馬丹 高軍 李兆申

Hedgehog信號通路與胰腺癌

馬丹 高軍 李兆申

胰腺癌是人類最難治愈的致死性惡性疾病之一，5年生存率不到5%，在美國，胰腺癌居癌癥相關(guān)死亡的第四位。造成臨床預(yù)后較差的部分原因是胰腺癌發(fā)生、發(fā)展過程中的機制尚未完全清楚。Hedgehog(Hh)信號通路是胚胎發(fā)育的主要調(diào)控子,其產(chǎn)物控制細胞分化、組織成形和細胞增殖。在成人正常組織中Hh信號通路已無表達或低表達。近年來，研究發(fā)現(xiàn)在胰腺癌中Hh信號通路異常是普遍存在的，100%胰腺癌存在Hh信號通路相關(guān)分子的基因突變[1]。本文就Hh信號通路的異常激活與胰腺癌的關(guān)系做一綜述。

一、 Hh信號通路

Hh信號通路由配體Hh、膜受體Ptch及Smo、核轉(zhuǎn)錄因子Gli和下游靶基因組成。HH基因于1980年由Nusslein-Vollhard和Wieschaus在研究果蠅的基因突變時發(fā)現(xiàn)，該基因突變可以導(dǎo)致果蠅幼蟲發(fā)育成刺猬一樣的形態(tài)，故名Hedgehog。果蠅中只存在一種HH基因，而在脊椎動物中至少發(fā)現(xiàn)3種同源基因，即Sonic hedgehog(SHH)、Indian hedgehog(IHH)和Desert hedgehog(DHH)，分別編碼3種相應(yīng)的蛋白：Shh、Ihh 和Dhh。膜蛋白受體包括Ptch(Patched)和Smo 受體。Ptch家族是一種十二次跨膜蛋白，起Hh受體作用。Ptch在人類中有2個同源基因：Ptch1、Ptch2分別編碼Ptch1、Ptch2蛋白。二者均能與3種Hh蛋白結(jié)合，并且親和力相似。Smo是一種起信號轉(zhuǎn)導(dǎo)子功能的7次跨膜蛋白。Gli為核轉(zhuǎn)錄因子，在人類有3種亞型，即Gli1、Gli2 和Gli3，三者功能各不相同。Gli1有激活功能，Gli2 表現(xiàn)為Hh靶基因的激活與抑制子，Gli3也可作為Hh信號的激活子與抑制子，Hh信號通路便是通過調(diào)節(jié)下游的Gli 轉(zhuǎn)錄因子控制靶基因的表達的。

初級纖毛是由微管構(gòu)成的發(fā)生于哺乳動物細胞表面的突觸樣結(jié)構(gòu)。很多文獻證實，初級纖毛是Hh信號轉(zhuǎn)導(dǎo)的必需條件。在哺乳動物細胞中，Hh信號通路的Ptch、Smo及下游轉(zhuǎn)錄因子Glil、Gli2和Gli3均存在于初級纖毛上。配體激活的Hh信號通路促發(fā)SuFu和Gli蛋白復(fù)合體發(fā)生細胞內(nèi)易位，最終到達初級纖毛頂部，SuFu的抑制作用解除，Gli被釋放，易位到胞核，作用于靶基因，表明初級纖毛在這一過程中的樞紐地位[2]。另有文獻報道，Hh通路激活的過程如下：無配體時，受體Ptch1定位于初級纖毛，阻止Smo的進入，抑制性Gli蛋白易位到細胞核，無法激活靶基因。配體結(jié)合Ptch1后,Hh-Ptch1復(fù)合體內(nèi)在化，Smo易位到初級纖毛，活化性Gli蛋白易位到細胞核，最終靶基因開始轉(zhuǎn)錄，這些是Hh通路自身成員；另外，眾多與促增 殖(如D-及E-型細胞周期蛋白)、抑制凋亡(如BCL2)或干細胞活化(如NANOG)相關(guān)的基因被激活。

