韓 陽,郝志超,王 琪,王文飛,趙景壯,郭 茉,吳云舟,葉賢龍,任桂萍,李德山
(東北農(nóng)業(yè)大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院生物制藥教研室,黑龍江哈爾濱 150030)
犬細(xì)胞因子特別是干擾素(IFN)的抗病毒和免疫調(diào)節(jié)活性等作用在犬病治療中引起廣泛關(guān)注。DevosK等克隆了犬 IFN-γ(CaIFN-γ)基因[1],楊琪等克隆了CaIFN-γcDNA,并用pRC/CMV2表達(dá)載體在鼠骨髓瘤細(xì)胞中進(jìn)行表達(dá)[2],但真核表達(dá)產(chǎn)量很低,陳忠廣等探索了以包涵體形式表達(dá)的CaIFN-γ蛋白的稀釋復(fù)性的條件[3],但包涵體需經(jīng)過重新折疊復(fù)性才能夠獲得其原有的生物活性,這使犬CaIFN-γ不能大量地應(yīng)用于臨床試驗,所以獲得高產(chǎn)量并且具有活性的CaIFN-γ蛋白是目前急需解決的關(guān)鍵問題。本實驗利用SUMO(Small ubiquitin-like modifier-1)表達(dá)系統(tǒng)高效表達(dá)了可溶性的CaIFN-γ蛋白,SUMO可以作為分子伴侶來增加外源蛋白的穩(wěn)定性和可溶性,其作用機(jī)理可能是SUMO蛋白作為一個高度疏水的核心,為目的蛋白的折疊提供成核位點(diǎn),促進(jìn)蛋白間的相互作用并使其正確折疊,最終增強(qiáng)了融合蛋白的可溶性[4]。本研究通過引入伴侶分子SUMO,實現(xiàn)CaIFN-γ蛋白的可溶性表達(dá),并獲得具有高生物學(xué)活性的IFN-γ蛋白,從而解決IFN-γ包涵體蛋白復(fù)性效率低,并且生物學(xué)活性差的問題。
1.1 載體、細(xì)胞株及菌株 pMD18-T載體購自TaKaRa公司;pSUMO expression質(zhì)粒由本實驗室保存;犬腎(Madin-Darby canine kidney,MDCK)細(xì)胞由東北農(nóng)業(yè)大學(xué)動物傳染病教研室提供;E.coliDH5α、E.coliRosetta(DE3)pLysS由本實驗室保存。
1.2 主要試劑 TRIzol試劑購自Invitrogen公司;M-MuLV反轉(zhuǎn)錄酶購自Promega公司;蛋白分子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)購自Fermentas公司;T4 DNA連接酶、限制性內(nèi)切酶購自NEB公司;SUMO ProteaseⅠ由本實驗室表達(dá)純化;Real time PCR試劑盒購自TaKaRa公司。
1.3 引物設(shè)計與合成 根據(jù)GenBank中登錄的CaIFN-γ (NM_001003174.1)設(shè)計引物。
CaIFN-γ-f: 5'-GGTCTCAAGGTCAGGCCATGT TTTTTAAAGAAATAG-3'(BsaⅠ ); CaIFN-γ-r: 5'-C GCGGATCCTTATTTCGATGCTCTGCGGCCTCGAA ACAGAT-3'(BamHⅠ)
P53-f: 5'-TTGCCAGCTGGCGAAGACCTG-3';P53-r:5'-ACCTCGGGTGGCTCATAAGGCA-3'
GAPDH-f:5'-TGCCGCCTGGAGAAAGCTGC-3';GAPDH-r:5'-TCCCAGGAAATGAGCTTGAC-3'
1.4 目的基因的克隆與序列測定 取人工感染犬瘟熱病毒(CDV)的成年犬脾臟,采用淋巴細(xì)胞分離液分離白細(xì)胞,提取其總RNA。以其為模板,Oligo(dT)18為引物,反轉(zhuǎn)錄合成cDNA。以cDNA為模板,PCR擴(kuò)增CaIFN-γ基因。PCR產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電檢測。采用凝膠回收試劑盒回收并純化目的DNA,連入pMD18-T載體中構(gòu)建重組質(zhì)粒pMDCaIFN-γ,并由上海英駿生物技術(shù)有限公司進(jìn)行序列測定。采用凝膠回收試劑盒回收并純化目的DNA,連入pSUMO載體中構(gòu)建重組表達(dá)質(zhì)粒pSUMOCaIFN-γ。
1.5 目的基因的誘導(dǎo)表達(dá) 將pSUMO-CaIFN-γ轉(zhuǎn)化Rosetta(DE3)pLysS感受態(tài)細(xì)胞,37℃培養(yǎng)至OD600nm達(dá)0.3~0.4時,加IPTG至終濃度為0.25mmol/L誘導(dǎo)目的蛋白的表達(dá)。將不同誘導(dǎo)時間的誘導(dǎo)菌經(jīng)超聲儀破碎菌體,分離上清及沉淀,分別進(jìn)行SDSPAGE分析表達(dá)蛋白的可溶性。
