崔娟娟,郝秀靜,張斯民,侯玉婷,李 敏
(寧夏大學(xué) 生命科學(xué)學(xué)院西部特色生物資源保護(hù)與利用教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,寧夏 銀川750021)
豬支原體肺炎(Mycoplasma Pneumoniae of swine,MPS) 又稱豬喘氣病,是由豬肺炎支原體(Mycoplasma hyopneumoniae,Mhp)引起的一種慢性呼吸道傳染病,以接觸性、高傳染性、高發(fā)病率和低死亡率著稱,普遍存在于世界各地。該病一旦爆發(fā)便難以控制,給養(yǎng)豬業(yè)造成了巨大的經(jīng)濟(jì)損失。為了解決豬肺炎支原體對(duì)養(yǎng)豬業(yè)造成的危害,很多國(guó)家的獸醫(yī)工作者及相關(guān)研究人員對(duì)疫苗做了大量研究。豬支原體肺炎滅活疫苗自20世紀(jì)90年代在美國(guó)注冊(cè)后,大量研究已經(jīng)證實(shí)了支原體疫苗給養(yǎng)豬業(yè)帶來(lái)的經(jīng)濟(jì)效益。目前,豬支原體肺炎疫苗仍被德國(guó)列入標(biāo)準(zhǔn)的免疫程序內(nèi)。本文從豬肺炎支原體的主要免疫原蛋白和疫苗研究?jī)煞矫鎸?duì)豬肺炎支原體的免疫學(xué)研究做一綜述,從而為豬肺炎支原體致病機(jī)理的進(jìn)一步研究及該病的防治提供新思路。
豬肺炎支原體主要有下幾種免疫原:細(xì)胞質(zhì)蛋白(胞內(nèi)具乳酸脫氫酶活性的蛋白p36)、膜蛋白(p46、p65和 p74)、粘附因子(主要為p97、p102、p216、p159、p116、Mhp107、Mhp271七種蛋白)以及核苷酸還原酶。
p36蛋白具有很強(qiáng)的保守性[1]。Strasser等[3]研究顯示,p36蛋白基因在豬肺炎支原體分離菌株中具有很強(qiáng)的保守性而且特異,其具有L乳酸脫氫酶(LDH)活性,并能引起感染豬的早期免疫反應(yīng)。另有研究報(bào)道,p36蛋白與細(xì)菌的LDH同源性很高,并由單順?lè)醋铀幋a。Caron等[1]發(fā)現(xiàn),p36重組蛋白在對(duì)照組與試驗(yàn)組中豬血清中的抗體變化與臨床病理變化之間找不到必然的聯(lián)系,但換用其單克隆抗體卻可以檢測(cè)到豬肺炎支原體。祝永琴等[2]通過(guò)豬肺炎支原體p36基因在畢赤酵母中的表達(dá)研究表明p36蛋白基因在畢赤酵母中獲得表達(dá),而且其反應(yīng)原性是相當(dāng)不錯(cuò)的。這一研究結(jié)果為今后更好的研制基因工程疫苗奠定了基礎(chǔ)。
目前報(bào)道了三種具免疫優(yōu)勢(shì)的膜蛋白:p46、p65和p74。
1.2.1 p46蛋白 p46蛋白也具種屬特異性。Cheikh Saad Bouh等[4]研究證實(shí)p46和p65兩蛋白在種間的保守性和特異性均很高。Frey等[5]制備p46蛋白的單克隆抗體來(lái)檢測(cè)豬肺炎支原體,并取得良好的檢測(cè)效果。遲靈芝等[6]報(bào)道,已成功將豬肺炎支原體p46基因中編碼Trp的密碼子TGA定點(diǎn)突變?yōu)門(mén)GG,這將為p46蛋白基因的進(jìn)一步研究及豬肺炎支原體抗體的檢測(cè)奠定了基礎(chǔ)。
1.2.2 p65蛋白 據(jù)報(bào)道,p65蛋白是Mhp的一個(gè)重要免疫原,C端是其主要的抗原表位區(qū),p65蛋白可誘發(fā)早期的免疫應(yīng)答。Cheikh Saad Bouh等[4]報(bào)道了p65蛋白的種間保守性和特異性很高。Sehmidt等[7]報(bào)道,p65蛋白除了是Mhp關(guān)鍵的具免疫原性的膜蛋白之外,它還是一種解脂酶。如若使p65蛋白在大腸桿菌中成功表達(dá),必須將其序列中的l個(gè)TGA密碼子進(jìn)行定點(diǎn)突變。