二、 Hh信號通路的激活模式

關(guān)于腫瘤中Hh通路的激活至少已提出了3種模式。第一種為非配體依賴型模式：Hh通路任一水平發(fā)生突變均可以引起腫瘤發(fā)生。例如，當通路的負調(diào)節(jié)因子如Ptch[3-4]基因發(fā)生失活突變或功能性缺失或正調(diào)節(jié)因子如Smo[5]發(fā)生功能獲得性突變導(dǎo)致Ptch對其抑制作用失敏均可以激活該通路。第二種模式為配體依賴型模式：認為配體發(fā)生異常過表達，以自分泌、旁分泌或逆分泌方式作用于Ptch受體，導(dǎo)致Hh通路的激活。第三種模式為非經(jīng)典的腫瘤干細胞模式，認為Hh信號的激活存在于腫瘤干細胞(CSCs)內(nèi)，負責干細胞的自我更新，從而促進腫瘤的增殖、侵襲和轉(zhuǎn)移[6]。

三、 Hh信號通路與胰腺癌

1．Hh信號通路與胰腺癌的發(fā)生、發(fā)展：Hh信號通路的激活與胰腺癌有著密切關(guān)系。Thayer等[7]發(fā)現(xiàn)，在小鼠的發(fā)育過程中，Shh的異常表達可引起類似于人胰腺癌的早期病變。在胰腺癌早期及癌前病變階段即可檢測到Hh信號通路的激活。對不同時期的胰腺上皮內(nèi)瘤變及胰腺癌進行分析，發(fā)現(xiàn)隨著上皮內(nèi)瘤變向胰腺癌的逐步發(fā)展，病變組織中Hh信號通路成員的表達水平也急劇上升。對54例胰腺癌標本進行檢測，發(fā)現(xiàn)Ihh、Ptch、Smo蛋白均呈高表達，相應(yīng)癌旁組織中只有胰島細胞表達，在正常胰腺導(dǎo)管組織中均未見表達[8]。Quint等[9]發(fā)現(xiàn)，Shh、Ptch和Glil蛋白在胰腺癌組織中呈低到中度表達；在胰腺上皮內(nèi)瘤變中，隨著病變進展，Shh，Ptch和Gli1蛋白的表達量呈非線性增加； Shh、Ptch和Gli1蛋白的表達與臨床病理特征(如淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移，腫瘤大小)存在顯著的相關(guān)性。綜上所述，胰腺癌組織及其癌前病變中存在Hh通路的異常激活，Hh通路參與了胰腺癌的發(fā)生、發(fā)展。

2．Hh信號通路與胰腺癌腫瘤相關(guān)間質(zhì)：近年來，胰腺癌與其周圍間質(zhì)的相互作用受到廣泛關(guān)注，其中Hh信號通路也發(fā)揮重要作用。研究證實Shh是引起胰腺癌中結(jié)締組織反應(yīng)的重要遞質(zhì)，主要由腫瘤細胞分泌，以旁分泌作用模式促進腫瘤間質(zhì)的形成，同時也作用于胰腺癌間質(zhì)細胞[10]。胰腺導(dǎo)管腺癌(PDAC)的特征之一是癌旁結(jié)締組織增生，這是上皮組織來源的Hh配體旁分泌作用于間質(zhì)引起的。胰腺上皮癌細胞可能通過分泌Hh配體激活了胰腺星狀細胞(PSCs)，而它又分泌了一些可溶性因子反作用于癌細胞，增加其活性[11]。Olive等[12]證實Hh的小分子抑制劑可以引起明顯的間質(zhì)消退，提高原位胰腺癌小鼠模型的給藥效率。同樣，Lauth等[13]最近發(fā)現(xiàn)了在腫瘤相關(guān)間質(zhì)細胞中存在Hh通路目的基因Gli1過表達，而在腫瘤中表達極少，與Hh通路在間質(zhì)高活性而在腫瘤低活性一致。Shh誘導(dǎo)的旁分泌信號還可通過初級纖毛中的功能復(fù)合體引起間質(zhì)分子改變(VEGF、MMP9表達上調(diào))，促進血管生成、淋巴管生成和腫瘤轉(zhuǎn)移[14]?？傊?，Hh信號通路通過腫瘤間質(zhì)相互作用提供有利于癌細胞生長的微環(huán)境從而加速胰腺癌的發(fā)生。

