2000;Yao et al.,2006;Guo et al.,2010;王敬國,2011;Tian et al.,2011b)表明,引起設(shè)施菜田土壤微生物學(xué)障礙的直接和間接原因可能包括:① 微生物區(qū)系失衡,包括微生物多樣性下降、有益微生物減少和病原菌增多等;② 寄生線蟲為害,特別是根結(jié)線蟲增多;③ 植物根系分泌的化感自毒物質(zhì)在土壤中累積,作物抗逆性下降;④ 土壤理化性狀劣化,包括土壤板結(jié)、酸化、次生鹽漬化和養(yǎng)分失衡等。此外,受微生物調(diào)控的土壤碳、氮礦化-固持失衡也可能是引起設(shè)施菜田土壤微生物學(xué)障礙的直接和間接原因之一(Tian et al.,2010,2011a),存在對植物生長不利的物理和化學(xué)障礙因素的土壤,土壤生物學(xué)障礙的發(fā)生更為嚴重(王敬國,2011)。這說明土壤微生物學(xué)障礙與土壤理化性狀存在一定的相互作用。例如,設(shè)施菜田中過量施肥引起的土壤酸化(Guo et al.,2010)可能會引起土壤病原真菌增多(Borrero et al.,2004;Bonanomi et al.,2010)。事實上,在設(shè)施菜田中,土壤微生物學(xué)障礙常常與土壤物理障礙和化學(xué)障礙伴隨發(fā)生(王敬國,2011)。例如,植物根系分泌的化感物質(zhì)的存在,有可能幫助病原生物對寄主侵染,加重其致病作用 (王敬國,2011)。有關(guān)設(shè)施菜田的最新研究(Zhou et al.,2011;Zhou & Wu,2012a)表明,一些作物根系分泌的化感物質(zhì)〔如黃瓜根系分泌的阿魏酸(Ferulic acid)〕可能通過改變作物根際微生物群落組成加重植物的自毒作用。例如,黃瓜分泌的肉桂酸(Cinnamic acid)和香豆酸(p-Coumaric acid)對黃瓜枯萎病原菌——尖孢鐮刀菌的侵染有促進作用(Ye et al.,2004;Zhou & Wu,2012b)。從這一層面講,設(shè)施菜田土壤微生物學(xué)障礙是單一種植和水肥過量投入等不當(dāng)?shù)娜藶楣芾硪鸬母H土壤微生態(tài)失衡的結(jié)果,具體表現(xiàn)為土壤病原生物及相關(guān)不利因素超平衡狀態(tài)的存在。這種不利因素超平衡狀態(tài)的存在主要表現(xiàn)在土壤養(yǎng)分失衡、土壤酸堿失衡、土壤微生物區(qū)系失衡、土壤線蟲區(qū)系失衡、土壤碳氮礦化-固持失衡等幾方面(圖1)。

        (1)土壤養(yǎng)分失衡。水肥高投入可直接引起土壤養(yǎng)分的過度累積。此外,單一種植下由于同種屬作物的養(yǎng)分吸收(如特定的氮/磷/鉀吸收比)和根系分布(如深根系、淺根系等)特性,使得某些土壤養(yǎng)分(單一養(yǎng)分)或某層土壤養(yǎng)分(同層養(yǎng)分)過度吸收(劉軍 等,2007;Guo et al.,2008)。這兩種措施均可能打破原有的養(yǎng)分投入-作物吸收平衡,即土壤養(yǎng)分失衡。由于不同微生物構(gòu)成(如微生物生物量碳/氮比值)存在差異,土壤養(yǎng)分失衡很容易造成土壤微生物區(qū)系失衡(Manzoni & Porporato,2009;Tian et al.,2009)。

        (2)土壤酸堿失衡。水肥高投入引起的土壤酸化被普遍證實(Guo et al.,2010)。此外,水肥高投入也是加劇土壤次生鹽漬化的重要驅(qū)動因素之一(Guo et al.,2008)。酸化和次生鹽漬化均可直接引起土壤酸-堿失衡。不同微生物對土壤pH的適應(yīng)性存在差異,例如,真菌偏酸性,多數(shù)細菌嗜中性(Rousk et al.,2010),而古生菌可適應(yīng)的pH值范圍廣(Leininger et al.,2006)。因此,土壤酸堿失衡是土壤微生物區(qū)系失衡的重要因素之一。

