徐佳 向志雄 劉海燕
(上海醫(yī)藥集團(tuán)股份有限公司中央研究院 上海 201203)
類風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎(RA)是一種常見且頑固的慢性全身性自身免疫系統(tǒng)疾病,多數(shù)免疫抑制劑對(duì)機(jī)體免疫系統(tǒng)的作用缺乏特異性和選擇性,毒副作用大,限制了其廣泛使用[1-2]。(5R)-5-羥基雷公藤內(nèi)酯醇(簡(jiǎn)稱T8)是我院正在開發(fā)的用于治療類風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎的一類創(chuàng)新藥物,與其先導(dǎo)化合物雷公藤內(nèi)酯醇相比,具有更強(qiáng)的成藥性[3]。該化合物目前已經(jīng)進(jìn)入I期臨床研究階段,需要評(píng)價(jià)其藥物-藥物相互作用的可能性。
P-gp是由多藥耐藥1基因(mdr1)編碼的ATP依賴性膜蛋白,作為藥物泵出轉(zhuǎn)運(yùn)子的P-gp可在許多組織中表達(dá),是某些藥物的生物利用度低下和產(chǎn)生藥物-藥物相互作用或藥物-食物相互作用的原因[4-7]。P-gp分子上有多個(gè)藥物結(jié)合位點(diǎn),故其底物范圍非常廣泛。由于P-gp底物和分布的廣泛性,在合用藥物時(shí),可能發(fā)生競(jìng)爭(zhēng)性或非競(jìng)爭(zhēng)性的藥物相互作用,影響藥動(dòng)學(xué)過程,引起臨床療效的改變或產(chǎn)生毒性[8-9]。美國食品和藥品管理局(FDA)規(guī)定須從藥物代謝動(dòng)力學(xué)角度評(píng)價(jià)化合物是否是P-gp的底物或抑制劑[10]。
人類mdr1基因轉(zhuǎn)染犬腎上皮細(xì)胞系MDCK(Madin-Daby canine kidney)后形成 MDCK-MDR1細(xì)胞系,融合后形成不規(guī)則的多層細(xì)胞膜,P-gp 在上層細(xì)胞膜上高表達(dá),專一性地用來判斷藥物是否是依賴P-gp轉(zhuǎn)運(yùn)的底物或抑制劑,可利用其作為腸道黏膜和血腦屏障藥物透過性的體外快速篩選模型[11-13]。我們利用MDCK-MDR1細(xì)胞模型快速預(yù)測(cè)T8是否是依賴P-gp介導(dǎo)的底物或抑制劑,為臨床藥物-藥物相互作用研究提供參考。
1.1.1 藥品與試劑
培養(yǎng)基:高糖DMEM培養(yǎng)基 (Gibco),含肝素 (國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司) 50 mg/L、谷氨酰胺(Gibco)200 mg/L( 用 NaHCO3調(diào) pH 7.2 ~ 7.4)、雙抗生素(100 U/ml青霉素和 100 μg/ml鏈霉素,Gibco)10 ml/L、10%(v/v)胎牛血清 FBS(Gibco)、用 0.22 μm 微孔濾膜過濾除菌,4 ℃保存;胰蛋白酶0.25%(w/v)Trypsin-EDTA(Gibco);熒光素鈉(國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司);阿替洛爾(中國藥品生物制品檢定所);普萘洛爾(中國藥品生物制品檢定所);紫杉醇(本院藥物制劑室);Rho123(美國Sigma公司);環(huán)孢素 A(美國Sigma公司,簡(jiǎn)稱CsA);替硝唑(Sigma);雙氯芬酸(中國藥品生物制品檢定所);MDCK-MDR1細(xì)胞系; T8由我院合成室提供,結(jié)構(gòu)式見圖1。試驗(yàn)用水為滅菌去離子水,其他試劑均為國產(chǎn)分析純及以上規(guī)格。
圖1 T8的結(jié)構(gòu)式
1.1.2 實(shí)驗(yàn)儀器
