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        宮內(nèi)發(fā)育遲緩大鼠腎臟Wilms 瘤1 基因DNA 甲基化與蛋白尿關(guān)系

        2013-09-10 01:40:46匡新宇湯小山
        中國循證兒科雜志 2013年3期
        關(guān)鍵詞:數(shù)目周齡甲基化

        陳 徑 匡新宇 徐 虹 沈 茜 湯小山

        近年來,成人疾病源于胎兒期的假說[1]獲得了越來越多的支持,宮內(nèi)環(huán)境與成年期疾病的相關(guān)性逐漸受到關(guān)注。研究顯示不良的宮內(nèi)環(huán)境不僅可引起宮內(nèi)發(fā)育遲緩( IUGR) ,而且可通過“發(fā)育程序化”途徑,對機體各器官結(jié)構(gòu)和功能產(chǎn)生長期以至終身的影響,如高血壓、冠心病、2 型糖尿病和慢性腎臟病等[1]。生后長期隨訪證實,IUGR明顯增加了發(fā)生蛋白尿和終末期腎病的風險[2,3],但其機制仍未闡明。本課題組前期研究發(fā)現(xiàn)Wilms 瘤1( WT1) 基因可能是IUGR 引起生后腎小球數(shù)目減少等腎臟病變的重要分子[4],并且已有研究發(fā)現(xiàn)WT1 基因的表達可能與DNA甲基化相關(guān)[5]。因此,本研究擬通過已建立的IUGR 大鼠模型,觀察宮內(nèi)環(huán)境對生后成年期大鼠腎臟功能的影響,并對WT1 基因甲基化水平進行定量分析,探討其在“發(fā)育程序化”腎臟疾病中的作用。

        1 方法

        1.1 實驗動物 清潔級雌性SD 大鼠6 只,體重250 ~300 g。復(fù)旦大學(xué)藥學(xué)院實驗動物中心提供。

        1.2 IUGR 大鼠模型建立 雌性SD 大鼠與雄性大鼠交配受孕后,分為2 組,每組3 只。其中一組以孕期全程低蛋白飼料(6%低蛋白等熱卡飼料) 飼養(yǎng)[6],自由采食,直至自然分娩,所生新生鼠出生體重在正常新生鼠平均體重2 s 以下者為IUGR 新生鼠[7],作為IUGR 組。另一組以孕期常規(guī)飼料(22%蛋白) 飼養(yǎng)至自然分娩,新生鼠作為對照組。兩組均選取8 只新生雄鼠作為研究對象,母乳喂養(yǎng)3周,第4 周斷乳后以常規(guī)飼料喂養(yǎng)至12 周齡( 成年期) 。

        1.3 標本采集 12 周齡時,代謝籠收集兩組大鼠24 h 尿液用于尿蛋白定量檢測;10%水合氯醛麻醉后,腹主動脈插管收集血標本測定血生化指標;腎臟在腹主動脈插管后注入4℃預(yù)冷的生理鹽水反復(fù)灌洗,摘取右側(cè)腎臟,分離皮質(zhì)并速凍于液氮中,-80℃保存,用于腎組織總RNA 抽提;同時摘取左側(cè)腎臟,用于腎小球數(shù)目測定。

        1.4 觀察指標

        1.4.1 生化指標 采用日立7060 型全自動生化分析儀檢測血清總蛋白、白蛋白、肌酐、尿素氮、尿酸和胱抑素-C 水平;比色法測定24 h 尿蛋白定量。

        1.4.2 腎小球數(shù)目測定 左側(cè)腎臟置于10%中性福爾馬林溶液中,常規(guī)石蠟包埋。石蠟切片機平行于腎臟短軸經(jīng)腎門橫斷修塊,3 μm 切片,蘇木精-伊紅染色。由復(fù)旦大學(xué)附屬兒科醫(yī)院病理科醫(yī)生單盲計數(shù)腎小球數(shù)目。

        1.4.3 WT1 基因及甲基化轉(zhuǎn)移酶( DNMT) mRNA 的表達

        抽提大鼠腎臟總RNA,并逆轉(zhuǎn)錄為cDNA,采用實時PCR法檢測WT1、DNMT1、DNMT3a 和DNMT3b mRNA 表達水平,以β-actin 作為內(nèi)參,引物見表1。目的基因與β-actin的Ct 值的差值為ΔCt 值,目的基因與參照樣品ΔCt 值的差值為ΔΔCt 值,以2 -ΔΔCt 為相對含量進行分析。

        表1 實時PCR 所用引物序列及基因擴增長度Tab 1 Sequences of primer and the length of product with real-time PCR