        (3)土壤微生物區(qū)系失衡。微生物多樣性下降、病原菌增多和有益微生物減少是土壤微生物區(qū)系失衡的主要表現(xiàn)形式。從表面上看,這一失衡主要由單一種植引起。事實上,單一種植下作物根系特定的分泌物可能“刺激”了病原菌的生長(Ye et al.,2004;Zhou & Wu,2012b)。多數(shù)土傳病害由真菌引起,而真菌嗜酸性(Rousk et al.,2010)。因此,酸堿失衡也是微生物區(qū)系失衡的重要因素之一。此外,由于線蟲存在食細菌和/或食真菌等不同偏好,且同類線蟲(如取食真菌線蟲)對不同微生物物種的偏好也不同(Sánchez-Moreno et al.,2010),因此線蟲失衡也是土壤微生物區(qū)系失衡的重要因素之一。

        (4)土壤線蟲區(qū)系失衡。線蟲多樣性下降和植食性線蟲增多是土壤線蟲區(qū)系失衡的主要表現(xiàn)形式。這種失衡主要是由單一種植下特定作物根系范圍內(nèi)某些植食性線蟲滋生引起的(Tian et al.,2011b)。如前所述,線蟲失衡也是土壤微生物區(qū)系失衡的重要因素之一;同時,微生物區(qū)系失衡也可能是線蟲區(qū)系失衡原因。

        (5)土壤碳氮礦化-固持失衡。單一種植和水肥高投入均可引起土壤碳氮礦化-固持失衡(Tian et al.,2011a)。土壤微生物是調(diào)控土壤碳素、氮素及其他元素礦化過程的重要因子(Manzoni & Porporato,2009)。一方面,土壤難以直接利用的養(yǎng)分可以被微生物礦化成可直接利用的養(yǎng)分;另一方面,部分無機養(yǎng)分可以被微生物以自身組成的方式固定,而這有利于減緩無機養(yǎng)分的淋洗和以氣體形式散失(Manzoni & Porporato,2009)。因此,土壤碳氮礦化-固持失衡與微生物區(qū)系失衡密切相關(guān),同時也與其他平衡間存在各種復(fù)雜的關(guān)系。

        綜上,微生物區(qū)系失衡是設(shè)施菜田土壤微生物學(xué)障礙的主要表現(xiàn)形式,而其與土壤其他各區(qū)系的平衡狀態(tài)存在各種復(fù)雜的關(guān)系,并不是某一個或某幾個因素簡單作用的結(jié)果。從上述研究結(jié)果來看,目前我國的相關(guān)研究已取得了顯著的進展。盡管如此,與國際上類似的研究相比,我國的研究無論在研究手段還是理論創(chuàng)新方面,都有很大的上升空間(Rudrappa et al.,2008;Sanguin et al.,2009;Berendsen et al.,2012)。

        雖然目前我國有關(guān)設(shè)施菜田土壤微生物學(xué)障礙的研究已取得了顯著的進展,但相關(guān)研究的總體深度仍然不夠,且多數(shù)研究側(cè)重于人為管理對土壤微生物學(xué)因子影響的一般性變化的了解,缺乏對土壤生態(tài)服務(wù)功能變化的深入研究。土壤生物群落結(jié)構(gòu)和功能的改變,意味著受它調(diào)節(jié)的養(yǎng)分循環(huán)、能量流動和有機物質(zhì)轉(zhuǎn)化等重要的生態(tài)系統(tǒng)過程發(fā)生變化,這些過程常常間接對蔬菜作物生長和發(fā)育產(chǎn)生影響。此外,土壤生物種群結(jié)構(gòu)和數(shù)量的改變也對蔬菜作物存在直接的作用,例如,病原菌和寄生線蟲對作物存在直接的入侵為害,有益生物(固氮生物、植物促生菌等)則對作物生長存在直接的促進作用(同時也可能存在間接的促進作用,例如叢枝菌根真菌可增加磷虧缺土壤中作物根際磷素的有效性)。因此,從根本上講,不當(dāng)?shù)娜藶楣芾碛绊懜H土壤生物群落結(jié)構(gòu),引起土壤微生態(tài)系統(tǒng)失衡(如土壤有益微生物-病原菌失衡、非植物寄生線蟲-寄生線蟲失衡、微生物-線蟲失衡等),是土壤微生物學(xué)障礙產(chǎn)生的最主要的原因。

        圖1 設(shè)施菜田土壤作物根際微生態(tài)失衡現(xiàn)狀及可能的驅(qū)動機制

        2 土壤微生物-作物互作的生態(tài)學(xué)效應(yīng)