腫瘤微環(huán)境是由細胞外組分構(gòu)成的致密混合物，包含細胞外基質(zhì)(ECM)、成纖維細胞、PSCs、炎癥細胞、機制金屬蛋白酶等。其中，PSCs被認為是ECM的主要來源細胞，腫瘤來源的Hh信號可以作用于PSCs，而PSCs對胰腺癌細胞也有反作用。體內(nèi)實驗已證實PSCs對胰腺癌有促進作用。PSCs可使胰腺癌細胞株的遷移明顯增加，并促進其增殖、抑制凋亡；在動物模型上，共注射PSCs和胰腺癌細胞后，腫瘤生長更快，局部播散發(fā)生率增加，肝轉(zhuǎn)移發(fā)生率也增加[15]。以上研究證實，Hh通路通過介導(dǎo)腫瘤間質(zhì)相互作用，促進胰腺癌的發(fā)展。

3．Hh信號通路與胰腺癌干細胞：腫瘤干細胞(CSCs)與腫瘤的發(fā)生、侵襲、轉(zhuǎn)移及腫瘤的放化療耐藥性密切相關(guān)。研究發(fā)現(xiàn)Hh通路參與了CSCs的功能維持、自我更新等過程，Hh通路的異?；罨梢砸餋SCs的增殖和腫瘤的復(fù)發(fā)。胰腺癌患者體內(nèi)分離出的CD44+CD24+ESA+CSCs中Shh的表達明顯高于其陰性三倍體對照[16]。Gli1的表達也與CSCs的代表特征之一——化療抵抗性有關(guān)[17]。另外，體內(nèi)和體外實驗發(fā)現(xiàn)，Smo抑制劑可以促進CD133+胰腺癌干細胞的消退[18]。環(huán)巴明也可以通過阻斷Hh通路抑制胰腺癌干細胞的自我更新[19]。

4．Hh信號通路與上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化：上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化(EMT)的特點是上皮標志性蛋白E-鈣黏蛋白(E-cadherin)等表達降低并定位于細胞膜上，以及間質(zhì)標志性蛋白波形蛋白等表達增加。EMT可以增強腫瘤的侵襲力，促進腫瘤的轉(zhuǎn)移和發(fā)展。近年來，研究提示Hh通路可以誘導(dǎo)腫瘤的EMT過程。

EMT過程中的重要轉(zhuǎn)錄因子Snail可能為Glil蛋白的下游轉(zhuǎn)錄調(diào)控靶點。Li等[20]研究發(fā)現(xiàn)，Hh信號通路轉(zhuǎn)錄因子Gli1通過誘導(dǎo)Snail的活性，從而抑制E-cadherin的表達，誘導(dǎo)EMT發(fā)生，促進腫瘤侵襲和轉(zhuǎn)移。Feldman等[21]也報道胰腺癌中Hh通路下游因子Gli1過度表達可促進Snail表達上調(diào)，使E-cadherin表達明顯下調(diào)，促進EMT的發(fā)生，導(dǎo)致腫瘤細胞侵襲性和轉(zhuǎn)移性增高；使用環(huán)巴明后，Snail水平明顯下調(diào)，而E-cadherin表達水平明顯上調(diào)，腫瘤的侵襲能力明顯減弱。通過Shh基因敲除或使用Hh通路抑制劑可以削弱腫瘤中具有EMT表型的細胞的侵襲力[22]，也提示Hh通路的活化可以誘導(dǎo)EMT及其后的癌細胞侵襲。另外，Shh基因敲除也可以明顯抑制TGF-β1誘導(dǎo)的EMT過程[22]。使用Hh通路抑制劑可以逆轉(zhuǎn)細胞的EMT表型，表現(xiàn)為間質(zhì)標記物ZEB1及纖連蛋白減少，上皮標志性蛋白E-鈣連素增加[22]。許多研究也發(fā)現(xiàn)Hh通路與TGF-β、Notch、WNT和Ras通路及生長因子受體可能共同參與EMT過程。這些結(jié)果證明Hh信號通路活化與EMT表型的獲得及腫瘤侵襲有關(guān)。

