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        響應(yīng)面法優(yōu)化馬血中S O D超聲波提取工藝研究

        2013-04-06 18:33:20熱孜耶喀日米麗班霍家艾合買提熱合滿艾拉許銘強
        食品工業(yè)科技 2013年2期
        關(guān)鍵詞:超氧化物超聲波活力

        熱孜耶·喀日,米麗班·霍家艾合買提,熱合滿·艾拉,許銘強

        (新疆農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)與藥學(xué)學(xué)院,新疆烏魯木齊830052)

        超氧化物歧化酶(SOD)是廣泛存在于生物體內(nèi)的一類金屬酶[1],它能催化超氧陰離子自由基發(fā)生歧化反應(yīng),從而能有效清除機體內(nèi)超氧陰離子自由基,是生物體重要的細(xì)胞防御系統(tǒng)之一[2],有抗氧化、抗衰老、抗腫瘤、抗輻射和消炎作用[3]。SOD主要存在于血細(xì)胞中,因此要提取SOD,必須使細(xì)胞膜破碎,通常使用的方法有:溶脹法[4]、機械破碎法、酶溶法、有機溶劑法。目前,SOD用于延緩人體衰老,防止色素沉著,并治療慢性多發(fā)性關(guān)節(jié)炎等癥,也被廣泛地應(yīng)用于生產(chǎn)日用化工品,如SOD化妝護(hù)膚品,對抗衰老、去除臉面雀斑等有明顯的效果。隨著日用化工產(chǎn)品的發(fā)展及SOD在臨床上的應(yīng)用,SOD的需求量越來越大[5]。我國是一個傳統(tǒng)養(yǎng)馬大國,有15個地方品種和11個培育品種,約占世界馬品種的十分之一。目前,存欄馬匹達(dá)到790萬匹,居世界之首[6]。馬血是一種寶貴的蛋白質(zhì)資源,具有很高的藥用價值,但對其提取方面的系統(tǒng)研究還很少。目前,一般從動物血中提取SOD的工藝多為正交設(shè)計,但此方法精確度不高,且不能考慮因素之間的交互作用。響應(yīng)面分析法是一種優(yōu)化工藝條件的高效方法,可確定各因素及其交互作用在工藝過程中對指標(biāo)(響應(yīng)值)的影響,精確地反映因素與響應(yīng)值之間的關(guān)系[7]。本研究從食品安全的角度考慮,以響應(yīng)面方法優(yōu)化超聲波提取馬血中SOD,考察超聲條件對提取SOD比活力的影響,以期對動物血資源的綜合開發(fā)利用奠定基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1.1 材料與儀器

        馬血 華菱屠宰場;檸檬酸三鈉、氯化鈉、鄰苯三酚、鹽酸、乙二胺四乙酸二鈉(EDTA)、考馬斯亮藍(lán)G-250、牛血清蛋白、乙醇 以上皆是分析純。

        HH-54數(shù)顯恒溫水浴鍋 金壇市醫(yī)療儀器廠;KQ-250DE型數(shù)控超聲波清洗器 昆山市超聲儀器有限公司;TD5A-WS臺式低速離心機 長沙湘儀離心機儀器有限公司;TU-1810紫外可見分光光度計北京普析通用儀器有限責(zé)任公司;PL203電子天平 梅特勒托利儀器有限公司;DZKW-D-2型電熱恒溫水浴鍋 北京市光明醫(yī)療儀器廠。

        1.2 實驗方法

        1.2.1 紅細(xì)胞的制備 取新鮮馬血與0.38%檸檬酸三鈉體積比為1∶7的溶液,攪拌均勻,以3000r/min的速度離心15min,除去血漿,收集紅細(xì)胞,用2倍體積的0.9%NaCl溶液洗滌3次,在-15℃條件下保存?zhèn)溆谩?/p>