        植物根系能夠向自身的根際分泌大量和多種多樣的小分子物質(zhì),這些物質(zhì)常常對作物生長具有潛在的促進作用。例如,當(dāng)模式植物擬南芥的葉片受到病原菌丁香假單孢菌PstdC3000攻擊的時候,其根系通過分泌一種特定的小分子物質(zhì),即蘋果酸,在擬南芥根際“召集”枯草芽孢桿菌FB-17,通過自下而上的信號傳導(dǎo),對病原菌的“攻擊”進行“防御”(Rudrappa et al.,2008)。對于有些植物而言,植物根系分泌物中可能會存在一些對自身生長形成毒害的物質(zhì)。例如,無土培養(yǎng)條件下,黃瓜根系能夠分泌肉桂酸等化感物質(zhì)對自身生長產(chǎn)生一定程度的抑制(Yu &Matsui,1997)。然而,在自然或農(nóng)田生態(tài)系統(tǒng)(田間原位)中,這種化感自毒作用很可能與微生物因子相關(guān)聯(lián)。這種關(guān)聯(lián)可能存在三種機制:① 化感物質(zhì)被微生物作為碳源和/或氮源迅速或逐漸分解,其結(jié)果是并未對植物自身產(chǎn)生毒害;② “協(xié)同”或“督促”病原微生物對植物展開“攻擊”(Barrett et al.,2009),這種機制的根源很可能是因為化感自毒物質(zhì)創(chuàng)造了利于植物病原微生物生長的生物和/或非生物環(huán)境;③ 根際微生物的生物膜“阻隔”或“削弱”了化感物質(zhì)對植物的毒害作用(Lugtenberg & Kamilova,2009;Berendsen et al.,2012)。

        事實上,由于土壤微生物廣泛參與調(diào)節(jié)各個土壤生物地球化學(xué)過程,其被公認是土壤質(zhì)量的一部分(Huang et al.,2005),這一部分可能是影響土壤可持續(xù)利用最為重要的生物因素。土壤微生物廣泛直接或間接參與調(diào)節(jié)土壤養(yǎng)分循環(huán) (Leininger et al.,2006;Petersen et al.,2012)、能量流動(Zhang et al.,2010;Pratscher et al.,2011)、有機質(zhì)轉(zhuǎn)換 (Jackson et al.,2012;Petersen et al.,2012),并通過直接致病和間接調(diào)節(jié)土壤養(yǎng)分有效性等作用影響作物生長 (Barrett et al.,2009;Belimov et al.,2009;Sanguin et al.,2009;Hol et al.,2010;Newton et al.,2010)和進化進程(Lau & Lennon,2011)。從目前的研究來看,研究者對上述微生物過程的研究主要集中在細菌(Bacteria)和真菌(Fungi)方面(Buée et al.,2009)。最近幾年,古細菌(Archaea)這種過去被人為存在于極端環(huán)境中的微生物已被研究者證實廣泛存在于農(nóng)田和自然生態(tài)系統(tǒng)中(Leininger et al.,2006)。與細菌和真菌相比,長久以來人們對古細菌調(diào)控的根際土壤微生物過程并不清楚。最近,研究者采用熒光原位監(jiān)測(FISH)和熒光定量PCR分析等分子生物學(xué)手段證實,這種微生物在作物根際土壤生物學(xué)過程(如氨化、水稻根際甲烷形成等)中起著重要作用(Nicol et al.,2003;Lu & Conrad,2005;Chen et al.,2008;Bomberg et al.,2011)。但是,到目前為止,人們對古細菌在根際土壤中所起的作用并不明確,其潛在作用和真實情況也有待進一步探究。

        綜上,土壤微生物-作物互作的結(jié)果既可能是競爭關(guān)系,也可能是互惠關(guān)系。但是,從生態(tài)系統(tǒng)的發(fā)展來看,競爭并非不利因素,同時也是必要的。一方面,對于植物病原菌來說,其在植物根際的“入侵”行為可能會激發(fā)植物加速“進化”進程,最終作物對環(huán)境具有更好的適應(yīng)性(Weller,2002;Berendsen et al.,2012);另一方面,微生物與植物在氮素等養(yǎng)分上的競爭實際上也是一種互惠行為(Kuzyakov & Xu,2013)。例如,微生物固定氮素行為不僅減緩了無機氮素的淋洗損失,同時又可在作物生長季節(jié)以無機氮形式釋放給植物吸收利用。而且競爭也是共存與發(fā)展的基礎(chǔ)。