1.2.3 p74 蛋白 有研究表明,p74蛋白除了是Mhp高度保守而特異的膜蛋白之外,還是一種熱休克蛋白。目前,只是初步研究了采用其單克隆抗體建立的阻斷ELISA的檢測(cè)方法,對(duì)于其它方面還有待于進(jìn)一步的研究。
Fagan等發(fā)現(xiàn)了一個(gè)跟原核生物NrdF的R2亞基C末端具同源性與Mhp高免血清反應(yīng)的克隆片段,將該片段克隆到沙門(mén)氏菌表達(dá)系統(tǒng)中,可檢測(cè)到分子量大小為15 kD的一個(gè)雜合蛋白,而且其抗血清對(duì)Mhp的生長(zhǎng)具抑制作用。將其制備的活疫苗通過(guò)口服免疫小鼠后,可在小鼠體內(nèi)檢測(cè)到肺部粘膜分泌的IgG和lgA與血清中抗重組NrdF都呈現(xiàn)明顯的上升趨勢(shì)。還發(fā)現(xiàn)只用雜合蛋白去免疫小鼠,結(jié)果檢測(cè)到的IgG量沒(méi)有注射重組蛋白的多。后來(lái),Austen Y Chen等在不同的沙門(mén)氏菌表達(dá)系統(tǒng)中表達(dá)插入的NrdF并比較分析了其免疫效果,雖然都出現(xiàn)了細(xì)胞免疫,但其效果因在表達(dá)系統(tǒng)中所用到的載體不同而各異。
豬肺炎支原體與呼吸道的特異性粘附是引起豬支原體肺炎的首要條件。豬肺炎支原體對(duì)豬呼吸道的黏附是多個(gè)黏附因子共同作用所致,但其黏附機(jī)制還不是很清楚。目前,已報(bào)道了多個(gè)黏附因子,本文主要對(duì)以下幾個(gè)粘附因子做一總結(jié)。
1.4.1 p97蛋白 p97蛋白是最早也是目前研究較為透徹的一個(gè)黏附因子。
有研究顯示, p97的C端是其主要的黏附區(qū)域,該區(qū)域包括R1和R2兩個(gè)重復(fù)序列,而且構(gòu)成R1和R2的重復(fù)單元是不同的,所以其黏附能力也表現(xiàn)出了差異。
Cheryl等[10]在體外對(duì)p97蛋白進(jìn)行了分段表達(dá),發(fā)現(xiàn)p97N端蛋白和C端蛋白都能與肝磷脂黏附。分別對(duì)位于C端蛋白的R1和R2區(qū)分別進(jìn)行表達(dá),發(fā)現(xiàn)R1和R2區(qū)對(duì)肝磷脂的黏附都是不可缺少的。
Faust等[11]研究發(fā)現(xiàn),免疫組豬的肺部病變較未免疫組的有所降低且豬群日增重有所增加。還發(fā)現(xiàn),商品化的疫苗比p97亞單位疫苗產(chǎn)生更全面的免疫保護(hù)。這暗示:除p97蛋白外,在豬肺炎支原體中可能還存在著其它的毒力因子或抗原。
1.4.2 p102蛋白 Minion等[12]的研究相繼表明,在p97基因下游不到30 bp出有一個(gè)可編碼約102 kDa蛋白的ORF,根據(jù)該蛋白的大小將其命名為p102。經(jīng)序列分析發(fā)現(xiàn),p102基因約占基因組全序列的13%,而且至少有4個(gè)拷貝。Adams等[13]研究了p97蛋白和p102蛋白及其旁系同源類(lèi)似物在體內(nèi)的表達(dá)情況,得出:p97和p102兩蛋白以及它們的旁系基因竟位于同一轉(zhuǎn)錄區(qū),而且在被感染的宿主體內(nèi)都檢測(cè)到了這兩種蛋白。有研究推測(cè),p102蛋白對(duì)p97蛋白的黏附具有輔助功能,而且其自身可能也具潛在的吸附纖毛的能力,當(dāng)然,這僅僅是一個(gè)推測(cè),還需進(jìn)一步的驗(yàn)證。郭丹等[14]成功制備了具有免疫優(yōu)勢(shì)的p102蛋白,這一成果為研制新一代疫苗奠定了良好的基礎(chǔ)。