細(xì)胞電阻儀(Millicell-ERS voltohmmeter,美國Millipore 公司);Millipore 插入式培養(yǎng)器(PCF 膜,膜孔徑0.4 μm,直徑12 mm,美國Millipore 公司);24孔培養(yǎng)板(美國Corning公司); 生物安全柜(美國Labconco公司);CO2恒溫培養(yǎng)箱(美國Thermo Fisher Scientific公司);TS100 型倒置顯微鏡(日本尼康公司); CBS-47液氮罐; ZHWY-103B多振幅軌道式恒溫培養(yǎng)振蕩器(上海智城分析儀器制造有限公司); 酶標(biāo)儀 (Thermo Varioskan Flash,美國Thermo Fisher Scientific公司);API4000 QTRAP 型串聯(lián)質(zhì)譜儀(美國 Applied Biosystem公司),配有電噴霧離子源(ESI)以及Analyst 1.5.1 數(shù)據(jù)處理軟件;Waters Acquity UPLC 系統(tǒng)(美國 Waters 公司),包括四元輸液泵,自動(dòng)進(jìn)樣器。
1.2.1 細(xì)胞培養(yǎng)
將需復(fù)蘇的細(xì)胞移至含20 ml高糖DMEM細(xì)胞培養(yǎng)液的T-75組織培養(yǎng)瓶中置于37 ℃培養(yǎng)箱于5% CO2、飽和濕度的條件下培養(yǎng),待細(xì)胞長(zhǎng)滿單層后進(jìn)行傳代點(diǎn)板,接種(1.5×105個(gè)細(xì)胞/ml)到轉(zhuǎn)運(yùn)系統(tǒng)(Millipore 插入式培養(yǎng)器和24孔培養(yǎng)板組成轉(zhuǎn)運(yùn)系統(tǒng),見圖2)的PCF膜的AP側(cè),每孔0.4 ml,以后每天換液培養(yǎng)至第4天進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。
圖2 轉(zhuǎn)運(yùn)系統(tǒng)圖示
1.2.2 MDCK-MDR1細(xì)胞模型的完整性考察
將MDCK-MDR1細(xì)胞培養(yǎng)至第4天,以熒光素鈉和阿替洛爾作為吸收性差的檢漏藥物對(duì)細(xì)胞模型進(jìn)行評(píng)價(jià)。轉(zhuǎn)運(yùn)實(shí)驗(yàn)方案為將熒光素鈉(終濃度10 μmol/L)或阿替洛爾(終濃度1 μmol/L)分別從AP側(cè)給藥(接收側(cè)加入空白Hanks溶液,BL側(cè)0.6 ml),90 min后從BL側(cè)取細(xì)胞通透液(n=3)。
1.2.3 評(píng)價(jià)T8是否是P-gp的底物
細(xì)胞培養(yǎng)至第4天進(jìn)行轉(zhuǎn)運(yùn)實(shí)驗(yàn)。第一組,在轉(zhuǎn)運(yùn)系統(tǒng)兩側(cè)加入空白Hanks溶液(AP側(cè)0.4 ml,BL側(cè)0.6 ml),平衡10 min后輕輕吸出。轉(zhuǎn)運(yùn)實(shí)驗(yàn)方案為將T8(終濃度1 μmol/L)和普萘洛爾(終濃度5 μmol/L)合用,分別從AP側(cè)和BL側(cè)給藥(接收側(cè)加入空白Hanks溶液,AP側(cè)0.4 ml,BL側(cè)0.6 ml),90 min后分別從BL側(cè)和AP側(cè)取細(xì)胞通透液(n=3)。第二組:分別在AP側(cè)和BL側(cè)加入含CsA終濃度為10 μmol/L的Hanks溶液(AP側(cè)0.4 ml,BL側(cè)0.6 ml),平衡10 min后輕輕吸出。轉(zhuǎn)運(yùn)實(shí)驗(yàn)方案為將T8(終濃度1 μmol/L)和普萘洛爾(終濃度5 μmol/L)和P-gp抑制劑CsA(終濃度10 μmol/L)合用,分別從AP側(cè)和BL側(cè)給藥(接收側(cè)加入含CsA濃度為10 μmol/L的Hanks溶液,AP側(cè)0.4 ml,BL側(cè)0.6 ml),90 min后分別從BL側(cè)和AP側(cè)取細(xì)胞通透液(n=3)。以Rho123和紫杉醇為陽性對(duì)照(也合用普萘洛爾為內(nèi)參物),方案為將上述轉(zhuǎn)運(yùn)方案中的T8(終濃度1 μmol/L)替換為 Rho123(終濃度 5 μmol/L)或紫杉醇(終濃度 5 μmol/L)。
