黃 彭，郭 菲，何靖柳，李 靜，劉東杰，李 玉，秦 文，李素清

(四川農(nóng)業(yè)大學(xué)食品學(xué)院，四川雅安625014)

棗(Ziziphus jujube Mill)為鼠李科(Rhamnaceae)棗屬(Ziziphus Mill)植物，是原產(chǎn)于我國(guó)的多年生落葉小喬木［1］。四川三臺(tái)嶄山米棗具有皮薄肉嫩、入口化渣、酸甜適中、滋陰補(bǔ)腎、健脾開(kāi)胃等特點(diǎn)，更是成為了享譽(yù)川內(nèi)外的名優(yōu)水果［2］，被稱之為“中國(guó)米棗之鄉(xiāng)”［3］。但鮮食棗果實(shí)不耐貯藏，采摘后在自然狀態(tài)下很快失水、皺縮、腐爛，花色苷、VC等營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的含量也迅速降低［4］。棗果具有很高的食用和藥用價(jià)值，是“藥食同用”的上等補(bǔ)品。棗類(lèi)植物果實(shí)中含有豐富的總黃酮、VC、花色苷［5］、多酚等抗氧化物質(zhì)，但花色苷和VC容易受提取溫度、光照和氧氣等環(huán)境因素影響，在同等條件下優(yōu)化提取偏差較大［6］。胡迎芬［7］在研究冬棗總黃酮提取工藝中采用正交優(yōu)化3種不同處理方式最佳工藝條件所得抗氧化物相差不大，但振蕩提取方式時(shí)間較長(zhǎng)，及其對(duì)·OH、DPPH·具有一定的清除能力。王雅［8］研究沙棗抗氧化物質(zhì)利用超聲波輔助提取，優(yōu)化后得最佳工藝為料液比1∶11.40，乙醇濃度48.10%，此條件下提取率最高;濃度過(guò)大，乙醇和多酚極性相差過(guò)大，導(dǎo)致一些水溶性的多酚、總黃酮不能溶出。郝會(huì)芳［9］研究表明，棗果中多酚類(lèi)物質(zhì)的提取工藝受料液比、溫度影響較大，清除DPPH·和鹽能力較強(qiáng)，但隨時(shí)間的延長(zhǎng)，提取率降低。Ana Bucic'－Kojic'等人［10］用動(dòng)力學(xué)實(shí)驗(yàn)研究固－液提取葡萄籽中多酚，發(fā)現(xiàn)多酚提取得率受籽粒大小、料液比和提取溫度影響在14.72%～66.81%之間變化，建立Peleg方程后，提取條件使80%～90%多酚在40min內(nèi)提取出來(lái)。Boonyadist Vongsak等人［11］研究最佳方式提取辣木屬油茶葉中抗氧化物質(zhì)為多酚和總黃酮，兩者在體內(nèi)和體外都具有較穩(wěn)定的抗氧化活性。由于VC和花生苷在提取工藝操作中容易被氧化而使測(cè)得值在計(jì)算統(tǒng)計(jì)中誤差偏大，因此本實(shí)驗(yàn)以米棗為試材，通過(guò)單因素實(shí)驗(yàn)和回歸正交組合實(shí)驗(yàn)［12］初步探究米棗中總黃酮和多酚的提取工藝條件，為米棗抗氧化物質(zhì)提取提供理論依據(jù)和技術(shù)支撐。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

米棗 2012年8月下旬采摘于四川三臺(tái)縣，挑選黃熟期、無(wú)病蟲(chóng)害和機(jī)械傷、大小均勻的果實(shí)，運(yùn)至實(shí)驗(yàn)室冷藏庫(kù)4℃貯藏;蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品 中藥固體制劑制造技術(shù)國(guó)家工程研究中心;沒(méi)食子酸標(biāo)準(zhǔn)品上海江萊生物科技有限公司;Folin－clocalteu's 北京索萊寶科技有限公司。

