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        膠束增敏熒光光度法測定兔血樣中阿霉素

        2013-05-03 09:11:26付玉麗程秀梅廖秀林楊秀培
        中國測試 2013年2期
        關(guān)鍵詞:血樣阿霉素緩沖溶液

        錢 帆,付玉麗,程秀梅,廖秀林,楊秀培

        (西華師范大學(xué)化學(xué)化工學(xué)院,四川 南充 637000)

        0 引 言

        阿霉素(DOX)是一種有效的抗癌藥物,被廣泛用于癌癥的化療,且已被美國藥典收錄[1]。在化療過程中,DOX有嚴(yán)重的副作用,當(dāng)用量超過550mg/m2時(shí),就會有大于18%的概率出現(xiàn)不可逆的心臟毒性[2];因此,DOX在臨床上應(yīng)正確使用并嚴(yán)格控制用量。應(yīng)用一種簡單、快速且靈敏的方法進(jìn)行監(jiān)控及其藥物代謝研究也是非常必要的。圖1顯示了DOX的化學(xué)結(jié)構(gòu),其本身具有一定的紫外吸收及熒光性能。目前,測定DOX的方法有光譜法[3]、伏安法[4]、差示極譜法[5]、毛細(xì)管電泳法[6]及液相色譜法[7]等,其中,熒光法具有方便、快速的特點(diǎn),被廣泛應(yīng)用于眾多實(shí)驗(yàn)室及醫(yī)療院所[8]。盡管熒光法測定阿霉素已有文獻(xiàn)報(bào)道[9-10],但一般熒光法的靈敏度不能滿足臨床監(jiān)測的實(shí)際需求;因此,許多學(xué)者對提高阿霉素?zé)晒鈾z測的靈敏度進(jìn)行了研究[11-12]。本文首次提出利用十六烷基三甲基溴化銨(CTAB)對阿霉素?zé)晒鈴?qiáng)度的增敏作用,建立膠束增敏熒光光度法測定DOX的新方法,并應(yīng)用于兔血樣的分析。

        圖1 阿霉素結(jié)構(gòu)

        1 實(shí)驗(yàn)部分

        1.1 儀 器

        RF-5301PC熒光分光光度計(jì)(日本島津公司),Waters液相色譜儀-熒光檢測器(美國沃特斯公司),pH酸度計(jì)(美國奧豪斯公司),電子天平(美國奧豪斯公司),智能超聲波清洗器(上海之信儀器有限公司),離心機(jī)(上海盧湘儀)。

        1.2 試 劑

        鹽酸阿霉素(Sigma公司,USA),十六烷基三甲基溴化銨(CTAB)、四丁基溴化銨、十二烷基磺酸鈉、磷酸鹽、乙腈、甲醇、無水乙醇(成都科龍化工試劑廠),十二烷基硫酸鈉(天津?yàn)I??频匣瘜W(xué)試劑有限公司),硼酸(上海外崗化工二廠),所用試劑均為分析純或以上,實(shí)驗(yàn)用水均為三次水。

        1.3 標(biāo)準(zhǔn)溶液及兔血樣的制備

        標(biāo)準(zhǔn)溶液的配制:配制質(zhì)量濃度為1.0mg/mL的阿霉素儲備液,放置于4℃下保存。每次實(shí)驗(yàn)前準(zhǔn)確移取適量的儲備液,配制所需阿霉素標(biāo)準(zhǔn)溶液。

        兔血樣的制備:將1.2mL兔血清移入5mL離心管中,加入一定量的阿霉素標(biāo)準(zhǔn)溶液,再加入1.2mL乙腈,于高速離心機(jī)中離心去蛋白。取離心后的上層清液,再加入CTAB和硼酸緩沖溶液-乙醇混合液定容,隨后進(jìn)行測定。

        1.4 實(shí)驗(yàn)步驟

        將一定量的阿霉素標(biāo)準(zhǔn)溶液、一定量的CTAB溶液和硼酸緩沖溶液加至10mL容量瓶中,定容至刻度,搖勻后測定其熒光強(qiáng)度。用1mL的石英比色皿,以480 nm的波長激發(fā),測定發(fā)射光譜的熒光強(qiáng)度。