1.2.4 評(píng)價(jià)T8是否是P-gp的抑制劑
細(xì)胞培養(yǎng)至第4天進(jìn)行轉(zhuǎn)運(yùn)實(shí)驗(yàn)時(shí),分別以Rho123和紫杉醇為底物、CsA為P-gp的陽性抑制劑。以Rho123為底物時(shí),在轉(zhuǎn)運(yùn)系統(tǒng)兩側(cè)加入空白Hanks溶液(AP側(cè)0.4 ml,BL側(cè)0.6 ml),平衡10 min后輕輕吸出,第一組轉(zhuǎn)運(yùn)實(shí)驗(yàn)方案為將Rho123(終濃度5 μmol/L)和普萘洛爾(終濃度5 μmol/L)合用,分別從AP側(cè)和BL側(cè)給藥(接收側(cè)加入空白Hanks溶液,AP側(cè)0.4 ml,BL側(cè)0.6 ml),90 min后分別從BL側(cè)和AP側(cè)取細(xì)胞通透液(n=3)。第二組轉(zhuǎn)運(yùn)實(shí)驗(yàn)方案為將Rho123(終濃度5 μmol/L)和普萘洛爾(終濃度5 μmol/L)和CsA(終濃度10 μmol/L)合用,分別從AP側(cè)和BL側(cè)給藥(接收側(cè)加入含CsA終濃度為10 μmol/L的Hanks溶液,AP側(cè)0.4 ml,BL側(cè)0.6 ml),90 min后分別從BL側(cè)和AP側(cè)取細(xì)胞通透液(n=3)。第三組轉(zhuǎn)運(yùn)實(shí)驗(yàn)方案為將Rho123(終濃度5 μmol/L)和普萘洛爾(終濃度5 μmol/L)和T8(終濃度1 μmol/L)合用,分別從AP側(cè)和BL側(cè)給藥(AP側(cè)0.4 ml,BL側(cè)0.6 ml),90 min后分別從BL側(cè)和AP側(cè)取細(xì)胞通透液(n=3)。第四組轉(zhuǎn)運(yùn)實(shí)驗(yàn)方案為將Rho123(終濃度5 μmol/L)和普萘洛爾(終濃度5 μmol/L)和 T8(終濃度 5 μmol/L)合用,分別從 AP側(cè)和BL側(cè)給藥(AP側(cè)0.4 ml,BL側(cè)0.6 ml),90 min后分別從BL側(cè)和AP側(cè)取細(xì)胞通透液(n=3)。以紫杉醇為底物,方案為將上述轉(zhuǎn)運(yùn)方案中的Rho123(終濃度5 μmol/L)替換為紫杉醇(終濃度 5 μmol/L)。
1.2.5 樣品處理方法
100 μl細(xì)胞通透液加入100 μl含內(nèi)標(biāo)替硝唑(0.1 μg/ml)的乙腈,混合10 min沉淀蛋白,離心(6 000 g,10 min)后取70 μl加入96孔板,用串聯(lián)質(zhì)譜儀對(duì)化合物T8和陽性對(duì)照紫杉醇、阿替洛爾和普萘洛爾進(jìn)行定量測(cè)定。T8的內(nèi)標(biāo)為含0.5 μmol/L的雙氯芬酸,陽性對(duì)照紫杉醇、阿替洛爾和普萘洛爾的內(nèi)標(biāo)為0.1 μg/ml的替硝唑。
1.2.6 樣品測(cè)定方法
1)色譜條件 色譜柱 :BEH C18(1.7 μm,50 mm× 2.1 mm 內(nèi)徑,美國Waters 公司);流速:0.3 ml/min;柱溫:30 ℃;自動(dòng)進(jìn)樣器溫度:4 ℃;進(jìn)樣量:5 μl。