1.4.3 p159蛋白 Tracey等[15]發(fā)現(xiàn)p159蛋白也是豬肺炎支原體表面的一種黏附因子, 該蛋白一經(jīng)表達(dá)后,便裂解為110、52、27 kDa三種蛋白,這三種蛋白在各個(gè)生長(zhǎng)階段的Mhp表面都可檢測(cè)到。其中,p52蛋白在豬肺炎支原體的不同菌株中是相對(duì)保守的,其位于p159蛋白C末端區(qū)域;據(jù)報(bào)道,抗p52的蛋白血清能夠減弱豬肺炎支原體對(duì)真核細(xì)胞的黏附,這說(shuō)明了p159蛋白在黏附真核細(xì)胞過(guò)程中,p52蛋白扮演了重要角色。曹培麗等[16](2009)報(bào)道了p52蛋白能與豬肺炎支原體陽(yáng)性血清發(fā)生特異性反應(yīng),由此說(shuō)明p52蛋白有相當(dāng)不錯(cuò)的反應(yīng)原性;p52蛋白是p159蛋白中的關(guān)鍵水解蛋白。對(duì)于p27蛋白而言,只知道它存在于p159蛋白的N端,具體功能還未見(jiàn)報(bào)道。另有研究表明,對(duì)于處于自然結(jié)構(gòu)的p110蛋白,它能夠阻止豬肺炎支原體對(duì)豬氣管上皮細(xì)胞提取物的黏附。
1.4.4 p216蛋白 Jody等[17]發(fā)現(xiàn)了由Mhp 493編碼的一個(gè)p97蛋白的同源類(lèi)似物,并將該同源類(lèi)似物命名為p216蛋白。該蛋白可裂解為120和85 kDa的兩種蛋白,這兩種蛋白都是能與肝磷脂結(jié)合的蛋白質(zhì)。經(jīng)胰酶消化試驗(yàn)證實(shí)了這兩種蛋白都存在于細(xì)胞表面。他們對(duì)p216蛋白在體外進(jìn)行分段表達(dá)試驗(yàn)結(jié)果中得出:蛋白的每段都能粘附并進(jìn)入PK15細(xì)胞。p216蛋白是目前報(bào)道的唯一一個(gè)無(wú)R1纖毛結(jié)合區(qū)卻可以與肝磷脂結(jié)合的蛋白。
1.4.5 p116蛋白 Lisa等[18]也發(fā)現(xiàn)了由Mhp108編碼的一個(gè)p102蛋白的同源類(lèi)似物,該同源類(lèi)似物便是p116蛋白。在p102蛋白家族中,p116蛋白也是第一個(gè)發(fā)現(xiàn)的能夠黏附豬呼吸道和pK15細(xì)胞的黏附因子。而且p116蛋白也是首次報(bào)道的可與纖溶酶原相結(jié)合的黏附因子。據(jù)報(bào)道,p116蛋白是豬肺炎支原體關(guān)鍵的黏附因子和毒力因子,這為豬肺炎支原體的致病機(jī)理提供了有力的依據(jù)。
1.4.6 Mhp271蛋白 Ania等[19]報(bào)道了p97蛋白的另一個(gè)同源類(lèi)似物,即Mhp271蛋白,其分子量大小約為118 kDa。Mhp271蛋白是目前報(bào)道的包括p97蛋白在內(nèi)的,具有R1和R2兩個(gè)區(qū)域的蛋白。為了探究Mhp271蛋白的功能,有關(guān)研究顯示:豬肺炎支原體黏附過(guò)程中,Mhp271蛋白的R1區(qū)和R2區(qū)都是不可或缺的。
1.4.7 Mhp107蛋白 Lisa等[20]發(fā)現(xiàn)繼Jody、Ania等報(bào)道后第三個(gè)p97蛋白的同源類(lèi)似物,即Mhp107蛋白。Lisa等人的研究顯示:Mhp107蛋白存在于細(xì)胞膜;可以與纖溶酶原、纖連蛋白和肝磷脂相結(jié)合發(fā)揮其功能;能夠黏附PK15細(xì)胞和豬的呼吸道。這意味著Mhp107蛋白是多功能的,而且還是豬肺炎支原體的一個(gè)關(guān)鍵的毒力因子和黏附因子。
根據(jù)上述7種主要黏附因子的介紹,可總結(jié)出:(1) p116蛋白和Mhp107蛋白可作為今后亞單位疫苗的候選者。(2)p116、Mhp271和Mhp107三種蛋白黏附宿主細(xì)胞的特性為豬肺炎支原體感染宿主細(xì)胞的粘附機(jī)理提供了可參考的價(jià)值[21-22]。除此之外,也為其他病原微生物黏附至細(xì)胞外基質(zhì)上的纖連蛋白提供了依據(jù)[20]。(3)具有肝磷脂黏附區(qū)域的四種黏附因子(p97、p159、p216、Mhp271和Mhp107蛋白)對(duì)細(xì)胞的黏附表明:豬肺炎支原體在黏附過(guò)程中,肝磷脂扮演了重要角色,這也為研究致病機(jī)制及制備豬肺炎支原體疫苗提供了新思路。