GB023YSL－V2微波爐 佛山市順德區(qū)格蘭仕微波爐電器有限公司;KT－I 1730TD數(shù)控超聲波清洗機(jī) 溫州東大環(huán)保設(shè)備有限公司;SHZ－82數(shù)顯水浴恒溫振蕩器 金壇市岸頭良友實(shí)驗(yàn)儀器廠;UV－3200紫外－可見(jiàn)分光光度計(jì) 上海美普達(dá)儀器有限公司。

1.2 實(shí)驗(yàn)方法

準(zhǔn)確稱取5份切碎的米棗果肉樣品各5g置于100mL錐形瓶中，加入一定量的乙醇溶液，采用不同提取處理方式提取一定時(shí)間，不同溫度下以不同提取速率振蕩提取不同時(shí)間，過(guò)濾取濾液定容100mL，測(cè)定總黃酮和多酚量。

1.2.1 單因素實(shí)驗(yàn) 考察單因素實(shí)驗(yàn)條件提取處理方式(①直接振蕩 6min、②超聲波 6min、③微波6min、④超聲波3min+微波3min、⑤微波3min+超聲波 3min)、料液比(1∶1、1∶2、1∶3、1∶4、1∶8)、乙醇濃度(0%、20%、40%、60%、80%、100%)、振蕩溫度(25、40、50、60、70、80℃)、振蕩時(shí)間(0、1、2、3、4、5h)、振蕩速率(0、60、120、180、240、300r/min)、振蕩次數(shù)(1、2、3、4 次)對(duì)米棗多酚、總黃酮提取的影響［13－15］。

研究一個(gè)單因素，其他因素固定，分別為:準(zhǔn)確稱取5份切碎的米棗果肉樣品各5g置于100mL錐形瓶中，加入30mL 80%的乙醇溶液，超聲波振蕩提取6min，在50℃下以180r/min振蕩提取2h，過(guò)濾取濾液定容100mL，測(cè)定總黃酮和多酚量。

1.2.2 回歸正交實(shí)驗(yàn) 根據(jù)單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果分析，選擇對(duì)米棗總黃酮、多酚提取影響較大的料液比、乙醇提取液體積分?jǐn)?shù)和振蕩提取溫度三個(gè)因素設(shè)計(jì)三因素二次回歸正交組合實(shí)驗(yàn)［16－17］，依據(jù)考察因素和零水平實(shí)驗(yàn)次數(shù)確定星號(hào)臂值r為1.414，其水平編碼表如表1所示［18］，其中將料液比換算成乙醇體積。根據(jù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果從而確定米棗中多酚、總黃酮提取的最佳工藝條件。

1.2.3 總黃酮含量的測(cè)定［19］

1.2.3.1 蘆丁標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制［20］精確稱取105℃常壓干燥至質(zhì)量恒定的蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品配制成165mg/L的標(biāo)準(zhǔn)溶液，分別取 0.0、0.5、1.0、1.5、2.0、2.5、3.0mL標(biāo)準(zhǔn)溶液于10mL比色管中，并用30%乙醇液定容于5.0mL，0.30mL 5%NaNO2溶液，振蕩均勻靜置5min，再加入0.30mL 10%Al(NO3)3溶液，搖勻后放置6min，再加入4.0mL 1.00mol/L NaOH溶液后用30%乙醇溶液定容至刻度，混勻避光靜置 10min，于510nm波長(zhǎng)測(cè)定吸光值，以蘆丁量為橫坐標(biāo)(mg/L)，吸光值為縱坐標(biāo)(A)，制定標(biāo)準(zhǔn)曲線。

表1 三因素二次回歸正交組合設(shè)計(jì)水平取值及編碼表Table 1 Levels value and code tables of 3 factors quadratic regressive orthogonal design

1.2.3.2 樣品總黃酮量的測(cè)定 準(zhǔn)確移取10.0mL提取液定容于100mL容量瓶中，取1.0mL定容液于10mL比色管中，按1.2.3.1方法操作，根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線查找值X，樣品提取液中總黃酮含量(mg/L)按公式C(mg/L)=X×10mL/1mL計(jì)算。