2)質(zhì)譜條件 離子源:電噴霧離子源(ESI),檢測(cè)方式: T8和雙氯芬酸為負(fù)離子檢測(cè),其余化合物為正離子檢測(cè);離子源溫度(TEM): 400 ℃;霧化氣(Gas1,N2)壓力:50 psi;輔助氣(Gas2,N2)壓力:50 psi;氣簾氣(CUR)壓力:10 psi;掃描方式為多重反應(yīng)監(jiān)測(cè)(MRM);碰撞氣(CAD,N2)壓力:中;用于定量分析的離子反應(yīng)如表1。
表1 質(zhì)譜條件
3) Rho123和熒光素鈉測(cè)定 用Thermo Varioskan Flash 酶標(biāo)儀測(cè)定Rho123和熒光素鈉此類質(zhì)譜響應(yīng)差但有熒光吸收的物質(zhì)。Rho123的激發(fā)波長(zhǎng)為498 nm 發(fā)射波長(zhǎng)為530 nm;熒光素鈉的激發(fā)波長(zhǎng)為491 nm,發(fā)射波長(zhǎng)為514 nm。
1.2.7 數(shù)據(jù)分析
1)評(píng)價(jià)T8是否是P-gp的底物 表觀透過系數(shù)Papp的計(jì)算公式如下[10]:
公式中:表觀透過系數(shù)Papp(cm/s)反映藥物在腸上皮細(xì)胞中藥物的滲透能力;VR表示接收室的溶液體積(ml);A表示膜的面積(此時(shí)A為0.6 cm2);C0表示供試液中藥物的起始濃度(μg/ml);dC/dt表示接收室在單位時(shí)間獲得的藥物濃度[μg/(ml·s)]。分別計(jì)算AP側(cè)向BL 側(cè)轉(zhuǎn)運(yùn)的Papp(AP-BL)和 BL 側(cè)向 AP 側(cè)轉(zhuǎn)運(yùn)的Papp(BL-AP)。外排比(Efflux Ratio)的計(jì)算公式如下:
MDCK-MDR1細(xì)胞實(shí)驗(yàn)中以校正外排比(Corrected Efflux Ratio,CER)表示P-gp外排能力:
Efflux RatioMDR1為BL-AP以及AP-BL方向底物的表觀透過系數(shù)比值;Efflux RatioWILDTYPE為抑制劑CsA存在條件下底物兩個(gè)方向的表觀透過系數(shù)比值。
2) 評(píng)價(jià)T8是否是P-gp的抑制劑 抑制率(Inhibition Degree)按下式計(jì)算[14-15]
Papp(BL-AP)和Papp(AP-BL)分別為BL-AP以及AP-BL方向底物的表觀透過系數(shù)。iPapp(BL-AP)和iPapp(AP-BL)分別為抑制劑存在條件下底物兩個(gè)方向的表觀透過系數(shù)。
當(dāng)MDCK-MDR1細(xì)胞培養(yǎng)至第4天時(shí),以熒光素鈉和阿替洛爾作為吸收性差的檢漏藥物、普萘洛爾為陰性對(duì)照(確定不是P-gp底物)、Rho123和紫杉醇為陽性對(duì)照(確定是P-gp底物)合并給藥,并且結(jié)合細(xì)胞的跨膜電阻和形態(tài)學(xué)指標(biāo)來對(duì)MDCK-MDR1細(xì)胞模型進(jìn)行評(píng)價(jià)。
1)光學(xué)顯微鏡觀察結(jié)果 可見細(xì)胞生長(zhǎng)均勻,邊界清晰(圖3)。
2)細(xì)胞的跨膜電阻(TEER值) 每天測(cè)電阻,電阻會(huì)呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢(shì),在第4天做轉(zhuǎn)運(yùn)實(shí)驗(yàn),Hanks溶液中的電阻約為 50~ 100 Ω·cm2。
3)檢漏標(biāo)記物 MDCK在Millicell PCF 膜上生長(zhǎng)4 d后,AP側(cè)到BL側(cè)方向,10 μmol/L熒光素鈉和1 μmol/L 的阿替洛爾的Papp分別為 9.79×10-7cm/s和8.81×10-7cm/s,滿足實(shí)驗(yàn)要求,和文獻(xiàn)報(bào)道一致[16],表明MDCK-MDR1細(xì)胞間隙建立,細(xì)胞模型建立成功。
