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        清醒與麻醉狀態(tài)經(jīng)典型熱射病大鼠模型比較

        2013-08-28 03:16:36耿焱付煒劉亞楠彭娜雷玉梅蘇磊
        解放軍醫(yī)學(xué)雜志 2013年8期
        關(guān)鍵詞:體溫調(diào)節(jié)血壓

        耿焱,付煒,劉亞楠,彭娜,雷玉梅,蘇磊

        根據(jù)勞力性因素的有無,熱射病(heat stroke,HS)分為勞力型熱射病(exertional HS,EHS)和經(jīng)典型熱射病(classic HS,CHS)[1-2]。CHS具有高發(fā)病率和病死率,由于發(fā)病機制尚不清楚,臨床缺乏有效而特異性的治療手段,盡管采取了積極的降溫和相應(yīng)的臟器支持等處理措施,其病死率仍居高不下[3-6]。動物模型尤其是小動物模型對研究CHS的發(fā)病機制非常重要。目前普遍接受的實驗性動物HS診斷標準包括動脈血壓下降[1-4],因為血壓測量困難,研究CHS的小動物模型以大鼠為主,而大鼠動脈血壓觀察的經(jīng)典方法是麻醉狀態(tài)下行股動脈插管監(jiān)測,但這種方法擾亂了大鼠在高溫環(huán)境下體溫調(diào)節(jié)的行為和生理機制,存在較大的混淆因素,影響了大鼠實驗性CHS的研究。我們利用無創(chuàng)大鼠血壓監(jiān)測系統(tǒng),首次構(gòu)建了清醒狀態(tài)下的CHS大鼠模型,并對比了該模型與傳統(tǒng)麻醉狀態(tài)下CHS模型的異同,為進一步研究自然狀態(tài)下大鼠CHS的發(fā)病機制奠定了基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1.1 主要設(shè)備 模擬熱氣候動物艙(南方醫(yī)科大學(xué)公共衛(wèi)生與熱帶衛(wèi)生學(xué)學(xué)院提供),BW-NIBP型無創(chuàng)大鼠鼠尾動脈血壓測量儀(上海軟隆科技發(fā)展有限公司),Powlalr 8sp生理記錄儀(澳大利亞Adinstruments公司)。

        1.2 實驗動物及分組 SPF級雄性SD大鼠32只,體重281~314g,于南方醫(yī)院實驗動物中心飼養(yǎng)2周左右,環(huán)境溫度23℃,濕度55%±5%,12h晝/夜循環(huán)。實驗大鼠隨機分為4組,每組8只,分別為:常溫清醒狀態(tài)對照組(C-NC組)﹑常溫麻醉狀態(tài)左股動脈插管對照組(N-NC組)﹑高溫清醒狀態(tài)組(C-CHS組)﹑高溫麻醉狀態(tài)左股動脈插管組(N-CHS組)。C-NC組和C-CHS組大鼠在實驗前接受2周無創(chuàng)血壓測量適應(yīng)性訓(xùn)練,頻率為2次/d。1.3 有創(chuàng)血壓測量 參照Hall等[4]和Yang等[7]的方法,于大鼠左股動脈插管接生理記錄儀測量收縮壓(SBP)。N-NC組和N-CHS組大鼠在實驗前2h接受左側(cè)股動脈插管處理,具體步驟為:大鼠以10%水合氯醛(3ml/kg)腹腔注射麻醉后,仰臥位固定于操作臺;切開左側(cè)腹股溝皮膚,分離約1cm股動脈,結(jié)扎遠心端,向心臟方向插管并固定,連接三通管,以肝素鹽水125U/ml封管;穩(wěn)定10min后進行下一步實驗。