1.6 重組蛋白的純化 誘導(dǎo)表達(dá)后的菌體離心后用裂解緩沖液懸浮,超聲裂解離心,將上清液通過0.45μm濾膜過濾后,按AKTA purifier 100-純化系統(tǒng)操作說明書的方法純化融合蛋白,加入SUMO ProteaseI和終濃度為2 mmol/L的DTT,4℃過夜消化,切除SUMO融合標(biāo)簽。酶切產(chǎn)物再通過His TrapTMFF crude column親和層析柱分離純化,收集紫外吸收峰處的流穿液,即為成熟蛋白并進(jìn)行SDS-PAGE檢測。
1.7 Ca IFN-γ蛋白對MDCK細(xì)胞生長的抑制試驗將純化后的CaIFN-γ(0.1 mg/mL)蛋白按1∶5倍比稀釋后加入于96孔細(xì)胞培養(yǎng)板經(jīng)24 h培養(yǎng)的MDCK單層細(xì)胞各孔中,共設(shè)5個梯度,每個濃度梯度設(shè)5個復(fù)孔,設(shè)空白對照(不加CaIFN-γ蛋白)及陰性對照(加入CaIFN-γ蛋白緩沖液)。于37℃、5%CO2條件下培養(yǎng)48 h、72 h后,每孔加20μL MTT(5 mg/L),繼續(xù)培養(yǎng)4 h后棄去培養(yǎng)液,向每孔加入150μL二甲基亞砜(DMSO),振蕩10 Min,酶標(biāo)儀檢測OD490nm值,以系統(tǒng)空白組(只加DMSO組)的平均值調(diào)零,按以下公式計算抑制率:
細(xì)胞生長抑制率(%)=(1-實驗組平均OD值/對照組平均OD值)×100%
1.8 實時熒光定量PCR檢測內(nèi)源p53的表達(dá) 將處于對數(shù)生長期的MDCK犬腎細(xì)胞,1×106/mL接種于六孔板,用純化后的CaIFN-γ蛋白進(jìn)行刺激,分別將蛋白(0.1 mg/mL)進(jìn)行10倍、100倍、1 000倍稀釋,刺激4 h,real time PCR檢測CaIFN-γ刺激下,p53表達(dá)情況;同時將CaIFN-γ蛋白100倍稀釋后,與MDCK細(xì)胞分別作用2 h、4 h、6 h,檢測p53表達(dá)情況。以GAPDH作為內(nèi)參,以未加CaIFN-γ蛋白刺激的空白細(xì)胞作為對照。
1.9 統(tǒng)計學(xué)分析 用SPSS 10.0統(tǒng)計學(xué)軟件分析所得到的數(shù)據(jù)進(jìn)行樣本的t檢驗。
2.1 Ca IFN-γ基因擴(kuò)增及序列分析 CaIFN-γ基因PCR產(chǎn)物經(jīng)1.5%瓊脂糖凝膠電泳分析,在約400 bp處可見特異性DNA片段,大小與預(yù)期相符(圖1)。測序結(jié)果與GenBank中登錄的CaIFN-γ基因序列的同源性達(dá)100%。pSUMO-CaIFN-γ經(jīng)PCR及雙酶切鑒定,產(chǎn)物經(jīng)1.5%瓊脂糖凝膠電泳分析,在約400 bp處均可見特異性DNA片段,大小與預(yù)期相符(432 bp)。
圖1 PCR擴(kuò)增CaIFN-γ基因Fig.1 Amplification of CaIFN-γgene by PCR
2.2 重組成熟Ca IFN-γ蛋白的制備 采用SUMO系統(tǒng)表達(dá)SUMO-CaIFN-γ融合蛋白,將表達(dá)蛋白進(jìn)行SDS-PAGE分析,并且取不同誘導(dǎo)時間的誘導(dǎo)菌進(jìn)行SDS-PAGE分析?;叶确治鼋Y(jié)果顯示,上清中CaIFN-γ蛋白總量占菌體蛋白總量的70%,目的蛋白為可溶性表達(dá)(圖2),誘導(dǎo)后6 h,目的蛋白表達(dá)量達(dá)到高峰。利用SUMO系統(tǒng)表達(dá)外源蛋白時,融合蛋白N端含有6×His標(biāo)簽,可以利用Ni-NTA層析柱進(jìn)行純化。表達(dá)菌破碎后取上清經(jīng)親和層析得到唯一的洗脫峰即為SUMO-CaIFN-γ融合蛋白。融合蛋白經(jīng)SUMO ProteaseⅠ酶切純化后獲得成熟CaIFN-γ 蛋白(圖 3)。
圖2 CaIFN-γ在SUMO表達(dá)系統(tǒng)中表達(dá)蛋白的SDS-PAGE分析Fig.2 SDS-PAGE analysis of SUMO-CaIFN-γfusion protein expression in E.coli
圖3 CaIFN-γ純化蛋白SDS-PAGE結(jié)果Fig.3 SDS-PAGE analysis of the purified CaIFN-γ