圖3 顯微鏡下MDCK 細(xì)胞形態(tài)(40×)
4)對(duì)照化合物 當(dāng) MDCK-MDR1細(xì)胞模型長(zhǎng)至第4天時(shí),以普萘洛爾為陰性對(duì)照(確定不是P-gp底物),實(shí)驗(yàn)結(jié)果數(shù)值接近1;以Rho123和紫杉醇為陽性對(duì)照(確定是P-gp底物),實(shí)驗(yàn)結(jié)果數(shù)值大于2;表明MDCKMDR1細(xì)胞模型建立成功。
結(jié)果(表2)提示T8是高透過性化合物,T8的外排比為1.07,F(xiàn)DA規(guī)定外排比大于2即為P-gp的潛在底物[10],所以T8不是P-gp的潛在底物。
表2 T8的表觀透過系數(shù)和校正外排比
分別以Rho123(表3)和紫杉醇(表4)為底物時(shí),1 μmol/L和5 μmol/L的T8對(duì)這兩個(gè)底物的轉(zhuǎn)運(yùn)沒有影響,外排比基本沒有改變,抑制率基本為0,因此T8不是P-gp的抑制劑。
MDCK-MDR1 細(xì)胞培養(yǎng)周期短,代與代之間均一性良好,并且獲得了P-gp的高表達(dá),因此是研究藥物雙向轉(zhuǎn)運(yùn)率、吸收轉(zhuǎn)運(yùn)機(jī)制、預(yù)測(cè)體內(nèi)吸收和藥物相互作用、新藥設(shè)計(jì)、快速篩選及評(píng)價(jià)藥物安全性的一個(gè)較為理想的體外模型[14]。本研究結(jié)果表明T8的轉(zhuǎn)運(yùn)不受P-gp外排的影響,但是T8的轉(zhuǎn)運(yùn)過程是否存在其他影響因子(如其他多藥耐藥性蛋白、ATP 酶以及細(xì)胞間隙等因素)尚需進(jìn)一步的研究。
表3 以Rho123為底物的T8抑制率
表4 以紫杉醇為底物的T8抑制率
藥物進(jìn)出細(xì)胞的方式包括主動(dòng)轉(zhuǎn)運(yùn)、被動(dòng)轉(zhuǎn)運(yùn)、細(xì)胞旁路通過及胞吞。熒光素鈉和阿替洛爾以細(xì)胞旁路通過的方式進(jìn)入細(xì)胞,因此采用其來檢測(cè)單層細(xì)胞的完整性,測(cè)定方法簡(jiǎn)單、快捷、可靠[16]。
本研究中選用普萘洛爾作為內(nèi)參物與T8以及每個(gè)P-gp底物共同給藥,目的是更好地監(jiān)測(cè)MDCK細(xì)胞上P-gp的功能,其校正外排比基本都在1左右或低于1。有文獻(xiàn)報(bào)道[17-18]普萘洛爾不受P-gp轉(zhuǎn)運(yùn)的影響,但可能對(duì)P-gp的功能有一定影響。我們的實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明普萘洛爾不影響P-gp的功能,因?yàn)殛栃运幍慕Y(jié)果都符合要求。
根據(jù)臨床前動(dòng)物實(shí)驗(yàn),預(yù)測(cè)I期臨床試驗(yàn)中最大給藥劑量為4~8 mg,推測(cè)人體最大血藥濃度0.5~1 μmol/L,因此底物實(shí)驗(yàn)中濃度設(shè)置為1 μmol/L,抑制劑實(shí)驗(yàn)中濃度設(shè)置為1 μmol/L 和 5 μmol/L。
總體結(jié)果表明T8既不是P-gp的底物也不是P-gp的抑制劑,因此在吸收、分布、代謝以及排泄階段T8與P-gp的抑制劑和底物發(fā)生相互作用的可能性很小。
[1] 張品南, 陳艷梅.內(nèi)風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎的研究進(jìn)展[J]. 中華臨床醫(yī)師雜志, 2008, 11(1): 59-61.