5．胰腺癌中Hh信號通路與其他通路的相互作用：Hh通路與許多通路之間存在交叉對話，構(gòu)成一個龐大精密的網(wǎng)絡(luò)調(diào)控胰腺癌的發(fā)生、發(fā)展和轉(zhuǎn)移等過程。

TGF-β激活激酶-1(TAK1)是MAPK家族成員之一，也是炎癥免疫、應(yīng)激反應(yīng)及腫瘤發(fā)展過程中許多信號轉(zhuǎn)導(dǎo)連鎖反應(yīng)的關(guān)鍵調(diào)控因子，它可以通過激活細胞外激酶如p38MAPK、JNK及IKK最終誘導(dǎo)轉(zhuǎn)錄因子NF-κB活化。研究發(fā)現(xiàn)，TAK1通過活化NF-κB和激活蛋白-1(AP-1)參與胰腺癌對化療藥物的耐受性，基因沉默或抑制TAK1是逆轉(zhuǎn)胰腺癌內(nèi)在耐藥性的有效方法[23]。TAK1的泛素化也參與調(diào)控抗腫瘤藥物阿霉素誘導(dǎo)的NF-κB活化，從而影響阿霉素的抗癌作用。TAK1參與多種形式的NF-κB活化。TAK1對于TNF-α[24]及基因毒性因素誘導(dǎo)的NF-κB活化都具有調(diào)控作用。而Shh是NF-κB的直接轉(zhuǎn)錄靶點。研究發(fā)現(xiàn)NF-κB p65和Shh在胰腺癌組織標本中的表達呈顯著正相關(guān)，阻斷NF-κB可以抑制Shh mRNA的表達[25]。某些炎性因子(如IL-1β、TNF-α等)可通過激活NF-κB導(dǎo)致Shh的過度表達，進而激活Hh信號通路，并影響細胞周期蛋白的表達，促進胰腺癌細胞的增殖。以上研究提示，在胰腺癌中TAK1-NF-κB的激活是引起Shh高表達的機制之一，TAK1-NF-κB引起胰腺癌細胞增殖一定程度上是通過Shh高表達實現(xiàn)的，兩條通路間存在相互作用。

腫瘤相關(guān)巨噬細胞(TAM)是腫瘤微環(huán)境的重要成分之一，在胰腺癌的發(fā)展進程中也發(fā)揮重要作用。依據(jù)激活方式的不同，分為M1和M2型TAM，近年來，M2型TAM在胰腺癌進展中的作用受到研究者的重視。M2型TAM影響PDAC淋巴轉(zhuǎn)移，與其預(yù)后相關(guān)，抑制TAM與癌細胞的相互作用可以改善患者預(yù)后[26]。之后，又有文獻報道M2型TAM與胰頭導(dǎo)管腺癌的腫瘤大小、淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移和預(yù)后不良相關(guān)[27]。TAM促進胰腺癌發(fā)展的機制之一便是TAM中NF-κB活化，可以促進促腫瘤因子的分泌，從而影響腫瘤的發(fā)展。有研究者提出設(shè)想，在炎癥刺激如LPS作用下，NF-κB誘導(dǎo)TAM活化，直接或間接通過Shh的分泌誘發(fā)和促進PDAC的發(fā)生[28]。以上研究提示，TAK1-NF-κB、TAM、Hh通路在胰腺癌的發(fā)生中都發(fā)揮重要作用，在這個過程中三者之間相互作用，組成復(fù)雜的環(huán)路而參與胰腺癌的進展。

Pasea di Magliano等[29]采用一種可特異性激活胰腺上皮細胞中Hh信號通路的小鼠模型研究胰腺癌的發(fā)病機制，發(fā)現(xiàn)小鼠生長到成年后可形成胰腺未分化癌，通過激活Ras信號通路可進一步誘導(dǎo)形成胰腺上皮內(nèi)瘤變并提高腫瘤致死性，提示特異性激活胰腺上皮細胞中Hh信號通路可以誘導(dǎo)胰腺瘤變。Ras和Hh信號通路共同參與胰腺導(dǎo)管腺癌的形成。研究證實，Ras通路異常通過RAF/MEK/MAPK級聯(lián)反應(yīng)促發(fā)上皮內(nèi)瘤變及晚期胰腺癌Hh通路的活化。另外，Shh可以減少腫瘤細胞對活化的Ras信號的依賴性[30]。

