魏云計，馮 民

（淮安出入境檢驗檢疫局，江蘇 淮安 223001）

因對革蘭氏陰性菌和革蘭氏陽性菌具有很強的活性，氯霉素表現出廣譜的抗菌能力，廣泛地應用于動物養(yǎng)殖業(yè)。由于其能導致人體產生再生障礙性貧血和溶血性貧血等毒副作用，歐盟、美國等先后將其定為禁用藥物，不得用于畜牧養(yǎng)殖業(yè)中，雖然其在動物體內殘留量低，但毒副作用依然存在[1]。飼料一般是獸藥添加的主要載體，開展飼料中氯霉素檢測是從源頭進行獸藥殘留控制的有效方法，因此研究配合飼料中氯霉素檢測方法具有重要意義。

目前國內外關于組織中氯霉素的殘留檢測方法已很成熟，主要采用酶聯(lián)免疫法、高效液相色譜法、氣相色譜法、氣相色譜-質譜法和液相色譜-質譜法等[2-18]。由于飼料的品種較多，組成復雜，使用普通的檢測儀器測定其藥物殘留基質干擾較大，本研究利用液相色譜-質譜法的強選擇性和抗干擾能力特點，建立了飼料中氯霉素殘留的快速定性定量方法，定量限為0.3 μg·kg-1遠遠低于GB/T 21108-2007 規(guī)定的限量，對配合飼料生產和畜牧養(yǎng)殖具有指導意義。

1 試驗部分

1.1 儀器與試劑

Thermo Finngan TSQ Quantum Ultra ENR 串聯(lián)質譜儀，配有電噴霧離子源（ESI）；C18 柱（150mm×3.1 mm i.d.,3.5 μm,Agilent）。

甲醇為色譜純，乙酸乙酯、正己烷、氯化鈉均為分析純，水為去離子水。氯霉素標準品均購自Dr.Ehrenstorfer GmbH 公司，純度≥98%，氘代氯霉素（chloramphenicol-D5）購自WITEGA Laboratorien Beelin-Adlershof GmbH公司，用甲醇溶解并配制成1.0 mg·mL-1標準儲備液，再根據需要稀釋成適當濃度的混合標準工作液，4℃避光保存。

1.2 樣品前處理

準確稱取飼料2.00±0.05 g于50 mL 具塞離心管中，加入水4 mL，于渦旋混合器上混勻30 s 后靜置10 min待飼料浸潤，加入氨化乙酸乙酯（乙酸乙酯/25%氨水，v/v，98∶2）10 mL，于渦旋混合器上快速混勻30 s，超聲波提取10 min；8000 rpm離心3 min，取上層有機溶液至50 mL梨形瓶中；向殘渣中加入氨化乙酸乙酯8 mL，進行二次提取，方法同上，合并兩次上層清液于45℃水浴中減壓濃縮至干，用甲醇/水（v/v，2∶8）1 mL 溶解殘留物，加入正己烷1 mL 凈化脫脂，離心后取下層，經0.45 μm濾膜過濾，濾液供液相色譜-質譜儀測定。

1.3 液質聯(lián)用儀分析條件

1.3.1 色譜條件

色譜柱：Agilent ZORBAX SB-C18柱（150 mm×2.1 mm i.d.,3.5 μm）；進樣量為25 μL；柱溫為30℃；流動相為A去離子水、B甲醇；梯度洗脫條件為0～4 min A 70%；4.1～6.5 min A 20%；6.6～8.5 min A 70%；流速為250 μL·min-1。

1.3.2 質譜條件

采用電噴霧離子源（ESI），負離子掃描，噴霧電壓2500V，多反應監(jiān)測（MRM）方式檢測，優(yōu)化質譜條件見附表。

附表 氯霉素優(yōu)化的質譜條件

1.4 線性范圍、檢出限和定量限

配制6個不同質量濃度的標準溶液，溶液中氯霉素為0.2、0.5、1.0、2.0、5.0、10.0 ng · mL-1，氘代氯霉素-D5 的質量濃度為5.0 ng·mL-1，測定峰面積，以質量濃度為橫坐標，峰面積的比值（氯霉素峰面積/氘代氯霉素-D5 面積）為縱坐標，繪制標準曲線。在空白配合飼料基質中添加氯霉素標準品，以信噪比（S/N）≥3時的含量定為方法的檢出限（LOD）；以信噪比（S/N）≥10 時的含量定為方法的定量限（LOQ）。

1.5 回收率的測定

選取陰性配合飼料樣品，添加氯霉素標準品和內標，氯霉素標準品添加水平為0.3、1.0、5.0 μg·kg-1，氘代氯霉素-D55.0 μg·kg-1，每個添加水平5次平行。

2 試驗結果

對30個配合飼料樣品進行檢測，發(fā)現有12個樣品氯霉素殘留量＞0.3 μg·kg-1，其藥物殘留量均低于國家殘留監(jiān)控的限量要求，按照本方法的定量限計算陽性率為40.0%。

2.1 線性范圍、檢出限和定量限

飼料中添加氯霉素0.3 μg·kg-1、氘代氯霉素-D55.0 ng·mL-1標準品MRM色譜圖見圖1，標準溶液的MRM 色譜圖見圖2。結果表明，氫霉素的回歸方程為Y=0.0426245+0.0142396X，相關系數為0.9939，檢出限為1，定量限為0.3。

圖1 飼料中添加氯霉素0.3 μg·kg-1、氘代氯霉素-D55.0 ng·mL-1標準品MRM色譜圖

圖2 氯霉素、氘代氯霉素-D5標準溶液MRM色譜圖

2.2 回收率和精密度

結果表明，回收率平均在89.7%～105.6%，相對標準偏差（RSD）低于8.7%。

3 討 論

3.1 提取條件的優(yōu)化

氯霉素屬于弱極性物質，易溶于甲醇、乙腈、丙酮、乙酸乙酯等有機溶劑，可以通過這些溶劑提取。乙酸乙酯對氯霉素的提取效率最高，適合于動物組織樣品的提取。由于配合飼料含有大量的脂肪、蛋白質、纖維素、礦物質等復合組分，本研究比較了上述幾種溶劑及堿化乙酸乙酯提取效率，結果表明，堿化乙酸乙酯提取效率優(yōu)于其他幾種常見試劑，試驗對堿化乙酸乙酯的濃度進行優(yōu)化，結果表明，當乙酸乙酯/25%氨水（v/v，98∶2）時提取效率及穩(wěn)定性最好，隨著氨水比例提高，提取效率沒有提高，反而對提取的基質干擾越大；同時飼料樣品的水分很少，在提取前充分潤濕有利于目標物的提取，提高回收率。

3.2 樣品的凈化

堿化乙酸乙酯提取效率雖高，但提取的非極性脂溶物較多，基質干擾較大，需要進一步凈化。GB/T 21108-2007和文獻報道的凈化方法用甲醇和氯化鈉4%溶液溶解目標物，正己烷凈化脫脂兩次，乙酸乙酯進行液-液分配萃取凈化，再過SPE 固相萃取柱凈化。本研究結果表明，在甲醇/水（v/v 2∶8）1 mL溶解殘留物后用正己烷1 mL凈化脫脂，可以有效的去除基質干擾，省去固相萃取過程，縮短樣品前處理時間。

4 結 論

本試驗建立了配合飼料中氯霉素測定的高效液相色譜-質譜法。串聯(lián)質譜和同位素內標的使用消除了配合飼料復雜基質的影響，提高定量的準確性。該方法操作簡便，省去固相萃取步驟，縮短檢測周期，靈敏度較高，回收率較好。

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