        1.2.2 響應(yīng)面法優(yōu)化提取條件 為了優(yōu)化超聲波提取工藝條件,選取超聲時間、超聲功率、超聲溫度做單因素實驗;在單因素實驗的基礎(chǔ)上,根據(jù)Box-Behnken中心組合實驗設(shè)計原理,采用三因素三水平的響應(yīng)面分析法進(jìn)行實驗設(shè)計,確定馬血中SOD超聲波提取的最佳工藝條件,實驗因素與水平見表1。

        1.2.3 蛋白質(zhì)含量測定[8]考馬斯亮藍(lán)G-250法測定蛋白質(zhì)含量。

        1.2.4 SOD活性測定[9]鄰苯三酚自氧化法測定SOD活性。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 單因素實驗結(jié)果

        2.1.1 超聲時間對SOD提取的影響 準(zhǔn)確取15mL自然解凍的紅細(xì)胞置于試管中,加入以3∶1的蒸餾水,攪拌15min后,在超聲功率200W,溫度40℃條件下分別處理5、10、15、20、25min,測定蛋白質(zhì)的濃度和酶的活性。重復(fù)三次實驗,確定合適的超聲時間,結(jié)果見圖1。

        由圖1可知,隨著超聲時間的延長,SOD比活力也增加,當(dāng)超聲時間為15min時,提取液中SOD比活力為76.1U/mg。繼續(xù)延長超聲時間,SOD比活力隨之降低,這可能是由于超聲波的高強度機械作用和空化作用使SOD變性失活,因此,確定最佳超聲時間為15min。

        2.1.2 超聲功率對SOD提取的影響 準(zhǔn)確取15mL自然解凍的紅細(xì)胞置于試管中,加入以3∶1的蒸餾水,攪拌15min后,在超聲功率分別為:160、180、200、220、240W溫度40℃條件下處理15min,測蛋白質(zhì)的濃度和酶的活性,結(jié)果見圖2。

        通常超聲功率越高,越容易獲得較大的聲強,但超聲功率對SOD比活力的影響不能一概而論,而要考慮超聲波與介質(zhì)相互作用的程度和提取物的性質(zhì)。由圖2可知,隨著超聲功率的增加,SOD比活力不斷增加,當(dāng)超聲功率在220W時,提取液中SOD比活力為81.1U/mg;而繼續(xù)增加超聲功率,SOD比活力隨之降低,因此,選擇超聲功率為220W。

        2.1.3 超聲溫度對SOD提取的影響 準(zhǔn)確取15mL自然解凍的紅細(xì)胞置于試管中,加入以3∶1的蒸餾水,攪拌15min后,在超聲功率220W,超聲溫度分別為:15、30、45、60、75℃下分別處理15min,測蛋白質(zhì)的濃度和酶的活性,結(jié)果見圖3。

        從圖3可知,超聲溫度在30℃時,SOD比活力為78.2U/mg,高于30℃后SOD比活力緩慢下降,因為溫度高,細(xì)胞膜在未破碎、SOD未溶出時,細(xì)胞已經(jīng)變性,導(dǎo)致了溶液中SOD含量下降,比活力降低,另外,高溫也會導(dǎo)致SOD變性,從而使SOD的比活力降低。

        2.2 以SOD比活力為響應(yīng)值的響應(yīng)面實驗

        利用統(tǒng)計分析Design-Expert軟件進(jìn)行Box-Behnken實驗,結(jié)果見表2。

        2.2.1 數(shù)學(xué)模型的建立[10]根據(jù)表2所得的實驗數(shù)據(jù),采用響應(yīng)面統(tǒng)計方法對實驗數(shù)據(jù)擬合,建立SOD比活力與超聲時間、超聲功率、超聲溫度三因子的二次多項數(shù)學(xué)回歸方程:

        回歸模型方差分析見表3,模型的p=0.0003<0.01,說明對馬血中SOD建立的回歸模型是極顯著的,失擬項p=0.0971>0.05不顯著,相關(guān)系數(shù)R2=0.9639,表示模型的擬合度良好,實驗誤差較小。三因素對SOD比活力的影響順序為:超聲溫度>超聲時間>超聲功率。因此可以選用此模型對SOD的超聲波提取工藝進(jìn)行分析和預(yù)測,能確定所得到的二次回歸方程模型是合適的。

        2.2.2 響應(yīng)面分析與優(yōu)化 圖4是以SOD比活力為響應(yīng)值的響應(yīng)曲面圖,通過對相應(yīng)的等高線及響應(yīng)曲面分析,由Design-Expert軟件給出響應(yīng)圖的預(yù)測值,SOD比活力78.3739U/mg,其對應(yīng)的工藝參數(shù)是:超聲時間15.02min、超聲功率220.17W、超聲溫度30.56℃。

        對回歸模型進(jìn)行數(shù)學(xué)分析,交互項AC對SOD比活力的影響顯著。隨著超聲時間和超聲溫度的上升,SOD比活力呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢。

        在模型給出的條件下,按實際條件確定:超聲時間15min、超聲功率220W、超聲溫度31℃,在此條件下做3組平行實驗,以檢驗?zāi)P偷臏?zhǔn)確性。所得的SOD比活力分別為77.5、76.9、78.1U/mg,平均值為77.5U/mg。驗證值77.5U/mg和預(yù)測值78.3739U/mg非常接近,說明回歸方程可以較真實的反映各篩選因素的影響,建立的模型與實際情況比較吻合,再次證明該回歸模型的可行性。

        3 結(jié)論

        采用超聲波萃取法從馬血中提取SOD,利用實驗設(shè)計軟件Design-Expert,通過響應(yīng)面分析法建立馬血SOD超聲波提取工藝的數(shù)學(xué)回歸模型,并對各因子對SOD比活力的影響進(jìn)行了分析,得出影響馬血SOD提取的各因素順序依次為:超聲溫度>超聲時間>超聲功率;馬血SOD超聲波提取工藝的最佳參數(shù)為:超聲時間15min、超聲功率220W、超聲溫度31℃,在此條件下,SOD比活力為77.5U/mg。

        [1]張良,薛剛,張彩瑩,等.牛血銅鋅超氧化物歧化酶分離提取新工藝[J].食品科學(xué),2004,25(8):121-123.

        [2]徐桂花,于穎.羊血中超氧化物岐化酶(SOD)活性的測定[J].肉類工業(yè),2009(1):31-33.

        [3]于穎,王小麗,徐桂花.響應(yīng)面分析法優(yōu)化羊血中SOD的熱變性提純工藝條件[J].肉類研究,2009(11):25-30.

        [4]邱玉華,楊艷芳,何穎,等.等電點沉淀一超濾提取豬血SOD[J].科技資訊,2008,14:23.

        [5]金應(yīng)世,金曉玲.從動物血液提取SOD的工藝流程及技術(shù)[J].中國資源綜合利用,2000(11):13-14.

        [6]韓國才.我國馬業(yè)的新趨勢[J].中國動物保健,2005(10):26.

        [7]鄧?yán)?,劉章武,杜金?響應(yīng)面法優(yōu)化鵝血中SOD熱變性提純工藝條件[J].食品工業(yè)科技,2011(7):270-273.

        [8]烏云達(dá)來,孫振鈞,王沖,等.牛血銅鋅超氧化物岐化酶規(guī)?;a(chǎn)工藝研究[J].家畜生態(tài)學(xué)報,2006,27(5):46-52.

        [9]許雅娟,趙艷景,胡虹,等.鄰苯三酚自氧化法測定超氧化物歧化酶活性的研究[J].西南民族大學(xué)學(xué)報,2006,32(6):1207-1209.

        [10]DouglasCMontgomery,等.DesignandAnalysisofExperiments[M].傅玨生譯.6th Edition.北京:人民郵電出版社,2009,347-389.

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