        3 設(shè)施菜田土壤微生物學(xué)障礙調(diào)控的生態(tài)措施

        3.1 輪作或填閑

        輪作(吳鳳芝,2000)或填閑(Tian et al.,2011a,2011b)主要通過影響根際土壤微生物相關(guān)因子來增加目標作物產(chǎn)量。親緣關(guān)系較遠的作物輪作或填閑有利于利用不同類型碳源和氮源的微生物繁殖,進而提高土壤微生物功能和種類多樣性。當(dāng)然,合理的栽培模式才是行之有效的,但其優(yōu)勢也具有時空局限性。一般來說,這些措施長期效果較短期效果顯著。此外,連作年限越久,通過作物輪作或填閑等修復(fù)土壤微生物學(xué)功能、改善作物生長發(fā)育需要的年限越久。

        3.2 伴生栽培

        合理的伴生栽培是控制作物根際土壤病原菌的有效措施之一。伴生栽培作物殘體和根系分泌物(Yu &matsui,1997)在土壤中的積累容易引起土壤碳源和氮源數(shù)量和種類發(fā)生變化,從而通過改善土壤微生物多樣性對病原菌生長和繁殖產(chǎn)生抑制(韓哲 等,2012)。例如,韓哲等(2012)研究發(fā)現(xiàn)小麥/黃瓜伴生可顯著增強黃瓜土壤微生物種類并改善土壤酶學(xué)環(huán)境。由東北農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝系研發(fā)的伴生栽培調(diào)控設(shè)施菜田土壤連作障礙體系已在我國東北設(shè)施蔬菜種植區(qū)獲得了較大的成功(吳鳳芝 等,2013)。

        3.3 間作和套種

        與輪作相似,合理的間作和套種是提高主栽作物根際土壤微生物多樣性,緩解作物根際土傳病害的有效措施之一。例如,Li等(2009) 研究表明黃瓜間套作洋蔥或大蒜可提高黃瓜根際土壤細菌多樣性并增加作物產(chǎn)量;Zhou 等(2011)研究發(fā)現(xiàn)黃瓜間套作洋蔥或大蒜可提高土壤脲酶和過氧化氫酶活性,同時提高土壤細菌多樣性,并對土壤真菌結(jié)構(gòu)產(chǎn)生顯著影響。

        3.4 種植嫁接苗

        嫁接用于防治病害和作物增產(chǎn)的功效已得到國內(nèi)外農(nóng)業(yè)生產(chǎn)者的普遍認同。例如,F(xiàn)otios(2006)研究指出,嫁接可有效控制茄子黃萎病。由于砧木根系可分泌與接穗根系不同的物質(zhì),這些砧木分泌物必然對微生物造成不同的影響,進而影響土壤-作物系統(tǒng)養(yǎng)分循環(huán),從而改變作物生長發(fā)育狀態(tài)。早期的研究已經(jīng)探明,利用抗性砧木嫁接目標作物可影響土壤微生物相關(guān)因子(Lockwood et al.,1970)。作物根際是土壤微生物與根系分泌物直接作用的最大場所,因此,嫁接砧木給根際微生物帶來的影響必然最為直接(Tian et al.,2009;謝遠峰 等,2012)。

        3.5 土壤增施優(yōu)質(zhì)堆肥

        堆肥富含碳素及植物生長所需的大量和微量元素,且棲息著大量的植物有益微生物。優(yōu)質(zhì)堆肥主要通過如下直接或間接作用調(diào)控土壤微生物學(xué)障礙(Chavez et al.,2008;Bernal et al.,2009;Bougnom et al.,2010;Hadar & Papadopoulou,2012):① 提高土壤微生物多樣性,增加土壤有益微生物數(shù)量,降低植物病原菌數(shù)量;② 誘導(dǎo)作物對病原菌產(chǎn)生抗性;③ 改善土壤理化性狀,包括容重、pH、電導(dǎo)率、孔隙度、通氣性、濕度和團粒體結(jié)構(gòu)等;④ 增加土壤有機質(zhì),促進土壤-作物系統(tǒng)養(yǎng)分循環(huán)并減少土壤養(yǎng)分流失。

        3.6 作物根際接種生防菌

        在諸多生防菌中,枯草芽孢桿菌以其良好的生防效果及在土壤中存活率高的特點得到較廣泛的應(yīng)用。根據(jù)已有研究,枯草芽孢桿菌對土壤微生物學(xué)障礙的調(diào)控機制可能包括(Baysal et al.,2008;Malfanova et al.,2011;Moradi et al.,2012):① 產(chǎn)生枯草菌素、幾丁質(zhì)酶和活性蛋白等抑菌物質(zhì),直接抑制植物病原菌的生長與繁殖;② 搶奪營養(yǎng)物質(zhì)、物理和生物學(xué)位點,間接抑制植物病原菌的發(fā)展;③ 形成葡聚糖酶、纖維素酶等降解有機物質(zhì)的酶,通過調(diào)節(jié)土壤-作物系統(tǒng)養(yǎng)分循環(huán)間接促進作物生長;④ 誘導(dǎo)作物抗性并促進作物生長;⑤ 與其他根際有益微生物協(xié)同促進作物生長。