[2] 劉春芳, 林娜.雷公藤甲素抗類風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎機(jī)制研究進(jìn)展[J]. 中國中藥雜志, 2006, 31(19): 1575-1579.
[3] Zhou R, Zhang F, He PL,et al.(5R)-5-hydroxytriptolide(LLDT-8), a novel triptolide analog mediates immunosuppressive effectsin vitroandin vivo[J]. Int Immunopharmacol, 2005, 5 (13-14): 1895-1903.
[4] 劉瑤, 曾蘇.MDCK-MDR1細(xì)胞模型及其在藥物透過研究中的應(yīng)用進(jìn)展[J].藥學(xué)學(xué)報(bào), 2008, 43(6): 559-564.
[5] Polli JW, Wring SA, Humphreys JE,et al.Rational use ofin vitroP-glycoprotein assays in drug discovery [J]. J Pharmacol Exp Ther, 2001, 299(2) : 620-628.
[6] Simons K, Ikonen E. Functional rafts in cell membranes[J].Nature, 1997, 387(6633): 569-572.
[7] Luker GD, Pica CM, Kumar AS,et al.Effects of cholesterol and enantiomeric cholesterol on P-glycoprotein localization and function in low-density membrane domains[J].Biochemistry, 2000, 39(26): 7651-7661.
[8] Tang F, Horie K, Borchardt RT.Are MDCK cells transfected with the human MDR1 gene a good model of the human intestinal mucosa? [J]. Pharm Res, 2002, 19(6): 765-772.
[9] Gumbleton M, Audus KL.Progress and limitations in the use ofin vitrocell cultures to serve as a permeability screen for the blood-brain barrier[J]. J Pharm Sci, 2001, 90(11):1681-1698.
[10] Guidance for industry: drug interaction studies - study design, data analysis, implications for dosing, and labeling recommendations[EB/OL]. [2013-01-14]. http://www.fda.gov/downloads/Drugs/GuidanceComplianceRegulatoryInfor mation/Guidances/ucm292362.pdf.
[11] Veronesi B.Characterization of the MDCK cell line for screening neurotoxicants[J]. Neurotoxicology, 1996, 17(2):433-443.
[12] Irvine JD, Takahashi L, Lockhart K,et al.MDCK ( Madin-Darby canine kidney) cells: a tool for membrane permeability screening[J]. J Pharm Sci, 1999, 88(1): 28-33.
[13] Pastan I, Gottesman MM, Ueda K,et al.A retrovirus carrying an MDR1 cDNA confers multidrug resistance and polarized expression of P-glycoprotein in MDCK cells[J].Proc Natl Acad Sci USA, 1988, 85(12): 4486-4490.
[14] Balimane PV, Patel K, Marino A,et al.Utility of 96 wellCaco-2 cell system for increased throughput of P-gp screening in drug discovery[J].Eur J Pharm Biopharm, 2004, 58(1):99-105.
[15] Kim RB, Wandel C, Leake B,et al.Interrelationship between substrates and inhibitors of human CYP3A and P-glycoprotein[J]. Pharm Res, 1999, 16(3): 408-414.
[16] Rusinko A, Hellberg MR, May JA,et al. Use of MDCK cell line to predict corneal penetration of drug.US 7297505[P].2005-10-27.
[17] Bachmakov I, Werner U, Endress B,et al.Characterization of beta-adrenoceptor antagonists as substrates and inhibitors of the drug transporter P-glycoprotein[J]. Fundam Clin Pharmacol, 2006, 20(3): 273-282.
[18] Collett A, Tanianis-Hughes J, Warhurst G. Rapid induction of P-glycoprotein expression by high permeability compounds in colonic cellsin vitro: a possible source of transporter mediated drug interactions? [J]. Biochem Pharmacol, 2004,68(4): 783-790.