Yamazaki等[31]用Shh轉(zhuǎn)染的胰腺癌細胞的上清液培養(yǎng)內(nèi)皮前驅(qū)細胞，結(jié)果發(fā)現(xiàn)其可誘導(dǎo)血管內(nèi)皮生長因子(VEGF)、間質(zhì)細胞衍生因子-1(SDF-1)和血管形成素-1(Ang-1)mRNA表達水平的上調(diào)，但以上這些生長因子與Hh信號通路相互作用的具體機制尚待進一步研究。采用靶向Shh的治療既可以抑制腫瘤細胞的增殖，也可以抑制腫瘤血管的生成。但也有報道使用Hh通路抑制劑有促進腫瘤血管生成的作用[11]，這個問題還有待進一步研究。

在胚胎發(fā)育時期，Notch信號通路和Hh信號通路共同參與調(diào)控胰腺發(fā)育，Shh的表達與否決定了細胞發(fā)育的終點；Notch 信號通路與胰腺前體細胞的自我更新和分化相關(guān)。Notch信號通路的異常激活可影響胰腺前體細胞向各種胰腺細胞系的發(fā)育。在成熟胰腺組織中，以上兩種信號通路都處于失活狀態(tài)，二者的異常激活將導(dǎo)致胰腺癌的發(fā)生。

在腫瘤干細胞中存在著一個由Hh、BMP /TGF-β、FGF、WNT和Notch信號通路共同構(gòu)成的信號網(wǎng)絡(luò)，在胰腺癌發(fā)生中發(fā)揮關(guān)鍵作用。而上述通路的協(xié)同作用在EMT過程中也發(fā)揮重要作用。

上述研究提示，Hh通路與其他通路存在廣泛的相互作用，共同促進胰腺癌的發(fā)生、發(fā)展。

四、阻斷Hh信號通路在胰腺癌治療中的研究

Hh信號通路與胰腺癌的發(fā)生、發(fā)展、侵襲和轉(zhuǎn)移關(guān)系密切，理論上，阻斷Hh是胰腺癌治療的有效途徑。近年來，一些Hh通路的小分子抑制劑已用于實驗室或臨床研究，包括阻斷Shh和受體結(jié)合，如Robotnikinin、Shh抗體5E1；拮抗Smo，如環(huán)巴明(cyclopamine)、KAAD-cyclopamine、SANTs1-4、Cur-61414、GDC-0449、BMS-833923、IPI-926、LDE-225和PF-0444913等；作用于Smo下游位點，如HPI1-4、GANT-58 和GANT61等[32]。在這些抑制劑中，許多成員對腫瘤的抑制作用已得到證實。環(huán)巴明可以逆轉(zhuǎn)Hh信號通路依賴性細胞株對吉西他濱的耐藥性，并下調(diào)這些細胞株CSCs標志物的表達。環(huán)巴明也可以抑制胰腺癌細胞株snail、E-cadherin上調(diào)，抑制EMT，并伴有原位瘤明顯縮小[33]。IPI-926可以誘導(dǎo)胰腺癌小鼠模型間質(zhì)的消退，提高吉西他濱化療藥物的療效[12]。smo的抑制劑AZD8542通過阻斷Hh信號通路作用于小鼠腫瘤模型的腫瘤相關(guān)間質(zhì)，抑制腫瘤增殖和轉(zhuǎn)移[11]。

但這些藥物的不良反應(yīng)也不容忽視，所以一些相對無毒副作用的天然制劑引起了研究者的注意，如大豆異黃酮、白藜蘆醇、綠茶多酚、姜黃素、維生素D等，它們可以有效阻斷Hh信號通路及其他通路，阻止胰腺癌的進展[34]。這些營養(yǎng)制劑可以與傳統(tǒng)的化療藥物聯(lián)合應(yīng)用，提高腫瘤治療的效果。