目前報(bào)道的豬肺炎支原體疫苗主要有:滅活疫苗、弱毒疫苗和基因工程疫苗。
豬支原體肺炎滅活疫苗主要激發(fā)機(jī)體的體液免疫[21]。Villarreal等[22]報(bào)道了滅活疫苗主要激發(fā)機(jī)體的體液免疫。但Procajlo等[23]已報(bào)道,滅活疫苗中若加入相應(yīng)的佐劑便能引發(fā)機(jī)體的細(xì)胞免疫。Vranckx等[24]報(bào)道,對(duì)于經(jīng)強(qiáng)豬肺炎支原體毒株感染后支氣管相關(guān)淋巴組織內(nèi)巨噬細(xì)胞的浸潤(rùn)能力可被輝瑞公司生產(chǎn)的Mhp滅活疫苗降低。但Kick等[25]報(bào)道,滅活疫苗能夠產(chǎn)生的細(xì)胞免疫能力是相當(dāng)有限的。同年,Regia Silva Sousa 等[26]報(bào)道,Mhp疫苗可發(fā)生細(xì)胞免疫,但其免疫效果因豬的品種而異。Tzivara等[27]對(duì)兩個(gè)豬場(chǎng)的豬進(jìn)行了Mhp滅活疫苗的治療效果的試驗(yàn),得出的結(jié)論是:免疫豬雖沒(méi)表現(xiàn)出臨床癥狀,但體重均有所增加。Reynolds等[28]報(bào)道,在滅活疫苗中加入礦物油卵磷脂類(lèi)佐劑其免疫效果良好。但Reynolds等[29]報(bào)道,某些情況下,滅火疫苗的成本要比豬肺炎支原體感染造成的損失更大,考慮到經(jīng)濟(jì)效益,是否選擇滅活疫苗各個(gè)豬場(chǎng)要視其具體情況而定。
目前投入生產(chǎn)并廣泛使用的Mhp弱毒活疫苗為Mhp168弱毒株,研究均表明其經(jīng)肺內(nèi)注射后可突破母源抗體屏障。Feng等[30]報(bào)道,Mhp弱毒活疫苗經(jīng)肺內(nèi)注射后,其能突破母源抗體的影響并引發(fā)機(jī)體產(chǎn)生局部粘膜及細(xì)胞免疫。Li等[31]報(bào)道,添加佐劑的Mhp弱毒活疫苗可有效增加體液、細(xì)胞及粘膜免異的效果。
最新研究顯示,占位效應(yīng)被認(rèn)為是弱毒活疫苗獨(dú)特的免疫機(jī)制之一。周勇岐等[34]報(bào)道,Mhp弱毒活疫苗經(jīng)肺內(nèi)注射后,疫苗可占據(jù)肺泡表面所有可占用的空間,若此時(shí),豬再次感染Mhp野毒株,肺泡表面已無(wú)空位可占,從而降低了豬肺炎支原體肺炎發(fā)生的概率。劉茂軍等[35]用Mhp弱毒株對(duì)豬場(chǎng)的7000多頭豬進(jìn)行了臨床試驗(yàn),結(jié)果發(fā)現(xiàn)其免疫效果很顯著。王曉陽(yáng)等[32]研究規(guī)模豬場(chǎng)偽狂犬弱毒疫苗滴鼻免疫的效果時(shí)發(fā)現(xiàn),弱毒疫苗菌株可通過(guò)占位效應(yīng)來(lái)阻止野毒的感染。
因豬肺炎支原體存在的密碼子跟通用密碼子有出入,使得豬肺炎支原體抗原蛋白在其他物種中難以表達(dá),如若想在大腸桿菌系統(tǒng)中表達(dá)豬肺炎支原體抗原蛋白,就必須成功定點(diǎn)突變TGA為T(mén)GG才可行,所以生產(chǎn)疫苗便遇到了瓶頸。雖然如此,基因工程疫苗研究已有部分突破。