        2 結(jié)果與討論

        2.1 熒光波長的選擇

        分別測定濃度為75ng/mL的阿霉素在硼酸緩沖溶液及CTAB-乙醇-硼酸緩沖液混合體系中的熒光光譜,如圖2所示。阿霉素的最大激發(fā)波長與最大發(fā)射波長分別為480 nm和593 nm。兩種體系看來,CTAB及乙醇的加入對最大發(fā)射波長沒有多少影響,但對阿霉素的熒光強(qiáng)度有明顯增強(qiáng)。本實(shí)驗(yàn)選擇的激發(fā)波長與發(fā)射波長分別為480nm和593 nm。

        圖2 阿霉素在不同體系中的熒光光譜

        2.2 表面活性劑種類的選擇

        分別比較了十六烷基三甲基溴化銨(CTAB)、四丁基溴化銨、十二烷基硫酸鈉和十二烷基磺酸鈉等表面活性劑對阿霉素(5.0 ng/mL)熒光強(qiáng)度的影響,如圖3所示。幾種表面活性劑中,CTAB對阿霉素?zé)晒庥性鰪?qiáng)作用,故選CTAB作為增敏劑。

        2.3 CTAB濃度的優(yōu)化

        詳細(xì)考察了0~2.5mmol/L CTAB的濃度對阿霉素(7.5 ng/mL)熒光強(qiáng)度的影響,其他條件均為優(yōu)化值。如圖4所示,當(dāng)CTAB的濃度小于1.9mmol/L,阿霉素的熒光強(qiáng)度隨著濃度的增加先劇烈增大然后變緩,當(dāng)CTAB的濃度大于1.9mmol/L,阿霉素的熒光強(qiáng)度隨著濃度的增加而降低。這可能是因?yàn)镃TAB濃度在小于1.1mmol/L達(dá)到其膠束濃度值時(shí),溶液中的游離氧對熒光強(qiáng)度有一定的猝滅作用,隨著CTAB濃度的增加,溶液中的游離氧則逐漸下降,從而減小了溶解氧對熒光的猝滅作用;濃度大于1.1mmol/L后,CTAB濃度大于其臨界膠束濃度而在溶液中形成膠束,降低了阿霉素分子活動的自由度,從而減少了與其他溶劑或溶質(zhì)分子的碰撞猝滅作用;但當(dāng)CTAB濃度大于1.9mmol/L時(shí),可能體系過高的黏性導(dǎo)致熒光強(qiáng)度反而下降。因此,CTAB的最佳濃度確定為1.9mmol/L。

        圖3 不同表面活性劑對阿霉素?zé)晒鈴?qiáng)度的影響

        圖4 CTAB的濃度對阿霉素?zé)晒鈴?qiáng)度的影響

        2.4 緩沖溶液的pH值及濃度對阿霉素?zé)晒鈴?qiáng)度的影響

        本實(shí)驗(yàn)對硼酸緩沖液的pH值及濃度作了考察。圖5和圖6分別顯示了硼酸緩沖液pH值及濃度對阿霉素(5.0 ng/mL)熒光強(qiáng)度的影響,其他條件均為優(yōu)化值。當(dāng)pH值小于6.0時(shí),熒光強(qiáng)度隨著pH的增大而增大,當(dāng)pH值大于6.0時(shí),熒光則逐漸的降低。這是因?yàn)榘⒚顾卦趬A性及過酸條件下不穩(wěn)定,堿性過強(qiáng)時(shí)甚至結(jié)構(gòu)會被破壞,因此,在隨后的實(shí)驗(yàn)中,6.0作為緩沖溶液的最佳pH值。從圖6可以看出,緩沖液濃度為17mmol/L時(shí)可以得到最大熒光強(qiáng)度;因此,選擇17mmol/L pH為6.0的硼酸緩沖溶液進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。