Hh信號通路的激活在胰腺癌中是廣泛存在的，與胰腺癌的發(fā)生、發(fā)展、侵襲、轉(zhuǎn)移相關(guān)。Hh信號通路抑制劑對胰腺癌的抑制作用也得到證實，但是，研究顯示單一靶點Hh通路抑制劑治療后存在快速耐藥現(xiàn)象，提示Hh通路抑制劑的聯(lián)合應(yīng)用是更合理的選擇。另外，我們應(yīng)該注意，Hh通路與眾多其他通路存在交叉對話。除了經(jīng)典的激活方式，其他通路也可以介導(dǎo)Hh通路的活化。這種情況也造就了Hh通路抑制劑的獲得性耐藥，所以，Hh與其相關(guān)通路的聯(lián)合靶向治療有望為胰腺癌的治療提供新的策略。在不同的腫瘤個體，發(fā)病的分子機制可能有所不同，因此，通過基因測序、免疫共沉淀等手段明確這些個體中Hh通路及其他通路的活化狀態(tài)，進而進行分子分型，確定個體化的治療方案，將是未來胰腺癌治療的關(guān)鍵。

[1] Jones S, Zhang X, Parsons DW,et al. Core signaling pathways in human pancreatic cancers revealed by global genomic analyses. Science, 2008,321: 1801-1806.

[2] Tukachinsky H, Lopez LV, Salic A. A mechanism for vertebrate Hedgehog signaling: recruitment to cilia and dissociation of SuFu-Gli protein complexes. J Cell Biol,2010, 191:415-428.

[3] Von Hoff DD, LoRusso PM, Rudin CM, et al.Inhibition of the hedgehog pathway in advanced basal-cell carcinoma. N Engl J Med,2009,361: 1164-1172.

[4] Rudin CM, Hann CL, Laterra J, et al. Treatment of medulloblastoma with hedgehog pathway inhibitor GDC-0449. N Engl J Med, 2009, 361: 1173-1178.

[5] Xie J, Murone M, Luoh SM, et al. Activating Smoothened mutations in sporadic basal-cell carcinoma. Nature,1998,391: 90-92.

[6] Song Z,Yue W,Wei B, et al.Sonic hedgehog pathway is essential for maintenance of cancer stem-like cells in human gastric cancer.PLoS One, 2011,6:e17687.

[7] Thayer SP,di Magliano MP,Heiser PW,et al.Hedgehog is an early and late mediator of pancreatic cancer tumorigenesis.Nature,2003,425:851-856.

[8] 田孝東,楊尹默,湯堅強,等.Hedgehog信號蛋白在胰腺癌中的表達及臨床意義.中華肝膽外科雜志,2008,14:480-484.

[9] Quint K,Stintzing S,Alinger B,et al.The expression pattern of PDX-1,SHH, Patched and Gli-1 is associated with pathological and clinical features in human pancreatic cancer.Pancreatology,2009,9:116-126.

[10] Yauch RL, Gould SE, Scales SJ, et al. A paracrine requirement for hedgehog signalling in cancer. Nature,2008,455:406-410.

[11] Hwang RF, Moore TT, Hattersley MM,et al. Inhibition of the hedgehog pathway targets the tumor-associated stroma in pancreatic cancer. Mol Cancer Res, 2012,10: 1147-1157.

[12] Olive KP, Jacobetz MA, Davidson CJ, et al. Inhibition of hedgehog signaling enhances delivery of chemotherapy in a mouse model of pancreatic cancer. Science,2009,324: 1457-1461.

[13] Lauth M, Bergstrom A, Shimokawa T, et al. DYRK1B-dependent autocrine-to-paracrine shift of Hedgehog signaling by mutant RAS. Nat Struct Mol Biol,2010, 17:718-725.

[14] Bailey JM, Mohr AM, Hollingsworth MA. Sonic hedgehog paracrine signaling regulates metastasis and lymphangiogenesis in pancreatic cancer.Oncogene, 2009, 28:3513-3525.

[15] Vonlaufen A, Joshi S, Qu C, et al. Pancreatic stellate cells: partners in crime with pancreatic cancer cells.J Cancer Res, 2008,68:2085-2093.

