李超英, 黃先愷, 楊光參, 王艷偉
(1.上饒師范學(xué)院物理與電子信息學(xué)院,江西上饒334001;2.溫州大學(xué)物理與電子信息工程學(xué)院,浙江溫州325035)
DNA與蛋白質(zhì)分子的相互作用在許多生物過程中起著非常重要的作用,如DNA修復(fù)、復(fù)制與轉(zhuǎn)錄等[1-3]。DNA與蛋白相結(jié)合的精確位點(diǎn)的測(cè)定與觀察對(duì)于研究復(fù)雜細(xì)胞體系的機(jī)理與功能,特別是研究基因表達(dá)的控制十分關(guān)鍵[4-6]。限制性核酸內(nèi)切酶根據(jù)酶的亞單位組成、識(shí)別序列的種類和是否需要輔助因子至少可分為四類。Ⅱ 型限制與修飾系統(tǒng)所占的比例最大,達(dá)93%。限制性內(nèi)切酶在一定條件下能識(shí)別并切割特異的雙鏈DNA序列,但實(shí)際上內(nèi)切酶與DNA的作用方式很多,這與內(nèi)切酶、DNA的種類及緩沖液的條件等有一定關(guān)系。大多數(shù)內(nèi)切酶與DNA的相互作用都需要二價(jià)鎂離子作為催化輔助因子。在鎂離子存在下,內(nèi)切酶具有很大的切割活性,內(nèi)切酶會(huì)識(shí)別4~8堿基對(duì)的特異的序列,然后會(huì)在該識(shí)別位點(diǎn)上或附近切割DNA[7-9]。在錳離子存在的條件,內(nèi)切酶具有很小的切割活性;但在鈣離子存在的情況,內(nèi)切酶沒有活性。原因是鈣離子可以模仿鎂離子產(chǎn)生特異性蛋白-金屬-DNA復(fù)合物,這種穩(wěn)定的三元復(fù)合物阻礙內(nèi)切酶對(duì)DNA的切割活性,反而增加結(jié)合性[10-11]。如EcoRV是一種小的內(nèi)切酶,通過二聚體的形式與DNA發(fā)生作用,其識(shí)別序列是5’-GATATC-3’[12]。IIS 型內(nèi)切酶BspMI識(shí)別不對(duì)稱的序列5’-ACCTGC-3,然后在該位點(diǎn)旁邊上下的第4與第8個(gè)堿基對(duì)處切割[13]。在溶液中,這種內(nèi)切酶以四聚體形式存在,含有相同的子單元[14]。BspMI對(duì)DNA的切割一般先結(jié)合2個(gè)識(shí)別位點(diǎn)導(dǎo)致4個(gè)磷酸二脂鍵的斷裂,然后再與DNA分離,這與切割一個(gè)位點(diǎn)的內(nèi)切酶不同[15],所以,如果緩沖液中鈣離子代替鎂離子時(shí),這種內(nèi)切酶與DNA的結(jié)合會(huì)出現(xiàn)環(huán)狀結(jié)構(gòu)[16]。
原子力顯微鏡(AFM)作為一種高度分辨率可達(dá)0.1 nm左右,寬度分辨率可達(dá)2 nm左右的表面分析儀器,已廣泛地使用于觀察各種DNA與蛋白質(zhì)的相互作用,是研究這種作用最直接方便的操作方式[17-18]。本文用AFM研究?jī)?nèi)切酶EcoRV、BspMI與 λ-DNA的結(jié)合,內(nèi)切酶EcoRV與λ-DNA有21個(gè)識(shí)別位點(diǎn),內(nèi)切酶BspMI與λ-DNA有41個(gè)識(shí)別位點(diǎn),除了此結(jié)合位點(diǎn)外,也會(huì)有一些非特異性結(jié)合。由于作用方式的不同,結(jié)合的最終 AFM圖像明顯不同。本文主要用AFM對(duì)其不同作用方式的內(nèi)切酶與DNA的結(jié)合給出直接的證據(jù),說明其彎曲效果與成環(huán)結(jié)構(gòu)。
在AFM系統(tǒng)中,使用微小懸臂來(lái)感測(cè)針尖與樣品之間的相互作用,該作用力會(huì)使微懸臂擺動(dòng),當(dāng)擺動(dòng)發(fā)生時(shí),會(huì)使照在懸臂末端的激光的反射光位置改變而造成偏移量,此時(shí)四象限激光檢測(cè)器會(huì)記錄此偏移量;然后把此時(shí)的信號(hào)傳給反饋系統(tǒng),以利于系統(tǒng)做適當(dāng)?shù)恼{(diào)整;最后再將樣品的表面特性以影像的方式呈現(xiàn)出來(lái)。