        3.7 秸稈還田或種植綠肥

        采用秸稈還田或種植綠肥調(diào)控設(shè)施土壤微生物學(xué)障礙由來已久。這兩種措施常常使土壤微生物生物量顯著提高,從而有可能刺激了食細菌和真菌線蟲的繁殖。不同土壤微生物的C/N比相對穩(wěn)定,因此C/N比適度的植物秸稈或綠肥有助于使養(yǎng)分循環(huán)維持在一個比較穩(wěn)定的水平(田永強和高麗紅,2012)。

        4 研究展望

        從目前的研究進展來看,設(shè)施菜田土壤微生物學(xué)障礙成因的相關(guān)研究可能還需要從以下幾方面進一步深入探究:① 蔬菜作物-土壤微生物互作的生態(tài)學(xué)效應(yīng);② 植物根際土壤有益微生物-有害生物競爭的生態(tài)學(xué)效應(yīng)及作物的響應(yīng);③ 植物根際土壤非生物因子與微生物互作的生態(tài)學(xué)效應(yīng)及作物的響應(yīng);④ 蔬菜作物與根際土壤微生物互作促進二者“共同進化”的機制。此外,與上述研究相比,目前設(shè)施蔬菜有關(guān)根際土壤非生物因子與作物互作效應(yīng)的研究相對較為深入。盡管如此,這些研究在很大程度上忽略了土壤生物因子的作用(Guo et al.,2008,2010)。因此,蔬菜作物與根際土壤非生物因子互作的生態(tài)學(xué)效應(yīng)及生物因子的響應(yīng)(Barrett et al.,2009;Bonanomi et al.,2010;Lau & Lennon,2011;Berendsen et al.,2012)也應(yīng)是未來揭示設(shè)施菜田土壤微生物學(xué)障礙成因的關(guān)鍵切入點。

        韓哲,劉守偉,潘凱,吳鳳芝.2012.不同栽培模式對黃瓜根際土壤酶活性及細菌群落結(jié)構(gòu)的影響.植物營養(yǎng)與肥料學(xué)報,18(4):922-931.

        郭世榮,孫錦,束勝,陸曉民,田婧,王軍偉.2012.我國設(shè)施園藝概況及發(fā)展趨勢.中國蔬菜,(18):1-14.

        劉步洲,陳端生.1989.發(fā)展中的中國設(shè)施園藝.農(nóng)業(yè)工程學(xué)報,5(3):38-41.

        劉軍,曹之富,黃延楠,高麗紅.2007.日光溫室黃瓜冬春茬栽培氮磷鉀吸收特性研究.中國農(nóng)業(yè)科學(xué),40(9):2109-2113.

        田永強,高麗紅.2012.填閑作物阻控設(shè)施菜田土壤功能衰退研究進展.中國蔬菜,(18):26-35.

        王敬國.2011.設(shè)施菜田退化土壤修復(fù)與資源高效利用.北京:中國農(nóng)業(yè)大學(xué)出版社.

        吳鳳芝.2000.設(shè)施蔬菜連作障礙原因綜合分析與防治措施.東北農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,31(3):241-247.

        吳鳳芝,潘凱,劉守衛(wèi).2013.設(shè)施土壤修復(fù)及連作障礙克服技術(shù).中國蔬菜,(13):39.

        喻景權(quán).2011.“十一五”我國設(shè)施蔬菜生產(chǎn)和科技進展及其展望.中國蔬菜,(2):11-23.

        謝遠峰,田永強,李碩,姚凱騫,馬智明,楊雅婷,高麗紅.2012.黃瓜單砧與雙砧嫁接對根際土壤微生物和酶活性的影響.中國蔬菜,(24):62-28.

        Baysal ?,?al??kanm,Ye?ilova ?.2008.An inhibitory effect of a new Bacillus subtilis strain( EU07) against Fusarium oxysporum f.sp.radicis-lycopersici.Physiological andmolecular Plant Pathology,73:25-32.

        Barrett Lg,Kniskern Jm,Bodenhausen N,Zhang W,Bergelso J.2009.Continua of specificity and virulence in plant hostpathogen interactions:causes and consequences.New Phytologist,183:513-529.