        1.4 無創(chuàng)血壓測量及驗證 采用大鼠鼠尾動脈血壓測量儀測量SBP值,應(yīng)用有創(chuàng)血壓測量系統(tǒng)驗證。方法:在實驗過程中隨機選取6個時間點,將N-NC組和N-CHS組大鼠連接無創(chuàng)大鼠鼠尾動脈血壓測量儀,同時進行有創(chuàng)及無創(chuàng)SBP測量,對比兩種測量系統(tǒng)在測量值上的差異。

        1.5 核心體溫測量方法 用生理記錄儀的熱電偶測量各組大鼠直腸溫度(Tr),以Tr代表核心體溫。

        1.6 熱打擊方法及監(jiān)測指標 熱打擊前將高溫艙預(yù)熱到30℃,在熱打擊前20min(time –20)和10min(time –10)時點各測量核心體溫和SBP一次。熱打擊的方法:將C-CHS組和N-CHS組大鼠置于預(yù)熱至30℃的仿真熱氣候動物艙(time 0),30min內(nèi)將艙內(nèi)溫度升至39℃,濕度65%。N-CHS組大鼠連接Powlalr 8sp生理記錄儀,直腸內(nèi)放置熱電偶,每隔10min記錄SBP和Tr一次,根據(jù)大鼠意識狀態(tài)不定時少量補充10%水合氯醛,維持麻醉狀態(tài)。C-CHS組大鼠每10min連接一次無創(chuàng)血壓測量系統(tǒng)和直腸熱電偶,記錄SBP和Tr,達到CHS診斷標準后將大鼠從氣候艙取出。CHS診斷標準:核心體溫≥42℃,動脈SBP從峰值開始下降[5]。實驗期間,各組大鼠均禁食﹑水,C-NC組和N-NC組大鼠全程置于23℃環(huán)境中。

        1.7 恢復(fù)期處理方法 熱打擊結(jié)束后即進入恢復(fù)期處理。N-NC組和N-CHS組大鼠結(jié)扎左側(cè)股動脈,拔除插管,縫閉切口,停止使用水合氯醛。各組大鼠接受20min酒精擦浴全身降溫治療后,恢復(fù)進食﹑水,放回原飼養(yǎng)環(huán)境中繼續(xù)觀察3d。

        1.8 熱應(yīng)激計算方法 參考Leon等[8]的方法,通過量化計算方法對比不同HS組大鼠熱應(yīng)激反應(yīng)的異同。以熱暴露前的核心體溫和SBP為基線核心體溫和SBP,成模時(SBP從峰值開始下降)的核心體溫為最大核心體溫,以到達最大核心體溫的時間代表總熱暴露時間??偀嶝摵?℃·min)=核心體溫≥39℃的熱暴露時間×(最大核心體溫-39℃)。若核心體溫為39℃,則已經(jīng)與熱打擊環(huán)境溫度相同,在該溫度下大鼠已經(jīng)無法通過輻射散熱。以核心體溫≥42℃作為重度熱負荷的開始,重度熱負荷(℃·min)=核心體溫≥42℃的熱暴露時間×(最大核心體溫-42℃)。核心體溫上升速率=(最大核心體溫-基線核心體溫)/總熱暴露時間×100%。

        1.9 統(tǒng)計學(xué)處理 采用SPSS 13.0統(tǒng)計軟件包分析數(shù)據(jù)。計量資料以±s表示,在方差齊性基礎(chǔ)上應(yīng)用單因素方差分析(one-way ANOVA)比較最大核心體溫﹑總熱暴露時間﹑總熱負荷﹑重度熱負荷和核心體溫上升速率;應(yīng)用Kaplan-Meier法進行生存分析,假設(shè)檢驗采用log-rank法進行分析。P<0.05表示差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