2.3 重組Ca IFN-γ蛋白對MDCK增殖的抑制作用將純化后的重組CaIFN-γ蛋白按1∶5倍比稀釋后加入各孔。測定吸光度并計算細(xì)胞生長抑制率,以各孔所加CaIFN-γ蛋白濃度為橫坐標(biāo),以細(xì)胞生長抑制率為縱坐標(biāo)作圖。結(jié)果顯示,與蛋白緩沖液對照組相比純化后的重組CaIFN-γ對MDCK細(xì)胞生長存在明顯的抑制作用(p<0.05),隨著CaIFN-γ濃度增加,對MDCK細(xì)胞抑制率逐漸增加,當(dāng)?shù)鞍诐舛葹? 250 ng/mL時,達(dá)到最大抑制率72%,并且72 h后的抑制率明顯大于48 h(p<0.05)(圖4)。
2.4 Ca IFN-γ上調(diào)MDCK細(xì)胞p53 mRNA轉(zhuǎn)錄水平 在CaIFN-γ蛋白的刺激下,MDCK內(nèi)源的p53的表達(dá)水平在4 h達(dá)到最高并且是對照組的399倍(圖5);并且隨著IFN-γ劑量的不斷增加,p53的mRNA水平也具有逐漸增加的趨勢,呈劑量依賴性關(guān)系,差異顯著(p<0.05)(圖6)。
圖4 CaIFN-γ對MDCK細(xì)胞增殖的抑制作用Fig.4 The inhibition of proliferation of MDCK cells by CaIFN-γ
圖5 CaIFN-γ刺激p53表達(dá)的時間依賴性Fig.5 Time-dependent expression of p53 in MDCK cells after stimulation with CaIFN-γ
原核系統(tǒng)表達(dá)的INF多以包涵體形成存在,需要通過變性復(fù)性后才能恢復(fù)其生物活性。雖然陳忠廣等建立較好的CaIFN-γ蛋白包涵體復(fù)性方法,但包涵體復(fù)性終究是一個費(fèi)時、費(fèi)力的過程,而且容易使溶解后的蛋白質(zhì)失去某些生物功能或全部失活,影響對CaIFN-γ的進(jìn)一步研究及應(yīng)用。因此,采用一個合適的原核表達(dá)系統(tǒng)對提高CaIFN-γ的可溶性表達(dá)尤為重要。本研究可溶性表達(dá)目的蛋白,獲得具有生物活性的CaIFN-γ。近年來,研究表明SUMO可以作為重組蛋白表達(dá)的融合標(biāo)簽和分子伴侶,具有抗蛋白酶水解、顯著增加重組蛋白表達(dá)量以及促進(jìn)靶蛋白正確折疊、提高可溶性等功能[5]。本研究采用SUMO可溶系統(tǒng)高效穩(wěn)定的表達(dá)了可溶的CaIFN-γ蛋白,IPTG誘導(dǎo)后收集菌體,破碎后SDS-PAGE分析蛋白表達(dá)量,上清中蛋白含量占菌體蛋白總量的70%,這與以往利用其它表達(dá)載體表達(dá)CaIFN-γ相比,大大提高了蛋白的可溶性表達(dá),為CaIFN-γ的研究及大規(guī)模發(fā)酵生產(chǎn)奠定了基礎(chǔ)。
圖6 CaIFN-γ刺激p53表達(dá)劑量依賴性Fig.6 Dose-dependent expression of p53 in MDCK cells after stimulation with CaIFN-γ
IFN對腫瘤細(xì)胞和正常細(xì)胞的分裂均有明顯的抑制作用[6-7]。如IFN-α抑制堿性成纖維細(xì)胞生長因子(Basic fibroblast growth factor,bFGF)誘導(dǎo)的內(nèi)皮細(xì)胞增殖,而IFN-α和IFN-γ均可以直接抑制人表皮微血管內(nèi)皮細(xì)胞和人毛細(xì)血管內(nèi)皮細(xì)胞的增殖[8]。因此,我們采用MTT方法以不同濃度,不同作用時間檢測INF-γ對永生化的細(xì)胞MDCK的增殖抑制作用,結(jié)果表明CaIFN-γ蛋白顯著抑制該細(xì)胞的增殖。
Moiseeva等人研究表明IFN-β作用于人的成纖維細(xì)胞,可以通過DNA損傷和激活p53信號通路來誘導(dǎo)細(xì)胞衰老[9],Akinori等人研究表明,IFN-α作用于鼠胚胎成纖維細(xì)胞,IFN誘導(dǎo)生成的ISGF3可以與p53的ISRE結(jié)合,誘導(dǎo)p53上調(diào)表達(dá),并且p53的表達(dá)量與時間和劑量呈依賴性關(guān)系[10]。Kim等人研究表明IFN-γ通過p53信號通路在誘導(dǎo)細(xì)胞衰老過程中起重要作用[11]。以上研究表明p53信號通路在IFN抑制細(xì)胞增殖并引起細(xì)胞衰老的過程中起重要作用。本文采用CaIFN-γ蛋白刺激MDCK細(xì)胞,結(jié)果表明MDCK細(xì)胞所表達(dá)的p53水平與INF-γ呈劑量依賴性,并且差異顯著,表明采用SUMO原核表達(dá)系統(tǒng)獲得的INF-γ具有生物活性。