AFM與樣品間的相互作用以范德華力為主,其作用勢(shì)能一般用Lennard-Jones勢(shì)能函數(shù)表示:
式中:r是勢(shì)能為0時(shí)兩原子的核間距;ε是勢(shì)阱深度,是勢(shì)能曲線上最低點(diǎn)勢(shì)能的絕對(duì)值。當(dāng)懸臂尖端的原子與樣品靠近,開始時(shí)吸引力起主導(dǎo)作用;隨著距離的減小,兩者之間的吸引力與排斥力將趨于平衡。當(dāng)兩原子進(jìn)一步靠近時(shí),范德華力以斥力為主。
AFM的工作模式主要有:①“恒力”模式,是使用最廣泛的掃描方式,針尖與樣品間的作用力與距離有強(qiáng)烈的依賴關(guān)系,所以在掃描過程中利用反饋回路保持針尖與樣品之間的作用力恒定,即保持微懸臂的形變量不變,針尖就會(huì)隨樣品表面的起伏上下移動(dòng),記錄針尖上下運(yùn)動(dòng)的軌跡即可得到樣品表面形貌的信息,完成樣品掃描任務(wù)。②“恒高”模式,即在X,Y掃描過程中,不使用反饋回路,保持針尖與樣品之間的距離恒定,通過測(cè)量微懸臂Z方向的形變量來(lái)成像。這種方式通常在觀察原子、分子像時(shí)用得比較多,可以采用很高的速度,但對(duì)于表面起伏比較大的樣品不適用。
噬菌體λ-DNA(NEB公司),用前不需要進(jìn)一步純化。λ-DNA的原始濃度500 ng/μL,儲(chǔ)存液1×TE緩沖液(10 mmol/L Tris-HCl與 1 mmol/L EDTA,pH 8.0)。限制性內(nèi)切酶 EcoRV與 BspMI(Sigma-Aldrich公司),其原始濃度是5 u/μL。分析純氯化鈣及其他的化學(xué)藥品(北京經(jīng)科宏達(dá)公司)。實(shí)驗(yàn)中用水都是超純水,經(jīng)過密理博超純水系統(tǒng)過濾、去離子化處理。云母做成1 cm×1 cm的正方形,每次用前用透明膠新解離后使用,以保證云母片表面的平整度與清潔。
AFM(日本京都島津公司,型號(hào)為SPM-9600)。所有的圖像都是在空氣中采用輕敲模式獲得。掃描速度3 Hz,均方振幅2 V,驅(qū)動(dòng)頻率約350 kHz,硅探針具有固定的彈性系數(shù)42 N/m。圖片512×512像素。在AFM圖像中DNA高度、寬度等信息出SPM-9600自帶的離線分析軟件獲得。
λ-DNA(500 ng/μL)的貯存液用含有10 mmol/L Tris-HCl,50 mmol/L NaCl和 10 mmol/L CaCl2的緩沖液稀釋。DNA的最終濃度是1.25 ng/μL。接著把不同單位濃度的內(nèi)切酶與DNA溶液混合,然后把混合液放到37℃的干式恒溫器內(nèi)放置30 min,用移液器取出15μL的混合液放到剛解離的云母片上面,沉積2min后,每次用20μL的Milli-Q超純水沖洗云母片,約沖洗10~15次,目的是去除云母表面多余的DNA分子,最后立即用氮?dú)獯蹈纱谩?/p>
本文用AFM研究了II型限制性內(nèi)切酶EcoRV與λ-DNA的相互作用。一般情況下,內(nèi)切酶對(duì)DNA有切割作用,但是用鎂離子代替緩沖液中的鈣離子后,內(nèi)切酶的切割作用會(huì)被阻止。此時(shí)這種內(nèi)切酶以二聚體形式綁定DNA的序列5’-GATATC-3’,會(huì)形成一個(gè)一個(gè)珠串狀結(jié)構(gòu),如圖1所示。在λ-DNA分子上面,這種序列出現(xiàn)過21次,隨著內(nèi)切酶濃度的增加,DNA上面結(jié)合位點(diǎn)數(shù)也不斷增加,因此,如果每個(gè)位點(diǎn)都結(jié)合上內(nèi)切酶的話,一根DNA上面應(yīng)該有21個(gè)點(diǎn)。但是由圖2知,當(dāng)內(nèi)切酶濃度達(dá)到5 u/mL時(shí),單根DNA上面結(jié)合位點(diǎn)的統(tǒng)計(jì)結(jié)果顯示不止有21個(gè),可見在特異性結(jié)合的同時(shí),也有一些非特異性結(jié)合。而且在圖1(C)黑色圓圈中明顯看出DNA上面內(nèi)切酶結(jié)合的地方,DNA會(huì)發(fā)生彎曲,說明EcoRV對(duì)DNA還有扭轉(zhuǎn)彎曲的作用。