1.2.4 多酚含量的測(cè)定［21］

1.2.4.1 沒(méi)食子酸標(biāo)曲曲線的繪制［22］精確稱取105℃常壓干燥至質(zhì)量恒定的沒(méi)食子酸標(biāo)品配制成0.5mg/L 的標(biāo)準(zhǔn)溶液，分別移取0、1、2、5、10、20mL 標(biāo)準(zhǔn)溶液于含有60mL水的容量瓶中，加入 Folin－Cioealteu試劑 1.00mL，15.00mL 20%Na2CO3溶液，定容于刻度，避光1h后在700nm波長(zhǎng)測(cè)定吸光值。以沒(méi)食子酸為橫坐標(biāo)(mg/L)，吸光值為縱坐標(biāo)(A)，制定標(biāo)準(zhǔn)曲線。

1.2.4.2 樣品多酚量的測(cè)定 準(zhǔn)確移取1.00mL提取液于含有60mL水的容量瓶中后，按1.2.4.1方法操作，樣品提取液中多酚含量(mg/L)在標(biāo)準(zhǔn)曲線中查找計(jì)算。

2 結(jié)果與分析

2.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制

2.1.1 蘆丁標(biāo)曲曲線繪制 按照1.2.3的方法繪制出的標(biāo)準(zhǔn)曲線如圖1所示，得回歸方程為:Y=0.0102X+0.0091(R2=0.9978)。從圖1中可以看出，蘆丁濃度在0～50mg/L范圍內(nèi)與吸光度線性良好。

2.1.2 沒(méi)食子酸標(biāo)曲曲線繪制 按照1.2.4的方法繪制出的標(biāo)曲曲線如圖2所示，得回歸方程:Y=0.0642X+0.0127(R2=0.9988)，從圖2中可以看出，沒(méi)食子酸濃度在0～10mg/L范圍內(nèi)與吸光度線性良好。

圖1 蘆丁標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.1 The standard curve of rutin

圖2 沒(méi)食子酸的標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.2 The standard curve of gallic acid

2.2 提取處理方式的選擇

通過(guò)不同的5種處理方式后，提取液中總黃酮和多酚含量如圖3所示。從圖3可知，用超聲波、微波或兩者結(jié)合處理，均高于直接振蕩處理，其中僅只用微波、超聲波處理方式對(duì)總黃酮和多酚的含量的影響相差不大。這是因?yàn)槔贸暡梢约铀倜讞椫杏行С煞诌M(jìn)入溶劑，節(jié)約溶劑;微波的高頻電磁波穿透提取介質(zhì)，可縮短提取米棗組分中黃酮和多酚等分子的擴(kuò)散時(shí)間，從而提高提取率，縮短提取時(shí)間，并且可免去了因高溫對(duì)總黃酮和多酚活性成分結(jié)構(gòu)的影響。先微波后超聲波可能會(huì)使微波提取出的物質(zhì)因超聲波聲波震動(dòng)反而進(jìn)入溶劑中，米棗中其他物質(zhì)溶于提取液中，使提取液中總黃酮和多酚量減少。從圖3中可得出處理方式④比其他處理方式所得的總黃酮、多酚含量均要高，即超聲波、微波各處理3min，得到提取液中總黃酮為182.85mg/L，多酚為7.46mg/L，因此選用先3min超聲波處理后3min微波處理較宜。

2.3 料液比的選擇

料液比對(duì)總黃酮和多酚量提取結(jié)果的影響如圖4所示。從圖4中可知，隨提取液體積的增加，總黃酮、多酚量增大，這是因?yàn)榱弦罕雀邥r(shí)，導(dǎo)致樣品過(guò)飽和現(xiàn)象，從而提取液中總黃酮和多酚量降低;料液比減小，溶劑量的增加提高了米棗與溶劑間黃酮類(lèi)化合物和多酚類(lèi)化合物的濃度差，從而減少了米棗中黃酮類(lèi)和多酚類(lèi)物質(zhì)的殘留量，因此可提高提取液中總黃酮和多酚量;但低于1∶4時(shí)，提取液中總黃酮不發(fā)生變化，多酚含量隨著液體的增大而減少。考慮成本和提取效果等因素，選擇料液比為1∶4，此時(shí)總黃酮和多酚的含量較高，分別為173.84mg/L和8.36mg/L。