綜上所述,本研究采用SUMO表達(dá)系統(tǒng),高效穩(wěn)定的表達(dá)了可溶性的CaIFN-γ蛋白,解決了包涵體變性復(fù)性影響蛋白活性和減少蛋白產(chǎn)量的瓶頸問題。通過MTT法檢測CaIFN-γ蛋白對MDCK細(xì)胞增殖的抑制作用,并通過real-time PCR檢測CaIFN-γ蛋白刺激后MDCK細(xì)胞內(nèi)源p53 mRNA表達(dá)量上調(diào)來鑒定CaIFN-γ的生物活性,建立了安全、快速、靈敏的INF活性檢測平臺,為高表達(dá)具有高活性的犬INF-γ,發(fā)掘其藥物價值和臨床價值奠定基礎(chǔ)。
[1]Devos K,Duerinck F,Van Audenhove K et al.Cloning and expression of the canine interferon-gamma gene[J].J Interferon Res,1992,12(2):95-102.
[2]楊琪,夏春,趙德明,等.犬干擾素-γcDNA的克隆及其在鼠骨髓瘤細(xì)胞(SP2/0)中表達(dá)[J].生物工程學(xué)報,2002,(3):365-368.
[3]陳忠廣,張桂紅,夏春麗,等.犬干擾素-γ的稀釋復(fù)性及活力測定[J].東北農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2008,39(9):82-86.
[4]姜媛媛,劉銘瑤,任桂萍,等.高效可溶性重組蛋白表達(dá)載體的構(gòu)建[J].生物工程學(xué)報,2010,25;26(1):121-129.
[5]曲栗,尹杰超,李寧,等.利用SUMO表達(dá)系統(tǒng)高效可溶性表達(dá)雞傳染性法氏囊病病毒VP3基因[J].中國預(yù)防獸醫(yī)學(xué)報,2011,33(3):199-202.
[6]Jiang Hong-ping,Lin Jiao-jiao,Tao Jing,et al.Suppression of human ribosomal protein L23A expression during cell growth inhibition by interferon-beta[J].Oncogene,1997,14:473-480.
[7]Lengyel P.Tumor-suppressor genes:news about the interferon connection[J].Proc Natl Acad Sci USA,1993,90:5893-5895.
[8]Izawa J I,Sweeney P,Perrotte P,et al.Inhibition of tumorigenicity and metastasis of human bladder cancer grow ing in athym ic Mice by interferon-beta gene therapy results partially from various antiangiogenic effects including endothelial cell apoptosis[J].Clin Cancer Res,2002,8:1258-1270.
[9]Moiseeva O,Mallette F A,Mukhopadhyay U K,et al.DNA damage signaling and p53-dependent senescence after prolonged beta interferon stimulation[J].Mol Biol Cell,2006,17:1583-1592.
[10]Takaoka A,Hayakawa S,Yanai H,et al.Integration of interferon alpha/beta signaling to p53 responses in tumor suppression and antiviral defence[J].Nature,2003,424:516-523.
[11]KimK S,Kang K W,Seu Y B,et al.Interferon-gamma induces cellular senescence through p53-dependent DNA damage signaling in human endothelial cells[J].Mech Ageing Dev,2009,130(3):179-188.