2.3.1 核苷酸還原酶(NrdF)的R2亞基重組疫苗[8]前面提過(guò)到了核甘酸環(huán)酶的一些特性,這里將簡(jiǎn)單介紹下,它在疫苗方面的應(yīng)用及發(fā)展的狀況。Fagan等發(fā)現(xiàn)了一個(gè)跟原核生物NrdF的R2亞基C末端具同源性與Mhp高免血清反應(yīng)的克隆片段,將該片段克隆到沙門(mén)氏菌表達(dá)系統(tǒng)中,可檢測(cè)到分子量大小為15 kD的一個(gè)雜合蛋白,而且其抗血清對(duì)Mhp的生長(zhǎng)具抑制作用。將其制備的活疫苗通過(guò)口服免疫小鼠后,可在小鼠體內(nèi)檢測(cè)到肺部粘膜分泌的IgG和lgA與血清中抗重組NrdF都呈現(xiàn)明顯的上升趨勢(shì)。還發(fā)現(xiàn)只用雜合蛋白去免疫小鼠,結(jié)果檢測(cè)到的IgG量沒(méi)有注射重組蛋白的多。后來(lái),Austen等在不同的沙門(mén)氏菌表達(dá)系統(tǒng)中表達(dá)插入的NrdF并比較分析了其免疫效果,雖然都出現(xiàn)了細(xì)胞免疫,但其效果因在表達(dá)系統(tǒng)中所用到的載體不同而各異。
2.3.2 表達(dá)文庫(kù)免疫 所謂的表達(dá)文庫(kù)免疫是指從豬肺炎支原體表達(dá)文庫(kù)中篩選能表達(dá)豬肺炎支原體抗原的克隆制備抗原并免疫動(dòng)物。研究報(bào)道,由經(jīng)過(guò)改造的大腸桿菌質(zhì)粒表達(dá)載體建立的豬肺炎支原體的表達(dá)文庫(kù),其保護(hù)效果良好。對(duì)于表達(dá)文庫(kù)免疫的其他相關(guān)研究目前還未見(jiàn)報(bào)到,我們期待有更好的新發(fā)現(xiàn)。
2.3.3 粘附因子相關(guān)疫苗 研究報(bào)道,通過(guò)粘附因子與其他菌融合而制備的亞單位疫苗對(duì)動(dòng)物的免疫效果相對(duì)良好。Okamba等[36]報(bào)道將rAdp97C以肌注和滴鼻兩種方式來(lái)免疫小鼠,結(jié)果發(fā)現(xiàn)其免疫效果很顯著。王亮等也證實(shí)Dnak-p97可刺激小鼠產(chǎn)生針對(duì)p97的抗體。
2.3.4 DNA疫苗 目前,對(duì)DNA疫苗的研究相對(duì)來(lái)說(shuō)很少,Chen等[37]報(bào)道,通過(guò)構(gòu)建DNA疫苗(pcDNA3/p42)并使其免疫小鼠,結(jié)果檢測(cè)到IgGI、IgG2a、mRNA、IL-4、IL-2和IFN-γ在小鼠體內(nèi)均呈上升趨勢(shì),還檢測(cè)到脾細(xì)胞的增殖能力也大大加強(qiáng)了。
2.3.5 肽疫苗 肽疫苗作為新近發(fā)展起來(lái)的疫苗,它有傳統(tǒng)疫苗不可比擬的優(yōu)勢(shì),如其抗原成分簡(jiǎn)單,毒力不易恢復(fù)等等,但對(duì)其的研究報(bào)道目前還不多見(jiàn)。最新的研究報(bào)道顯示,在肽疫苗的設(shè)計(jì)方面,噬菌體肽庫(kù)的構(gòu)建及篩選技術(shù)具有巨大的潛力,希望經(jīng)篩選到的噬菌體抗原決定簇成為一種肽疫苗,當(dāng)然,這需要進(jìn)一步的功能實(shí)驗(yàn)研究。
豬支原體肺炎在世界范圍內(nèi)廣泛存在,它具有發(fā)病率高、死亡率低的特點(diǎn),該病一旦在豬場(chǎng)爆發(fā)便很難對(duì)其控制,給養(yǎng)豬業(yè)造成巨大的經(jīng)濟(jì)損失,我國(guó)也不例外。所以,研究它的致病機(jī)理找出有效的預(yù)防和控制該疾病的方法已成為當(dāng)務(wù)之急。