圖3 處理方式對(duì)米棗中總黃酮和多酚含量的影響Fig.3 Effect of treatment methods on the content of total flavonoids and polyphenols from‘MiZao’jujube

圖4 料液比對(duì)米棗中總黃酮和多酚含量的影響Fig.4 Effect of solid－to－liquid ratio on the content of total flavonoids and polyphenols from‘MiZao’jujube

2.4 乙醇提取液濃度的選擇

乙醇提取濃度對(duì)總黃酮和多酚量提取結(jié)果的影響如圖5所示。由圖5可知，乙醇有機(jī)溶劑均比水作為提取液提取的量高，其中總黃酮和多酚的含量先隨乙醇濃度的增加而增多，這是因?yàn)橐掖嫉臉O性小于水，隨著乙醇濃度的升高，提取液的極性減小，這就有利于極性小的黃酮類(lèi)和多酚類(lèi)物質(zhì)的溶出;當(dāng)超過(guò)60%濃度時(shí)，兩者的提取含量反而降低，但總黃酮比多酚降低的速率要快，可能由于提取液的極性與總黃酮的極性相似程度降低所導(dǎo)致，產(chǎn)生很大的滲透壓，影響黃酮類(lèi)化合物的提取量;提取液濃度過(guò)大，提取液顏色加深，說(shuō)明各種雜質(zhì)的溶出液增多。因此綜合考慮成本和提取量，選擇乙醇濃度為60%時(shí)，提取液中總黃酮和多酚含量較高，總黃酮為238.61mg/L，多酚為 7.56mg/L。

2.5 提取振蕩溫度的選擇

不同振蕩溫度對(duì)總黃酮和多酚量的影響如圖6所示。由圖6可知，提取液中總黃酮、多酚含量先隨溫度的升高而增大，這是因?yàn)樘岣邷囟?，分子熱運(yùn)動(dòng)加快，有利于總黃酮和多酚的浸出;超過(guò)60℃時(shí)，黃酮類(lèi)化合物的提取除了溶劑效應(yīng)外，還伴隨著熱效應(yīng)的影響，故隨溫度的升高總黃酮的含量減少，超過(guò)70℃，提取液中總黃酮的含量反而增大，可能是因?yàn)闇囟冗^(guò)高，溶劑沸騰破壞細(xì)胞，使細(xì)胞中的其他物質(zhì)溶出于提取液中，提取液中雜質(zhì)增加而吸光度增大所致;由于多酚中含有大量的酚羥基，性質(zhì)非?；顫?，溫度過(guò)高時(shí)不穩(wěn)定，往往發(fā)生一些不可逆的化學(xué)反應(yīng)，如氧化、縮合等，所以多酚在超過(guò)60℃時(shí)提取量減小;綜合考慮，提取振蕩溫度應(yīng)選擇50℃，此時(shí)總黃酮為240.75mg/L，多酚為8.17mg/L。

圖5 乙醇濃度對(duì)米棗中總黃酮和多酚含量的影響Fig.5 Effect of ethanol concentration on the content of total flavonoids and polyphenols from“MiZao”jujube

圖6 振蕩溫度對(duì)米棗中總黃酮和多酚含量的影響Fig.6 Effect of oscillation temperature on the content of total flavonoids and polyphenols from‘MiZao’jujube