        Belimov A A,Dodd I C,Hontzeas N,Theobald J C,Safronova V I,Davies W J.2009.Rhizosphere bacteria containing ACCdeaminase increase yield of plantsgrown indrying soil via both local and systemic hormone signalling.New Phytologist,181:413-423.

        Berendsen R L,Pietersecm J,Bakker P A Hm.2012.The rhizospheremicrobiome and plant health.Trends in Plant Science,17:478-486.

        Bernalm P,Alburquerque J A,Moral R.2009.Composting of animalmanures and chemical criteria for compostingmaturity assessment.A review.Bioresource and Technology,100:5444-5453.

        Bombergm,Münster U,Pumpanen J,Ilvesniemi H,Heinonsalo J.2011.Archaeal communities in boreal forest tree rhizospheres respond to changing soil temperatures.Microbial Ecology,62:205-217.

        Bonanomi C,Antignani V,Capodilupom,Scala F.2010.Indentifying the characteristics of organic soil amendments that suppress soilborne plantdiseases.Soil Biology and Biochemistry,42:136-144.

        Borrero C,Trillasm I,Ordovás J.2004.Predictive factors for the suppression of Fusarium wilt of tomato in plantgrowthmedia.Phytopathology,94:1094-1101.

        Bougnom B P,Knapp B A,Elhottovád,Kouboá A,Etoa F X,Insam H.2010.Designer compost with biomass ashes for ameliorating acid tropical soils:effects on the soilmicrobiota.Applied Soil Ecology,45:319-324.

        Buéem,de Boer W,Martin F,van Overbeek L,Jurkevitch E.2009.The rhizosphere zoo:an overview of plant-associated communities ofmicroorganisms,including phages,bacteria,archaea,and fungi,and of some of their structuring factors.Plant and Soil,321:189-212.

        Chavez W,Benedetto Ad,Civeirag,Lavado R.2008.Alternative soillessmedia forgrowing Petunia × hybrida and Impatiens wallerana:physical behavior,effect of fertilization and nitrate losses.Bioresource Technology,99:8082-8087.

        Chen X P,Zhu Yg,Xia Y,Shen J P,He J Z.2008.Ammonia-oxidizing archaea:important players in paddy rhizosphere soil?Environmentalmicrobiology,10:1978-1987.

        Fotios A B.2006.Grafting and calcium cyanamide as alternatives tomethyl bromide forgreenhouse eggplant production.Scientia Horticulturae,107:325-331.

        Gao L H,Qum,Ren H Z,Chen Q Y,Zhang Z X.2010.Structure,function,application,and ecological benefit of a singleslope,energy-efficient solargreenhouse in China.Hort Technology,20:626-631.

        Guo R,Li X,Christie P,Chen Q,Jiang R,Zhang F.2008.Influence of root zone nitrogenmanagement and a summer catch crop on cucumber yield and soilmineral nitrogendynamics in intensive production systems.Plant and Soil,313:55-70.

        Guo J H,Liu Z J,Zhang Y,Shen J L,Han W X,Zhang W F,Christie P,Goulding K W T,Vitousek Pm,Zhang F S.2010.Significant acidification inmajor Chinese croplands.Science,327:1008-1010.

        Hadar Y,Papadopoulou K K.2012.Suppressive composts:microbial ecology links between abiotic environments and healthy plants.The Annual Review of Phytopathology,50:133-153.

        Hol W Hg,de Boer W,Termorshuizen A J,Meyer Km,Schneider J Hm,vandam Nm,van Veen J A,vander Putten W H.2010.Reduction of rare soilmicrobesmodifies plant-herbivore interactions.Ecology Letters,13:292-301.

        Huang Pm,Wangm K,Chiu C Y.2005.Soilmineral-organicmatter-microbe interactions:impacts on biogeochemical processes and biodiversity in soils.Pedobiologia,49:609-635.

        Inselsbacher E,N?sholm T.2012.The below-ground perspective of forest plants:soil providesmainly organic nitrogen for plants andmycorrhizal fungi.New Phytologist ,195:329-334.

        Jackson L E,Bowles Tm,Hodson A K,Lazcano C.2012.Soilmicrobial-root andmicrobial-rhizosphere processes to increase nitrogen availability and retention in agroecosystems.Current Opinion in Enviromental Sustainability,4:517-522.

        Kuzyakov Y,Xu X.2013.Competition between roots andmicroorganisms for nitrogen:mechanisms and ecological relevance.New Phytologist,198:656-669.

        Lau J A,Lennon J T.2011.Evolutionary ecology of plant-microbe interactions:soilmicrobial structure alters selection on plant traits.New Phytologist,192:215-224.