        1.4.4 WT1 基因啟動子區(qū)DNA 甲基化狀態(tài)測定 采用AxyPreP 基因組DNA 小量試劑盒抽提大鼠腎皮質(zhì)基因組DNA。使用EZ DNA Methylation-Gold-Kit( Zymo Research)進行基因組DNA 轉(zhuǎn)化。WT1 基因啟動子區(qū)CpG 島采用Epityper 軟件設(shè)計PCR 引物( http: //epidesigner. com,表1) 。每對引物反義鏈添加T7-啟動子,正義鏈添加10-mer調(diào)整熔點差異。以亞硫酸氫鹽轉(zhuǎn)化后的DNA 為模板,應(yīng)用熱啟動TaqDNA 酶擴增目的基因片段。使用MassARRAY Nanodispenser RSl000 點樣儀將純化后PCR 產(chǎn)物點至SpectroCHIP 芯片上,運用MassARRAY Workstation Compact進行SpectroCHIP 檢測,檢測結(jié)果采用Epityper 軟件分析( Sequenom) 。

        經(jīng)軟件分析,WT1 基因啟動子區(qū)共有2 個CpG 島,120個CpG 位點,根據(jù)CpG 位點的密集程度共設(shè)計3 段PCR引物,擴增片段信息如表2 所示。

        表2 MassARRAY 定量甲基化分析引物序列、長度、位置及包含CpG 位點數(shù)量Tab 2 Primer sequences,product length,position,and CpG units by MassArray quantitative methylation analysis

        1.5 統(tǒng)計學(xué)方法 采用SPSS 10.0 軟件進行統(tǒng)計學(xué)分析。計量資料以x±s表示,兩組間比較采用獨立樣本t 檢驗,相關(guān)性分析采用Pearson 相關(guān)分析。P <0.05 為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        2.1 兩組大鼠體重比較 IUGR 組新生雄鼠出生體重顯著低于對照組,(4.8 ±0.2) vs (7.4 ±0.1) g( P <0.000 1) ,并且直至12 周齡時體重仍低于對照組( P =0.043) ,未能達到生長追趕( 表3) 。

        2.2 兩組大鼠腎功能比較 與對照組相比,12 周齡時IUGR 組大鼠24 h 尿蛋白定量顯著增高( P =0.016) ; 血清胱抑素C 水平也顯著升高( P =0.036) ,但血清總蛋白、白蛋白、肌酐、尿素氮和尿酸水平差異無統(tǒng)計學(xué)意義( P 均>0.05) ( 表3) 。

        2.3 兩組大鼠腎小球數(shù)目比較 12 周齡時IUGR 組大鼠腎小球數(shù)目明顯少于對照組( P=0.001) ( 表3) 。

        表3 兩組大鼠12 周齡時體重、生化指標和腎小球數(shù)目比較( x±s)Tab 3 Comparison of body weight,biochemical parameters and the number of glomerular at 12 weeks of age between two groups( x±s)

        2.4 兩組大鼠腎組織WT1 基因mRNA 的表達 12 周齡時IUGR 組大鼠腎組織WT1 基因mRNA 的表達顯著高于對照組,(3.55 ±0.53) vs (1.58 ±0.59) ,P=0.047。

        2.5 兩組大鼠腎臟WT1 基因甲基化水平 12 周齡時,IUGR 組大鼠WT1 基因啟動子區(qū)DNA 平均甲基化水平較對照組顯著降低,( 0.13 ±0. 01) vs ( 0. 18 ±0. 02) ,P =0.029,其中M1 和M3 段降低更為顯著,P 值分別為0.028和0.012。Pearson 相關(guān)性分析顯示,WT1 基因mRNA 水平和WT1 基因M1 段甲基化水平呈負相關(guān),r = -0.939,P =0.000 1。

        2.6 兩組大鼠腎臟甲基轉(zhuǎn)移酶表達 12 周齡時,IUGR 組大鼠DNMT1 和DNMT3b mRNA 表達水平較對照組顯著降低,DNMT1:(2.06 ±0.28) vs ( 3.89 ±0.36) ( P =0.003) ,DNMT3b:(0.94 ±0.13) vs ( 1. 53 ±0. 13) ( P =0. 010) ;DNMT3a mRNA 水平則與對照組差異無統(tǒng)計學(xué)意義,(4.68 ±0.44) vs (5.10 ±0.51) ,P =0.749。Pearson 相關(guān)性分析顯示,DNMT1 和DNMT3b mRNA 水平與WT1 基因M1 段甲基化水平呈正相關(guān),DNMT1: r = 0. 935,P =0.000 1;DNMT3b:r=0.895,P=0.000 1。