2.6 提取振蕩時(shí)間的選擇

振蕩時(shí)間對(duì)總黃酮和多酚量提取的影響如圖7所示。由圖7可知，隨著振蕩時(shí)間的延長(zhǎng)，提取液中的總黃酮、多酚量先增高，然后趨于平衡;總黃酮量在提取時(shí)間超過(guò)2h后，基本沒(méi)有什么變化，多酚在超過(guò)3h后基本沒(méi)有明顯變化，超過(guò)4h后多酚量減少，可能由于時(shí)間過(guò)長(zhǎng)而導(dǎo)致部分發(fā)生了降解、縮合和氧化等化學(xué)反應(yīng)。因此總黃酮比多酚更穩(wěn)定些，米棗汁提取過(guò)程中盡量減少提取時(shí)間以免多酚活性的損失。綜合考慮時(shí)間和簡(jiǎn)化操作結(jié)合總黃酮、多酚量?jī)蓚€(gè)指標(biāo)，選擇振蕩提取2h較合理，此時(shí)得到總黃酮、多酚的量分別為229.58mg/L和7.66mg/L。

2.7 提取振蕩速率的選擇

振蕩速率對(duì)總黃酮和多酚量提取的影響如圖8所示。由圖8可知，提取時(shí)提取液中多酚、總黃酮量振蕩均比未振蕩高;隨著振蕩速率的增大，提取液中總黃酮、多酚量均增大，是因?yàn)檎袷幱欣谌軇┡c米棗果肉充分接觸，加快米棗中總黃酮和多酚的溶出;當(dāng)溶出速度達(dá)到一定值時(shí)，提取量不再隨振蕩速率的增加而增大?？傸S酮在振蕩速率超過(guò)180r/min時(shí)，趨于平衡;多酚在120～240r/min時(shí)，變化較小，在180r/min時(shí)，含量最大。由于米棗中總黃酮類(lèi)物質(zhì)比多酚物質(zhì)含量高，多酚達(dá)到最大溶出速率所需振蕩速率較小。綜合考慮速率對(duì)總黃酮、多酚的影響，選擇振蕩速率為180r/min，此條件下提取總黃酮、多酚量分別為226.37mg/L和8.39mg/L。

圖7 振蕩時(shí)間對(duì)米棗中總黃酮和多酚含量的影響Fig.7 Effect of oscillation time on the content of total flavonoids and polyphenols from‘MiZao’jujube

圖8 振蕩速率對(duì)米棗中總黃酮和多酚含量的影響Fig.8 Effect of oscillation speed on the content of total flavonoids and polyphenols from‘MiZao’jujube

2.8 提取次數(shù)的選擇

提取次數(shù)對(duì)總黃酮和多酚量的影響如圖9所示。由圖9可知，提取液中總黃酮和多酚量均隨提取次數(shù)的增加而減少，但是提取液的體積均比前次體積大，體積分別為 100、200、300、400mL，將提取液的體積均換算成100mL，總黃酮和多酚量結(jié)果如圖9，隨著提取次數(shù)的增加，總黃酮、多酚的含量增大，當(dāng)提取次數(shù)超過(guò)2次時(shí)，總黃酮、多酚的含量雖然有增加的趨勢(shì)，但卻是不太明顯。考慮操作時(shí)間和節(jié)約成本，防止多酚的多次提取導(dǎo)致降解、縮合和氧化等不良化學(xué)反應(yīng)，本實(shí)驗(yàn)選擇提取次數(shù)為2次，此時(shí)米棗中總黃酮和多酚基本已浸提出，總黃酮和多酚含量分別為216.30mg/L和8.52mg/L。

圖9 換算為100mL米棗提取液后總黃酮和多酚含量Fig.9 Contents of total flavonoids and polyphenols after the 100mL‘MiZao’jujube extract conversion

表2 二次回歸正交組合設(shè)計(jì)正交表及結(jié)果Table 2 Orthogonal regression design and corresponding experimental results

2.9 最佳條件工藝的選擇

依據(jù)二次回歸正交組合實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)方法以及因素水平編碼表 1，實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)表［23－24］及其結(jié)果如表 2。

對(duì)總黃酮提取優(yōu)化方差分析見(jiàn)表3，總黃酮失擬項(xiàng)極不顯著，總的回歸關(guān)系達(dá)到極顯著水平，說(shuō)明回歸方程擬合的較好。除X1X3、X2X3外，各項(xiàng)系數(shù)水平達(dá)到顯著或極顯著水平。雖然X2X3在0.05水平上不顯著，但在0.25水平上是顯著的，故不予剔除。所建立的回歸方程為:

利用 Excel可求得 X1=1.414，X2=1.414，X3=－0.688，解得 y有極大值，根據(jù) X1=，X2=，X3=可以求出在提取溫度為60℃，提取乙醇濃度為80%，料液比為1∶5.03效果最好，但考慮操作料液比更正為1∶5，在此條件下提取液中總黃酮量預(yù)測(cè)值為245.93mg/L。

對(duì)多酚提取優(yōu)化方差分析見(jiàn)表4，多酚失擬性極不顯著，總的回歸關(guān)系達(dá)到顯著水平，說(shuō)明回歸方程擬合的較好。除X1X2和X1X3以外，其他變異系數(shù)達(dá)到極顯著水平或顯著水平。但X1X3在0.25水平上是顯著的，故不予剔除。所建立的回歸方程為:

利用 Excel可求得當(dāng) X1=1.414，X2=0.461，X3=－1.414，解得 y 有極大值，根據(jù) X1=，X2=，X3=可以求出在提取溫度為60℃，提取乙醇濃度為66.52%，料液比為1∶4效果最好。在此條件下提取液中多酚量預(yù)測(cè)值為9.16mg/L。

表3 總黃酮提取工藝回歸正交實(shí)驗(yàn)方差分析表Table 3 Variance analysis of regression orthogonal experiment results of total flavonoids extraction

2.10 驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)

2.1 0.1 總黃酮提取驗(yàn)證實(shí)驗(yàn) 根據(jù)單因素和回歸正交實(shí)驗(yàn)，總黃酮提取條件為用80%乙醇、料液比1∶5，超聲波和微波各處理3min、振蕩溫度60℃、振蕩速率180r/min、提取2次、每次振蕩2h，在此條件下，驗(yàn)證建立的最優(yōu)數(shù)學(xué)模型，測(cè)得提取液中總黃酮的提取量為246.14mg/L，與理論預(yù)測(cè)值偏差0.085%，比實(shí)驗(yàn)組的值高，結(jié)果表明方程預(yù)測(cè)性很好，與實(shí)際的偏差較小。

表4 多酚提取工藝回歸正交實(shí)驗(yàn)方差分析表Table 4 Variance analysis of regression orthogonal experiment results of polyphenols extraction

2.1 0.2 多酚提取驗(yàn)證實(shí)驗(yàn) 根據(jù)單因素和回歸正交實(shí)驗(yàn)，總黃酮提取條件為用66.52%乙醇、料液比1∶4，超聲波和微波各處理3min、振蕩溫度60℃、振蕩速率180r/min、提取2次、每次振蕩2h，在此條件下，驗(yàn)證建立的最優(yōu)數(shù)學(xué)模型，測(cè)得提取液中多酚量為8.92mg/L，與理論預(yù)測(cè)值偏差－2.51%，但比實(shí)驗(yàn)組的值高，結(jié)果表明方程預(yù)測(cè)性很好，與實(shí)際的偏差較小。

3 結(jié)論

3.1 在單因素實(shí)驗(yàn)的基礎(chǔ)上，使用回歸正交設(shè)計(jì)建立了數(shù)學(xué)模型并進(jìn)行規(guī)劃求解，得到米棗中總黃酮、多酚提取的最佳優(yōu)化工藝條件。對(duì)同一提取液中同時(shí)測(cè)定總黃酮、多酚量的結(jié)果表明提取工藝中乙醇濃度、料液比和振蕩溫度對(duì)其提取影響較大。

3.2 提取總黃酮的最佳工藝條件為:80%乙醇、料液比1∶5，超聲波和微波各處理3min、振蕩溫度60℃、振蕩速率180r/min、提取2次、每次振蕩2h，得到提取液中總黃酮量為246.14mg/L。

3.3 提取多酚的最佳工藝條件為:66.52%乙醇、料液比1∶4，超聲波和微波各處理3min、振蕩溫度60℃、振蕩速率180r/min、提取2次、每次振蕩2h，得到提取液中多酚量為8.92mg/L。

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