以目前報(bào)道的豬肺炎支原體的主要免疫原蛋白的免疫機(jī)理及疫苗發(fā)展的狀況出發(fā),今后應(yīng)從以下方面著手:第一,發(fā)展高效的滅活疫苗和相應(yīng)的免疫增效佐劑。就豬支原體肺炎滅活疫苗而言,首先,母源抗體對(duì)其有較大的影響,在使用時(shí)我們應(yīng)采取相應(yīng)的措施來(lái)避開(kāi)這一影響。其次,如何生產(chǎn)具有高純度和高滴度的滅活疫苗是目前頗為關(guān)注的問(wèn)題,而且也是國(guó)際支原體組織在2012年大會(huì)上的五項(xiàng)主要議題之一。Villarreal等[38]與Chae[39]的最新研究表明,滅活疫苗并不能阻止野毒的感染。所以,我們要對(duì)豬支原體肺炎滅活疫苗進(jìn)行優(yōu)化:(1)選擇高效而低毒的免疫增效佐劑來(lái)激發(fā)機(jī)體的細(xì)胞免疫并盡可能的減少免疫應(yīng)激。(2)改善現(xiàn)有的生產(chǎn)工藝以得到高純度和高滴度的抗原。(3)具良好的免疫原性應(yīng)作為篩選菌株或者抗原最低標(biāo)準(zhǔn)。Simionatto等[40]對(duì)34個(gè)Mhp重組蛋白的免疫原性研究的結(jié)果為今后研發(fā)更高效的Mhp疫苗提供了可靠的依據(jù)。
第二,在現(xiàn)有基礎(chǔ)上繼續(xù)開(kāi)發(fā)弱毒疫苗。為保證其高效免疫,我們可采取以下三項(xiàng)免疫措施:(1)使用弱毒活疫苗時(shí),我們應(yīng)采取早期免疫方式以保證弱毒疫苗的有效活力。(2)考慮到操作繁瑣這一問(wèn)題,我們可采用肺內(nèi)免疫的途徑,而且效率也高。(3)考慮到豬場(chǎng)還有其他疾病存在,在使用疫苗的同時(shí)還要使用各種抗生素,所以我們應(yīng)選擇肺炎支原體非敏感抗生素,以免降低其免疫效果。
第三,基因工程疫苗的研究相對(duì)來(lái)說(shuō)較緩慢,應(yīng)加大力度研制出更為高效實(shí)用的基因工程疫苗也是今后制備疫苗的一個(gè)重要措施。
參考文獻(xiàn):
[1] Caron J, Sawyer N, Ben Abdel Moumen B, et al. Species-specific monoclonal antibodies to Escherichia coli-expressed p36 cytosolic protein of Mycoplasma hyopneumoniae[J]. Clin Diagn Lab Immunol,2000, 7(4):528-535.
[2] 祝永琴, 劉茂軍, 馮志新, 等. 豬肺炎支原體p36基因在畢赤酵母中的表達(dá)[J].江蘇農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào), 2011, 27(2):307-312.
[3] Strasser M, A Biven P, Kobisch M, et al. Immunological and pathological reactions in piglets experimentally infected with Mycoplasma hyopneumoniae and Mycoplasma flocculare[J]. Veterinary Immunology and Immunopathology, 1992, 31:141-153.
[4] Cheikh Saad Bouh K, Shareck F,Dea S. Monoclonal antibodies to Escherichia coli-expressed P46 and P65 membranous proteins for specific immunodetection of Mycoplasma hyopneumoniae in lungs of infected pigs[J]. Clin Diagn Lab Immunol, 2003, 10(3):459-468.
[5] Frey J, Haldimann A,Nicolet J.Chromosomal heterogeneity of various Mycoplasma hyopneumoniae field strains[J]. Int J Syst Bacteriol,2005,42(2),275-280.