        3 討論

        本研究以孕期低蛋白飲食建立IUGR 大鼠模型,結(jié)果顯示,成年期時IUGR 組大鼠尿蛋白排泄明顯增多,且腎臟WT1 基因mRNA 表達顯著增高; 研究還顯示IUGR 組大鼠腎臟WT1 基因DNA 甲基化水平顯著降低,且與DNMT1、DNMT3b mRNA 的表達減低相關(guān),提示DNMT1 和DNMT3b調(diào)節(jié)的WT1 基因啟動子區(qū)甲基化水平的降低,可能參與了WT1 基因過表達的發(fā)生,可能是IUGR 大鼠成年期發(fā)生蛋白尿的重要機制之一。

        IUGR 組大鼠出生體重顯著低于對照組,且腎小球數(shù)目顯著減少,與本課題組前期研究結(jié)果一致[8]。同時,本研究結(jié)果顯示IUGR 組大鼠血清胱抑素C 水平顯著增高。胱抑素C 作為腎功能早期受損的敏感指標,提示IUGR 組大鼠腎臟濾過功能受損。Brenner 等[9]提出先天性腎單位數(shù)目減少是引起腎臟損害的重要機制之一。IUGR 大鼠由于先天腎小球數(shù)目減少,使得剩余腎小球處于高灌注和高濾過狀態(tài),以代償和維持腎功能的穩(wěn)定。這種長期的代償過程,可能加重腎臟負擔,并將最終影響腎臟功能。

        WT1 基因在發(fā)育成熟的腎臟中僅在足細胞中表達,以維持足細胞的正常功能[10]。作為轉(zhuǎn)錄因子,WT1 基因還可與NPHS1 和PODXL 啟動子區(qū)結(jié)合,使足細胞重要分子Nephrin 和podocalyxin 的表達失衡[11,12],從而影響足細胞的結(jié)構(gòu)和功能。腎小球足細胞作為腎小球濾過膜的關(guān)鍵組分,對維護腎小球的濾過屏障至關(guān)重要。而本課題組前期研究也發(fā)現(xiàn),成年期IUGR 大鼠存在足細胞足突的部分融合[8]。因此,推測WT1 基因mRNA 的過表達可能引發(fā)了足細胞的損傷,參與了IUGR 所致蛋白尿的發(fā)生。

        在本研究模型中,孕期母體蛋白攝入的限制是唯一干預(yù)手段。有證據(jù)顯示,不良宮內(nèi)環(huán)境,如孕母飲食[13]、行為[14]及子宮動脈血流[15],都可引起表觀遺傳學(xué)變化,從而調(diào)控基因的表達。DNA 甲基化是表觀遺傳學(xué)的重要方式之一,主要發(fā)生在CpG 二核苷酸的胞嘧啶上,可以誘導(dǎo)轉(zhuǎn)錄的終止[16]。本研究通過MassARRAY 甲基化定量分析方法發(fā)現(xiàn)IUGR 組大鼠成年期腎臟WT1 基因甲基化水平顯著降低,并且其M1 段甲基化水平與WT1 基因mRNA 的表達量呈顯著負相關(guān),提示W(wǎng)T1 基因甲基化水平的改變可能參與了其表達變化的調(diào)控。

        DNA 甲基化是通過甲基轉(zhuǎn)移酶家族介導(dǎo)的,包括DNMT1、DNMT2、DNMT3a、DNMT3b 和DNMT3L,其中只有DNMT1、DNMT3a 和DNMT3b 具有甲基轉(zhuǎn)移活性。DNMT1主要在DNA 復(fù)制和修復(fù)中維持其甲基化水平,是細胞中表達最多的甲基轉(zhuǎn)移酶[17];而DNMT3a 和DNMT3b 則是在胚胎發(fā)育階段建立甲基化狀態(tài),即甲基化的從頭合成,因此DNMT3a 和DNMT3b 在胚胎干細胞呈高表達水平,相反,在已分化成熟的細胞中則呈現(xiàn)低水平表達[18]。本研究中,12周齡時IUGR 大鼠腎臟DNMT1 和DNMT3b mRNA 的表達顯著降低,并與WT1 基因甲基化水平呈正相關(guān),提示DNMT1 和DNMT3b 調(diào)節(jié)的WT1 基因啟動子區(qū)甲基化水平的降低可能是WT1 基因過表達的重要機制之一。

        總之,研究結(jié)果顯示IUGR 大鼠腎臟存在WT1 基因甲基化模式的異常改變,并且可能參與了WT1 基因的異常表達,這些改變可能是IUGR 大鼠成年期出現(xiàn)蛋白尿的分子機制之一。這一結(jié)果為進一步完善“發(fā)育程序化”腎臟疾病的發(fā)病機制提供了更為廣闊的思路。

        本研究的不足之處:僅對IUGR 大鼠腎臟WT1 基因的表達、WT1 基因甲基化水平進行了檢測,而WT1 基因甲基化的異常改變是否參與了WT1 基因表達的調(diào)控,并且通過何種途徑導(dǎo)致了蛋白尿的發(fā)生仍有待進一步研究。

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