        2.5 乙醇含量的影響

        實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn)添加一定的乙醇會增強(qiáng)阿霉素的熒光,隨后考察了乙醇含量(0%~80%,v/v)對阿霉素(10.0 ng/mL)熒光強(qiáng)度的影響,其他條件為優(yōu)化值,如圖7所示。在含量為60%以下時(shí),阿霉素的熒光隨乙醇含量的增加而增強(qiáng),然而當(dāng)大于60%時(shí),阿霉素?zé)晒饧眲p弱;因此,乙醇含量確定為60%(v/v)較為適宜。

        圖5 緩沖液pH對阿霉素?zé)晒鈴?qiáng)度的影響

        圖6 緩沖液濃度對阿霉素?zé)晒鈴?qiáng)度的影響

        圖7 乙醇含量對阿霉素?zé)晒鈴?qiáng)度的影響

        2.6 線性范圍與檢出限

        在480nm的激發(fā)波長下,測定不同濃度的阿霉素混合體系(pH=6.0,17mmol/L硼酸緩沖液含60%乙醇(v/v)、1.9mmol/L CTAB)。得到標(biāo)準(zhǔn)曲線方程為

        式中:F——體系熒光強(qiáng)度;

        c——阿霉素濃度,ng/mL。

        線性范圍為0.5~120 ng/mL,測得檢出限為0.161ng/mL(3S/N,n=10)。該靈敏度比同類文獻(xiàn)[13]報(bào)道的6.3×10-8mol/L約提高了兩個數(shù)量級。

        2.7 加標(biāo)回收率的測定

        兔血取于市場上健康的家兔,在實(shí)際兔血樣中沒有檢出阿霉素,因此將不同阿霉素加標(biāo)量的兔血樣品進(jìn)行去蛋白處理后,采用如上熒光法進(jìn)行回收率測定試驗(yàn),結(jié)果如表1所示。其回收率在93.7%~105.6%之間,相對標(biāo)準(zhǔn)偏差RSD為1.1%~1.5%,說明該方法具有較高的準(zhǔn)確度。

        表1 加標(biāo)回收率測定結(jié)果(n=5)

        2.8 與高效液相色譜法對比

        藥典[14]中收錄的阿霉素檢測方法為高效液相色譜-紫外檢測法,該方法靈敏度較低,其線性范圍的下限要大于新方法線性范圍的上限,無法很好準(zhǔn)確的進(jìn)行方法對比,因此本工作采用文獻(xiàn)[7]中報(bào)道的高效液相色譜-熒光檢測法(HPLC-FLD)來測定加標(biāo)兔血樣品來對比驗(yàn)證新方法的準(zhǔn)確度。色譜柱為反相Nucleosil C18柱,流動相為甲醇與0.01mol/L磷酸鹽緩沖液的混合液(65∶35,v/v;pH 2.96),流速為2mL/min,檢測的激發(fā)波長與發(fā)射波長分別為480nm和593nm,進(jìn)樣量為20μL。表2中給出了所提新方法及HPLC-FLD法對加標(biāo)兔血樣的測定結(jié)果,證明了新方法可替代HPLC法用于臨床阿霉素含量的快速測定。

        表2 CE及HPLC法測定加標(biāo)兔血樣結(jié)果(n=5)

        3 結(jié)束語

        本文研究了硼酸緩沖液pH值及濃度、有機(jī)溶劑和CTAB濃度等條件對體系熒光強(qiáng)度的影響,建立了兔血清中阿霉素表面活性劑增敏熒光光譜測定方法。結(jié)果顯示,在硼酸緩沖液pH=6.0、濃度為17mmol/L且含 60%乙醇(v/v)、1.9mmol/L CTAB 的條件下,體系熒光強(qiáng)度在0.5~120 ng/mL有良好的線性關(guān)系,且檢測限為0.161ng/mL,測定實(shí)際樣品的相對標(biāo)準(zhǔn)偏差為1.1%~1.5%,回收率在93.7%~105.6%,該法可用于臨床阿霉素含量的快速測定。

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