        2 結(jié) 果

        2.1 無創(chuàng)血壓測量系統(tǒng)的驗證 利用有創(chuàng)血壓測量系統(tǒng)進行的驗證結(jié)果顯示,N-NC組大鼠兩種測量方式獲得的SBP測量值存在123.56mmHg差值,鼠尾動脈測量值低于股動脈測量值,但兩者變化趨勢一致;N-CHS組大鼠兩種測量方式獲得的測量值基本相同,考慮為高溫條件下鼠尾動脈血流量增加,提高了鼠尾動脈SBP測量的準確性。鼠尾動脈的舒張壓(diastolic blood pressure,DBP)測量值不穩(wěn)定,且與股動脈測量值相比有較大出入。驗證結(jié)果提示,無創(chuàng)鼠尾動脈血壓測量系統(tǒng)用于CHS模型大鼠的SBP測量是可行的,但DBP測量值不穩(wěn)定,不適用于平均動脈壓的計算。因此,本實驗參考Yang等[7]的方法,選用SBP從峰值開始下降作為熱射病的診斷標準。

        2.2 熱應(yīng)激體溫及血壓調(diào)節(jié)反應(yīng)特征 如圖1所示,熱暴露期間N-CHS和C-CHS組大鼠表現(xiàn)為不同的熱應(yīng)激反應(yīng)。隨熱暴露時間的延長,N-CHS組大鼠的核心體溫呈線性增高,直至達到最大核心體溫;C-CHS組大鼠在熱暴露期間,核心體溫呈三相式增高,表現(xiàn)為初始階段核心體溫快速上升,隨后表現(xiàn)為類似于平臺的緩升期,緩升期持續(xù)較長時間,此后再次進入快速增長期,直至達到最大核心體溫(圖1A)。N-CHS和C-CHS組大鼠在到達最大核心體溫前,SBP變化模式與核心體溫變化模式基本相同,在到達最大核心體溫時,SBP從峰值開始下降(圖1B)。熱暴露各個時段,N-CHS和C-CHS組核心體溫﹑SBP均與對應(yīng)的對照組有顯著差異(P<0.05)。與C-NC組相比,N-NC組大鼠基線核心體溫和SBP水平較低(P<0.05)。

        圖1 清醒及麻醉狀態(tài)CHS模型大鼠核心體溫和SBP調(diào)節(jié)特征Fig.1 Core temperature and SBP response profiles in conscious and unconscious classic heat stroke rats

        圖2 C-CHS和N-CHS組大鼠熱應(yīng)激核心體溫調(diào)節(jié)反應(yīng)Fig.2 Quantitative analysis of the thermoregulatory responses of C-CHS and N-CHS rats

        2.3 熱應(yīng)激體溫調(diào)節(jié)反應(yīng)定量分析 如圖2所示,N-CHS和C-CHS組大鼠最大核心體溫?zé)o顯著差異(P>0.05),而N-CHS組大鼠核心體溫上升速率顯著快于C-CHS組大鼠(P<0.05),總熱負荷和重度熱負荷均顯著少于C-CHS組大鼠(P<0.05)。

        2.4 生存分析 N-CHS組大鼠在結(jié)束熱暴露后12h內(nèi)全部死亡,C-CHS組大鼠有5只在熱暴露后3d仍存活,生存分析顯示N-CHS組大鼠生存時間顯著短于C-CHS組大鼠(圖3,P<0.05)。