        Leininger S,Urich T,Schloterm,Schwark L,Qi J,Nicolg W,Prosser J I,Schuster S C,Schleper C.2006.Archaea predominate among ammonia-oxidizing prokaryotes in soils.Nature,442:806-809.

        Li Q,Wu F,Yang Y,Wang X.2009.Effects of rotation and interplanting on soil bacterial communities and cucumber yield.Acta Agriculturae Scandinavica Section B-Soil and Plant Science,59:431-439.

        Lockwood J L,Yoder O L,Bentam K.1970.Grafting eggplants on resistant rootstocks as a possible approach for control of Verticillium wilt.Plantdisease Reporter,54:846-848.

        Lu Y,Conrad R.2005.In situ stable isotope probing ofmethanogenic archaea in the rice rhizosphere.Science,309:1088-1090.

        Lugtenberg B,Kamilova F.2009.Plant-growth-promoting rhizobacteria.Annual Review ofmicrobiology,63:541-556.

        Malfanova N,Kamilova F,Validov S,Shcherbakov A,Chebotar V,Tikhonovich I,Lugtenberg B.2011.Characterization of Bacillus subtilis HC8,a novel plant-beneficial endophytic strain fromgiant hogweed.Microbial Biotechnology,4(4):523-532.

        Manzoni S,Porporato A.2009.Soil carbon and nitrogenmineralization:theory andmodels across scales.Soil Biology and Biochemistry,41:1355-1379.

        Moradi H,Bahramnejad B,Amini J,Siosemardeh A,Haji-Allahverdipoor K.2012.Suppression of chickpea (Cicer arietinum L.)Fusarium wilt by Bacillus subtillis and Trichoderma harzianum.Plant Omics,5(2):68-74.

        Newton A C,F(xiàn)itt Bd,Atkins Sd,Waltersd R,Daniell T J.2010.Pathogenesis,parasitism andmutualism in the trophic space ofmicrobe-plant interactions.Trends inmicrobiology,18:365-373.

        Nicolg W,Glover L A,Prosser J I.2003.The impact ofgrasslandmanagement on archaeal community structure in upland pasture rhizosphere soil.Environmentalmicrobiology,5:152-162.

        Petersendg,Blazewicz S J,F(xiàn)irestonem,Hermand J,Turetskym,Waldropm.2012.Abundance ofmicrobialgenes associated with nitrogen cycling as indices of biogeochemical process rates across a vegetationgradient in Alaska.Environmentalmicrobiology,14:993-1008.

        Pratscher J,Dumontmg,Conrad R.2011.Ammonia oxidation coupled to CO2fixation by archaea and bacteria in an agricultural soil.Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,108:4170-4175.

        Rousk J,B??th E,Brookes P C,Lauber C L,Lozupone C,Caporaso Jg,Knight R,F(xiàn)ierer N.2010.Soil bacterial and fungal communities across a pHgradient in an arable soil.The ISME Journal,4:1340-1351.

        Rudrappa T,Czymmek K J,Paré P W,Bais H P.2008.Root-secretedmalic acid recruits beneficial soil bacteria.Plant Physiology,148:1547-1556.

        Sánchez-Moreno S,Jiménez L,Alonso-Prados J L,García-Baudín Jm.2010.Nematodes as indicators of fumigant effects on soil food webs in strawberry crops in Southern Spain.Ecological Indicators,10:148-156.

        Sanguin H,Sarniguet A,Gazendel K,Mo?nne-Loccoz Y,Grundmanng L.2009.Rhizosphere bacterial communities associated withdisease suppressiveness stages of take-alldecline in wheatmonoculture.New Phytologist,184:694-707.

        Simard S W,Beiler K J,Binghamm A,Deslippe J R,Philip L J,Teste F P.2012.Mycorrhizal networks:mechanisms,ecology andmodelling.Fungal Biology Reviews,26:39-60.

        Tian Y,Zhang X,Liu J,Chen Q,Gao L.2009.Microbial properties of rhizosphere soils as affected by rotation,grafting,and soil sterilization in intensive production systems.Scientia Horticulturae,123:139-147.

        Tian Y,Liu J,Zhang X,Gao L.2010.Effects of summer catch crop,residuemanagement,soil temperature and water on the succeeding cucumber rhizosphere nitrogenmineralization in intensive production systems.Nutrient Cycling in Agroecosystems,88:429-446.

        Tian Y,Liu J,Wang X,Gao L.2011a.Carbonmineralization in the soils underdifferent cover crop and residuemanagement in an intensive protected vegetable cultivation.Scientia Horticulturae,127:198-206.