圖1 EcoRV與DNA相互作用的AFM圖像
圖3 是IIs型限制性內(nèi)切酶BspMI與DNA的相互作用的AFM圖像,用鈣離子代替緩沖液中的鎂離子后,內(nèi)切酶對(duì)DNA沒有切割作用,這種內(nèi)切酶會(huì)以四聚體形式結(jié)合到DNA的單個(gè)序列5’-GAATTC-3’或綁定2個(gè)DNA的序列形成環(huán)狀結(jié)構(gòu)。在λ-DNA分子上面,這種序列出現(xiàn)過41次。在實(shí)驗(yàn)過程中,發(fā)現(xiàn)有些蛋白并沒有綁定2個(gè)DNA序列而形成環(huán),而是會(huì)綁定到DNA的一個(gè)識(shí)別位點(diǎn),如圖3(D)黑色圓圈所示。改變內(nèi)切酶濃度,在云母片上面觀察BspMI-DNA的復(fù)合物,在圖3中可以看到,綁定單個(gè)位點(diǎn)或2個(gè)位點(diǎn)而形成環(huán)的兩種情況。當(dāng)內(nèi)切酶BspMI的濃度很高時(shí),就會(huì)有更多的環(huán)狀形成。圖4為DNA上面內(nèi)切酶的結(jié)合位點(diǎn)數(shù)量統(tǒng)計(jì)圖,隨著內(nèi)切酶濃度的增加,綁定單個(gè)位點(diǎn)及2個(gè)位點(diǎn)形成環(huán)狀結(jié)構(gòu)的數(shù)量都在增加,統(tǒng)計(jì)時(shí)把成環(huán)結(jié)構(gòu)看成2個(gè)位點(diǎn)綁定進(jìn)行統(tǒng)計(jì)。由圖4可知,內(nèi)切酶濃度達(dá)到5 u/mL時(shí),DNA上面的環(huán)狀結(jié)構(gòu)很多,而且對(duì)單根DNA上面內(nèi)切酶的結(jié)合數(shù)量進(jìn)行統(tǒng)計(jì)也不止41個(gè),說明也有非特異性的結(jié)合,而且發(fā)現(xiàn)內(nèi)切酶的體積變大,可能發(fā)生內(nèi)切酶之間的聚集。
圖2 EcoRV與DNA相互作用結(jié)合位點(diǎn)的統(tǒng)計(jì)圖
圖3 BspMI-DNA復(fù)合物的AFM圖像
圖4 BspMI與DNA相互作用結(jié)合位點(diǎn)的統(tǒng)計(jì)圖
圖5 是兩種內(nèi)切酶與DNA作用的模型圖,能夠更直觀形象地說明其相互作用。在鈣離子緩沖液中,兩種內(nèi)切酶與DNA結(jié)合作用是不同的。限制性內(nèi)切酶EcoRV是二聚體的結(jié)構(gòu),與DNA的單個(gè)位點(diǎn)結(jié)合,并使DNA發(fā)生彎曲,形成珠串狀結(jié)構(gòu),如圖5(A)所示。BspMI是四聚體的結(jié)構(gòu),四聚體有2個(gè)識(shí)別位點(diǎn),BspMI與DNA結(jié)合作用或結(jié)合一個(gè)位點(diǎn)形成珠串狀結(jié)構(gòu),或結(jié)合2個(gè)位點(diǎn)形成環(huán)狀結(jié)構(gòu),如圖5(B)所示。
圖5 兩種內(nèi)切酶與DNA作用的模型圖
本文利用AFM研究λ-DNA與內(nèi)切酶蛋白的相互作用,主要對(duì)兩種內(nèi)切酶與DNA的成像進(jìn)行對(duì)比。該方法不僅可用于科學(xué)研究,還可引入近代物理實(shí)驗(yàn)教學(xué)。該實(shí)驗(yàn)的開設(shè)不僅可提高學(xué)生的動(dòng)手操作能力,而且對(duì)生物學(xué)中重要的過程如DNA與內(nèi)切酶的作用進(jìn)行直接觀察,拓寬學(xué)生們對(duì)生物學(xué)與物理學(xué)結(jié)合領(lǐng)域的認(rèn)識(shí)。
[1] Dahirel V,Paillusson F,Jardat M,et al.Nonspecific DNA-protein interaction:why proteins can diffuse along DNA[J].Physical Review Letters,2009,102(22):228101.