[6] 遲靈芝, 徐 斌, 遲學(xué)芝. 豬肺炎支原體p46基因的突變及序列分析[J]. 現(xiàn)代生物醫(yī)學(xué)進(jìn)展, 2010, 10(16): 15-18.
[7] Sehmidt J A, Browning G F, Markham P F. Mycoplasma hyopneumoniae p65 surface lipoprotein is a lipolytic enzyme with a preference for shorter-chain fatty acids[J]. J Bacteriology,2004,186(17):5 790-5 798.
[8] 馬豐英.豬支原體肺炎新型疫苗及其單克隆抗體的制備與應(yīng)用[D].湖北武漢:華中農(nóng)業(yè)科技大學(xué), 2011.
[9] 杜海霞,劉茂軍,邵國(guó)青,等.豬肺炎支原體及其他支原體黏附因子的研究進(jìn)展[J].現(xiàn)代生物醫(yī)學(xué)進(jìn)展,2012,12(5):983-897.
[10] Cheryl J, Jody LW, Minion FC, et al. Two Domains within the Mycoplasma hyopneumoniae cilium adhesin bind heparin[J].Infection and Immunity,2006,70(1):481-487.
[11] Faust R O, MaximilienA, NedzadM, et al. Potential use of a recombinant replication-defective adenovirus vector carrying the C-terminal portion of the p97 adhesin protein as a vaccine against Mycoplasma hyopneumoniae in swine[J].Vaccine,2010,28:4 802-4 809.
[12] Minion F C,Lefkowitz E J,Madsen M L,et al.The genome sequence of Mycoplasma hyopneumoniae strain 232,the agent of swine mycoplasmosis[J].Bacteriol,2004,186(10):7 123-7 133.
[13] Adams C, Pitzer J, Minion F C. In vivo expression analysis of the p97 and p102 paralogfamilie of Mycoplasma hyopneumoniae[J]. Infection and Immunity,2005,73:7 784-7 787.
[14] 郭 丹,陳紅漫,李 媛,等.豬肺炎支原體p102基因C末端序列的克隆及原核表達(dá)[J].黑龍江畜牧獸醫(yī),2009(3):11-13.
[15] Tracey AB, Katrin D, Manfred R, et al. p159 is a proteolytically processed, surface adhesin of Mycoplasma hyopneumoniae:defined domains of p159 bind heparin and promote adherence to eukaryote cells[J].Molecular Microbiology,2006,60(3):669-686.
[16] 曹培麗,李 媛,陳 超,等.豬肺炎支原體p52蛋白的原核表達(dá)及抗血清制備[J].中國(guó)預(yù)防獸醫(yī)學(xué)報(bào),2009,31(7):572-576.
[17] Jody W, Cheryl J, Stuart JC, et al. Mhp493(p216) is a proteolytically processed, cilium and heparin binding protein of Mycoplasma hyopneumoniae[J]. Molecular Microbiology,2009,71(3):566-582.
[18] Lisa M S, Ania T D, Cheryl J, et al. A Processed multidomain mycoplasma hyopneumoniae adhesin binds fibronectin,plasminogen, and swine respiratory cilia[J].The American Society for Biochemistry and Molecular Biology,2010,285:33 971-33 978.
[19] Ania T D, Cheryl J, Minion F C, et al. Repeat regions R1 and R2 in the p97 paralogue Mhp271 of Mycoplasma hyopneumoniae bind heparin, fibronectin and porcineciliammi[J]. Molecular Microbiology, 2010, 78(2):444-458.
[20] Lisa M S, Linda F, Ania T D, et al.Mhp107 is a member of the multifunctional adhesin family of Mycoplasma hyopneumoniae[J].The American Society for Biochemistry and Molecular Biology,2011,286:10 097-10 104.
[21] Sibila M, Bernal R, Torrents D, et al. Effect of sow vaccination against Mycoplasma hyopneumoniae on sow and piglet colonization and seroconversion, and pig lung lesions at slaughter [J].Vet Microbiol,2008,127(1/2):165-170.
[22] Villarreal I, Vranckx K, Calus D,et al. Effect of challenge of pigs previously immunised with inactivated vaccines containing homologous and heterologous Mycoplasma hyopneumoniae strains[J]. BMC Vet Res, 2012,8:2.