        圖3 N-CHS組和C-CHS組大鼠生存時間對比Fig.3 Time-survivor curve of N-CHS and C-CHS rats

        3 討 論

        臨床上有關(guān)CHS的診斷標準包括核心體溫超過41℃,皮膚干熱﹑潮紅,同時伴神經(jīng)系統(tǒng)功能障礙[9-10]。與臨床工作不同的是實驗中很難通過觀察上述癥狀來診斷大鼠CHS。因此,目前在CHS大鼠模型的研究中,以核心體溫超過41℃和SBP從峰值下降作為診斷實驗性CHS的標準[7]。傳統(tǒng)的大鼠SBP測量方法為麻醉狀態(tài)下股動脈插管監(jiān)測,基于這種有創(chuàng)血壓測量系統(tǒng)建立的CHS大鼠模型存在著不可忽視的方法學(xué)上的混淆因素,包括:麻醉可抑制體溫調(diào)節(jié)機制,影響熱應(yīng)激體溫調(diào)節(jié)反應(yīng)[11-12];在嚙齒動物,向身體的腹側(cè)涂抹唾液是蒸發(fā)散熱必不可少的機制,然而在麻醉的情況下,這種行為受到抑制;股動脈插管需要結(jié)扎一側(cè)股動脈,結(jié)果導(dǎo)致心臟前負荷增加,以及同側(cè)后肢的缺血性損害及壞死,對機體產(chǎn)生致命性影響。上述混淆因素擾亂了動物在高溫環(huán)境下調(diào)節(jié)體溫的正常行為和生理學(xué)機制,導(dǎo)致不自然的熱應(yīng)激反應(yīng),影響了對實驗性大鼠CHS的研究[8]。

        我們首次使用無創(chuàng)血壓測量系統(tǒng)構(gòu)建了清醒狀態(tài)下的CHS大鼠模型。對比麻醉和清醒狀態(tài)下CHS大鼠模型的熱應(yīng)激血壓和體溫調(diào)節(jié)反應(yīng),我們發(fā)現(xiàn)兩者存在較大不同。清醒狀態(tài)CHS大鼠體溫調(diào)節(jié)呈現(xiàn)三相式模式,包括初始快速上升期﹑平臺樣緩升期和終末快速上升期,而麻醉狀態(tài)下的CHS大鼠體溫調(diào)節(jié)呈單相式線性增高。血壓調(diào)節(jié)也有類似現(xiàn)象,只是到達最大核心體溫時從峰值開始下降。進一步定量分析熱應(yīng)激下體溫調(diào)節(jié)顯示,盡管兩種模型在最大核心體溫上無顯著差異,但對比清醒狀態(tài)下的CHS大鼠,麻醉狀態(tài)下CHS大鼠的核心體溫上升速率顯著加快,成模時間(總熱暴露時間)顯著縮短。三相式核心體溫調(diào)節(jié)特征更接近大鼠的自然狀態(tài),表現(xiàn)為:熱應(yīng)激的初始階段,由于環(huán)境溫度大于核心體溫,導(dǎo)致無法代償?shù)臒嶝摵桑霈F(xiàn)核心體溫陡然上升;上升到大于環(huán)境溫度的水平后,清醒狀態(tài)下的大鼠可以通過涂抹唾液和尿液等行為加強蒸發(fā)散熱,從而將體內(nèi)的熱量有效散發(fā)到外界環(huán)境,減緩核心體溫的上升,導(dǎo)致出現(xiàn)可辨識的平臺樣緩升期;緩升期后核心體溫的第二次陡然上升直到最大核心體溫,提示體溫調(diào)節(jié)的破壞。受核心體溫的影響,SBP的調(diào)節(jié)水平也呈現(xiàn)類似的三相式調(diào)節(jié)特征,直至達到最大核心體溫,此時SBP從峰值下降。麻醉狀態(tài)大鼠因為體溫調(diào)節(jié)的生理行為受抑制,因此表現(xiàn)為單相式線性上升。值得注意的是,盡管熱負荷定量分析顯示,麻醉狀態(tài)下CHS大鼠的總熱負荷和嚴重?zé)嶝摵删@著低于清醒狀態(tài)下的CHS大鼠,但其預(yù)后更差,并且沒有大鼠的生存時間超過12h。我們推測可能與股動脈結(jié)扎的副作用有關(guān)。以上結(jié)果表明,清醒狀態(tài)CHS模型更接近大鼠的生理狀態(tài)。

        本研究結(jié)果證實,相比傳統(tǒng)的麻醉狀態(tài)CHS大鼠模型,基于無創(chuàng)血壓測量系統(tǒng)的清醒狀態(tài)CHS大鼠模型更適用于實驗性大鼠CHS的研究。對于清醒狀態(tài)CHS大鼠模型的進一步研究,可以促進對CHS發(fā)病機制的理解。

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