[2]Gross P,F(xiàn)arge G,Peterman E J,et al.Combining optical tweezers,single-molecule fluorescence microscopy,and microfluidics for studies of DNA-Protein interactions[J].Methods in Enzymology,2010,475:427-453.
[3] Jirawatnotai S,Hu Y,Michowski W,et al.A function for cyclin D1 in DNA repair uncovered by protein interactome analyses in human cancers[J].Nature,2011,474:230-234.
[4] Hirsch S,Kim J,Mu?oz A,et al.GRAS proteins form a DNA binding complex to induce gene expression during nodulation signaling in Medicago truncatula[J].The Plant Cell Online,2009,21:545-557.
[5] Song J,Durrant W E,Wang S,et al.DNA repair proteins are directly involved in regulation of gene expression during plant immune response[J].Cell Host& Microbe,2011(9):115-124.
[6] Gendron J M,Pruneda-Paz J L,Doherty C J,et al.Arabidopsis circadian clock protein,TOC1,is a DNA-binding transcription factor[J].Proceedings of the National Academy of Sciences,2012,109:3167-3172.
[7] Laponogov I,Pan X-S,Veselkov D A,et al.Structural basis of gate-DNA breakage and resealing by type II topoisomerases[J].PLoSOne,2010,5:e11338.
[8] Galburt E A,Stoddard B L.Catalytic mechanisms of restriction and homing endonucleases[J].Biochemistry,2002,41:13851-13860.
[9] Yang W,Lee J,Nowotny M.Making and breaking nucleic acids:two-Mg2+-ion catalysis and substrate specificity[J].Molecular Cell,2006,22:5-13.
[10] Roberts R J,Halford SE.Type IIrestriction enzymes[M].In Linn SM,Lloyd R S,Roberts R J,eds,Nucleases.Cold Spring Harbor Laboratory Press,Cold Spring Harbor,1993:35-88.
[11] Perona JJ.Type II restriction endonucleases[J].Methods,2002,28:353-364.
[12] Stover T,Kohler E,F(xiàn)agin U,et al.Determination of the DNA bend angle induced by the restriction endonuclease EcoRV in the presence of Mg2+[J].Journal of Biological Chemistry ,1993,268:8645-8650.
[13] Deibert M,Grazulis S,Sasnauskas G,et al.Structure of the tetrameric restriction endonuclease NgOMIV in complex with cleaved DNA[J].Nature Structural& Molecular Biology,2000,7(9):792-799.
[14] Gormley N,Hillberg A,Halford S. The type IIs restriction endonuclease BspMI is a tetramer that acts concertedly at two copies of an asymmetric DNA sequence[J]. Journal of Biological Chemistry,2002,277(6):4034-4041.
[15] Bath A,Milsom S,Gormley N,et al.Many type IIs restriction endonucleases interact with two recognition sites before cleaving DNA[J].Journal of Biological Chemistry,2002,277(6):4024-4033.
[16] Yan J,Skoko D,Marko J.Near-field-magnetic-tweezer manipulation of single DNA molecules[J].Physical Review E,2004,70(1):11905.
[17] Hansma H G,Sinsheimer R L,Groppe J,et al.Recent advances in atomic force microscopy of DNA[J].Scanning,2011,15:296-299.
[18] Lyubchenko Y L,Shlyakhtenko L S.AFM for analysis of structure and dynamics of DNA and protein-DNA complexes[J].Methods,2009,47:206-213.