[23] Procajlo Z, Srzweda W, Siwicki A K, et al. Indices of nonspecific and specific humoral immunity in pigs immunomodulated with the bioimmuno preparation and/or immunised with the respisure one vaccine against mycoplasmal pneumonia of swine[J]. Pol J Vet Sci,2010,13(3):447-455.
[24] Vranckx K, Maes D, Marchioro S B, et al. Vaccination reduces macrophage infiltration in bronchus-associated lymphoid tissue in pigs infected with a highly virulent Mycoplasma hyopneumoniae strain[J]. BMC Vet Res, 2012, 8:24.
[25] Kick A R, Tompkins M B, Hammer J M, et al. Evaluation of peripheral lymphocytes after weaning and vaccination for Mycoplasma hyopneumoniae[J]. Res Vet Sci, 2011,91(3):e68-72.
[26] Regia Silva Sousa K, Mauric Frossard Ribeiro A, Roberto Nunes Goes P,et al.Toll-Like Receptor 6 differential expression in two pig genetic groups vaccinated against Mycoplasma hyopneumoniae[J]. BMC Proc,2011,5(S4):9.
[27] Tzivara A, Kritas S K, Bourriel A R, et al. Efficacy of an inactivated aqueous vaccine for the control of enzootic pneumonia in pigs infected with Mycoplasma hyopneumoniae[J].Vet Rec, 2007, 160(7):225-229.
[28] Reynolds S C, St Aubin L B, Sabbadini L G, et al. Reduced lung lesions in pigs challenged 25 weeks after the administration of a single dose of Mycoplasma hyopneumoniae vaccine at approximately 1 week of age[J]. Vet J, 2009, 181(3):312-320.
[29] David G. Cost of disease-enzootic pneumonia[EB/OL].[2013-01-10].http://www. octagon-services. co. uk/articles/EP. htm.
[30] Feng Z X, Shao G Q, Liu M J, et al. Immune responses to the attenuated Mycoplasma hyopneumoniae 168 strain vaccine by intrapulmonic immunization in piglets[J]. Agricultural Sciences in China, 2010, 9(3):423-431.
[31] Li Y, Li P, Wang X, Yu Q, et al. Co-administration of attenuated Mycoplasma hyopneumoniae 168 strain with bacterial DNA enhances the local and systemic immune response after intranasal vaccination in pigs[J]. Vaccine, 2012,30(12):2 153-2 158.
[32] 王曉陽(yáng), 金明升, 余旭平. 規(guī)模豬場(chǎng)偽狂犬弱毒疫苗滴鼻免疫的效果[J]. 浙江農(nóng)業(yè)科學(xué),2012(4):579-581.
[33] 衛(wèi)秀余, 沈 強(qiáng), 金愛(ài)華, 等. 偽狂犬病基因缺失疫苗滴鼻免疫試驗(yàn)[J]. 養(yǎng)豬, 2010(4):52-53.
[34] 周勇岐, 趙永前. 豬支原體肺炎(168株)活疫苗的作用機(jī)理與應(yīng)用[J]. 中國(guó)牧業(yè)通訊, 2008(10):49-52.
[35] 劉茂軍, 苗連葉, 趙永前, 等. 豬支原體肺炎活疫苗(168株)臨床試驗(yàn)[J].畜牧與獸醫(yī), 2009,41(8):93-95.
[36] Okamba F R, Moreau E, Cheikh Saad Bouh K, et al. Immune responses induced by replieation-defective adenovirus expressing the C-tenninal portion of the Mycoplasma hyopneumoniae p97 adhesin[J]. Clin Vaccine Immunol,2007,14(6):767-774.
[37] Chen Y L, Wang S N, Yang W J, et al. Expression and immumogenieity of Mycoplasma hyopneumoniae heat shock protein antigen p42 by DNA vaceination[J].Infect Immun,2003,71(3):1 155-1 160.
[38] Villarreal I, Meyns T, Dewulf J, et al. The effect of vaccination on the transmission of Mycoplasma hyopneumoniae in pigs under field conditions[J].Vet J, 2011, 188(1):48-52.
[39] Chae C. Vaccinating pigs against Mycoplasma hyopneumoniae infection:Failure to prevent transmission[J].Vet J, 2011, 188(1):7-8.
[40] Simionatto S, Marchioro S B, Galli V, et al. Immunological characterization of Mycoplasma hyopneumoniae recombinant proteins[J]. Comp Immunol Microbiol Infect Dis, 2012, 35(2):209-216.