[16] Li C, Heidt DG, Dalerba P,et al. Identification of pancreatic cancer stem cells. Cancer Res, 2007, 67, 1030-1037.

[17] Nolan-Stevaux O, Lau J, Truitt ML, et al. GLI1 is regulated through Smoothened-independent mechanisms in neoplastic pancreatic ducts and mediates PDAC cell survival and transformation. Genes Dev,2009,23: 24-36.

[18] Mueller MT, Hermann PC, Witthauer J, et al. Combined targeted treatment to eliminate tumorigenic cancer stem cells in human pancreatic cancer. Gastroenterology, 2009, 137:1102-1113.

[19] 黃鳳婷,張世能,梁愛心,等. 阻斷Hedgehog信號通路自我更新的影響.中華胰腺病雜志,2011,4:92-94.

[20] Li X, Deng W,Lobo-Ruppert SM, et al.Gli1 acts through Snail and E-cadherin to promotenuclear signaling by beta-catenin. Oncogene,2007,26:4489-4498.

[21] Feldman G,Dhara S,Fendrich V, et al.Blockade of Hedgehog signaling inhibits pancreatic cancer invasion and metastases: a new paradigm for combination therapyin solid cance.Cancer Res,2007,67:2187-2196.

[22] Maitah MY, Ali S, Ahmad A, et al.Up-regulation of sonic hedgehog contributes to TGF-β1-induced epithelial to mesenchymal transition in NSCLC cells. PLoS One, 2011,6:e16068.

[23] Melisi D, Xia Q, Paradiso G,et al. Modulation of pancreatic cancer chemoresistance by inhibition of TAK1. J Natl Cancer Inst,2011,103: 1190-1204.

[24] Ahmed N, Zeng M,Sinha I,et al. The E3 ligase Itch and deubiquitinase Cyld act together to regulate Tak1 and inflammation. Nat Immunol,2011,12:1176-1183.

[25] Nakashima H,Nakamura M,Yamaguehi H,et al.Nuclear factor KB contributes to hedgehog signaling pathway activation through sonic hedgehog induction in pancreatic cancer. Cancer Res,2006,66:7041-7049.

[26] Kurahara H, Shinchi H, Mataki Y,et al. Significance of M2-polarized tumor-associated macrophage in pancreatic cancer. J Surg Res,2011,167:211-219.

[27] Yoshikawa K, Mitsunaga S, Kinoshita T,et al. Impact of tumor-associated macrophages on invasive ductal carcinoma of the pancreas head. Cancer Sci,2012,103: 2012-2020.

[28] Yamasaki A, Kameda C, Xu R,et al. Nuclear factor kappaB-activated monocytes contribute to pancreatic cancer progression through the production of Shh. Cancer Immunol Immunother,2010, 59:675-686.

[29] Pasca di Magliano M,Sekine S,Ermilov A,et al.Hedgehog/Ras interactions regulate early stages of pancreatic.cancer.Genes Dev,2006,20:3161-3173.

[30] Morton JP, Lewis BC. Shh signaling and pancreatic cancer. Cell Cycle,2007, 13:1553-1557.

[31] Yamazaki M,Nakamura K,Mizukami Y,et al.Sonic hedgehog derived from human pancreatic cancer cells augments angiogenic function of endothelial progenitor ceils.Cancer Sci,2008,99, 1131-1138.

[32] Tremblay MR, McGovern K, Read MA, et al. New developments in the discovery of small molecule Hedgehog pathway antagonists.Curr Opin Chem Biol, 2010,14: 428-435.

[33] Yao J,An Y,Wei JS, et al.Cyclopamine reverts acquired hemoresistance and down-regulates cancer stem cell markers in pancreatic cancer cell lines.Swiss Med Wkly,2011,141:w13208.

[34] Li Y,Maitah MY,Ahmad A,et al.Targeting the Hedgehog signaling pathway for cancer therapy. Expert Opin Ther Targets,2012,16:49-66.

(本文編輯：呂芳萍)

10.3760/cma.j.issn.1674-1935.2013.01.020

200433 上海，第二軍醫(yī)大學長海醫(yī)院消化內(nèi)科

李兆申，Email： zhsli@81890.net

2012-11-26)