        Tian Y,Zhang X,Liu J,Gao L.2011b.Effects of summer cover crop and residuemanagement on cucumbergrowth in intensive Chinese production systems:soil nutrients,microbial properties and nematodes.Plant and Soil,339:299-315.

        Tian Y,Zhang X,Wang J,Gao L.2013.Soilmicrobial communities associated with the rhizosphere of cucumber underdifferent summer cover crops and residuemanagement:a4-year field experiment.Scientia Horticulturae,150:100-109.

        Wellerdm.2002.Microbial populations responsible for specific soil suppressiveness to plant pathogens.Annual Reviews of Phytopathology,40:309-348.

        Yao H,Jiao X,Wu F.2006.Effects of continuous cucumber cropping and alternative rotations under protected cultivation on soilmicrobial communitydiversity.Plant and Soil,284:195-203.

        Ye S F,Yu J Q,Peng Y H,Zheng J H,Zou L Y.2004.Incidence of Fusarium wilt in Cucumis sativus L.is promoted by cinnamic acid,an autotoxin in root exudates.Plant and Soil,263:143-150.

        Yu J Q,Matsui Y.1997.Effects of root exudates of cucumber (Cucumis sativus) and allelochemicals on ion uptake by cucumber seedlings.Journal of Chemical Ecology ,23:817-827.

        Zhang Lm,Offre P R,He J Z,Verhammed T,Nicolg W,Prosser J I.2010.Autotrophic ammonia oxidation by soil thaumarchaea.Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,107:17240-17245.

        Zhou X,Yug,Wu F.2011.Effects of intercropping cucumber with onion orgarlic on soil enzyme activities,microbial communities and cucumber yield.European Journal of Soil Biology,47:279-287.

        Zhou X,Wu F.2012a.Effects of amendments of ferulic acid on soilmicrobial communities in the rhizosphere of cucumber (Cucumis sativus L.) .European Journal of Soil Biology,50:191-197.

        Zhou X,Wu F.2012b.p-Coumaric acid influenced cucumber rhizosphere soilmicrobial communities and thegrowth of Fusarium oxysporum f. sp.cucumerinum Owen.PLoS ONE ,7(10):e48288.

        Research Progress on Vegetable Soilmicrobial Obstacles in Protected Cropping Systems

        TIAN Yong-qiang1,2,WANG Jing-guo2,GAO Li-hong1*
        (1Beijing Key Laboratory ofgrowth anddevelopment Regulation for Protected Vegetable Crops,College of Agriculture and Biotechnology,China Agricultural University,Beijing100193,China;2College of Resources and Environmental Sciences,China Agricultural University,Beijing100193,China)

        Simple cropping(including continuous cropping and simple rotation) and excessive water and fertilizer input are2 common phenomenon in Chinese protected vegetable cultivation.This phenomenon results in the problems of soil biological obstacles:as reduction ofmicrobialdiversity of protected vegetable soil,increasing ofmicrobial pathogens, anddamage of plant-parasitic nematodes,etc.Soilmicrobial obstacles havegreatly threatened the sustainable utilization of soils in protected vegetable production systems in China.Soilmicrobe is one of the important factors that influence the plantgrowth,evolutionary process and productivity.Currently studies on vegetable soilmicrobial obstacles in protected cropping system havemade significant progress.However,most of the study efforts aremainly focused on thegeneral changes of soilmicrobial communities responding to humanmanagement,and thorough studies on change of soil ecological service function are needed to carry out. Therefore,this paper reviewed the internal and external studies on soilmicrobial obstacles,summarized the ecological effect of soilmicrobe-crop interaction and analyzed the key point for studying vegetable soilmicrobial obstacles in protected cropping systems.Besides,this paper briefly introduced themajor ecologicalmeasures adopted in China to control these obstacles.It also provided suggestions for revealing potential causes of these obstacles in the future.

        Protected vegetable;Soilmicrobial obstacle;Regulationmeasures;Review

        S62

        A

        1000-6346(2013)20-0001-09

        2013-07-12;接受日期:2013-08-21

        中央高?;究蒲袠I(yè)務(wù)費專項資金項目(2013BH036),中國博士后科學(xué)基金項目(2012M520466)

        田永強,男,博士,講師,專業(yè)方向:設(shè)施蔬菜栽培生理與環(huán)境調(diào)控,E-mail:tianyq1984@cau.edu.cn

        *通訊作者(Corresponding author):高麗紅,女,教授,博士生導(dǎo)師,專業(yè)方向:設(shè)施菜田退化土壤生物修復(fù)與水肥高效利用, E-mail:gaolh@cau.edu.cn

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