薛美昭,儀慧蘭
山西大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,太原030006
自然狀態(tài)下,砷以較低濃度廣泛存在于大氣、水和土壤中。近年來砷化合物在工、農(nóng)、醫(yī)藥業(yè)中的大量使用導(dǎo)致了環(huán)境的砷污染,部分地區(qū)土壤和水域環(huán)境中砷含量偏高,對(duì)生態(tài)系統(tǒng)和人類健康構(gòu)成威脅[1]。氧化損傷是目前公認(rèn)的砷毒性作用機(jī)制:無機(jī)砷可誘發(fā)生物機(jī)體內(nèi)超氧陰離子(O2·-),羥基自由基(·OH)和過氧化氫(H2O2)的生成,這些活性氧分子(reactive oxygen species,ROS)能破壞細(xì)胞膜及胞內(nèi)生物大分子如膜脂、蛋白和核苷酸[2],進(jìn)而影響細(xì)胞和分子的結(jié)構(gòu)與功能,使細(xì)胞生理功能紊亂,導(dǎo)致疾病發(fā)生甚至死亡。近期研究證實(shí),胞內(nèi)一定水平的ROS 分子具有信號(hào)分子的功能,參與介導(dǎo)多種生物學(xué)過程,但是ROS 在砷毒性作用過程中的信號(hào)作用機(jī)制還不清楚。
植物葉表面的氣孔保衛(wèi)細(xì)胞能夠?qū)Χ喾N內(nèi)外刺激如光、濕度、CO2和激素等做出反應(yīng),是研究信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)的模式實(shí)驗(yàn)系統(tǒng)[3-4],對(duì)環(huán)境變化反應(yīng)靈敏而準(zhǔn)確。近期,不少學(xué)者采用植物葉面保衛(wèi)細(xì)胞研究環(huán)境污染物氰化物、二氧化硫和鋁等的細(xì)胞毒性,揭示了環(huán)境化學(xué)物的毒性效應(yīng)及其作用途徑[5-7],發(fā)現(xiàn)了內(nèi)源性ROS 在細(xì)胞死亡中的作用。因此,本研究以蠶豆氣孔保衛(wèi)細(xì)胞為實(shí)驗(yàn)?zāi)P?,研究NaAsO2對(duì)氣孔保衛(wèi)細(xì)胞的毒性效應(yīng),為揭示砷毒性作用機(jī)制提供實(shí)驗(yàn)依據(jù)。
蠶豆(Vicia faba L.)種子清洗后用自來水浸泡48 h,25℃濕紗布包裹催芽2 ~3 d,然后播種于較肥沃的營養(yǎng)土中。培養(yǎng)條件:光暗周期為14 h/10 h,溫度18 ~25℃,光照強(qiáng)度240 μmol·m-2·s-1。幼苗長至4 周時(shí)取頂端第2 節(jié)完全展開的葉片,選非葉脈部位用鑷子撕取其下表皮,切成長約1 cm、寬約0.5 cm 的表皮條,置于含2-(N-morpholino)ethanesulfonic(MES)的表皮條緩沖液中。MES 緩沖液含MES,用三羥甲基氨基甲烷調(diào)節(jié)pH 至7.0。
用MES 緩沖液配制含NaAsO2濃度為0.1、0.3、1、3 和10 mg·L-1的溶液作為砷處理液。緩解組采用一定濃度拮抗劑分別與NaAsO2同時(shí)作用。MES 緩沖液作對(duì)照。每個(gè)處理用3 個(gè)不同蠶豆植株上的葉片,將表皮條置于含有不同藥物的處理液中,于23℃光照3 h 后檢測細(xì)胞活性和胞內(nèi)ROS 水平。
依據(jù)文獻(xiàn)資料,在砷處理液中加入外源抗壞血酸(AsA,1 mmol·L-1)和過氧化氫酶(CAT,1 000 U·mL-1)來降低砷脅迫引發(fā)的胞內(nèi)ROS 升高[8],選用Ca2+特異性螯合劑乙二醇雙四乙酸(EGTA,1 mmol·L-1)和質(zhì)膜Ca2+通道抑制劑降低胞內(nèi)Ca2+水平[7],用0.1 mmol·L-1的2-(2-氨基-3-甲氧基苯基)-4H-1-苯并吡喃-4-酮(PD98059)抑制促分裂素原活化蛋白激酶(mitogen activate protein kinase,MAPK)活性[9]。
參照Yi 等實(shí)驗(yàn)方法[7],藥物處理結(jié)束后,表皮條用0.1 mg·L-1的二乙酸熒光素(fluorescein diacetate,FDA)暗染10 min,熒光顯微鏡下觀察、拍照。統(tǒng)計(jì)無綠色熒光的保衛(wèi)細(xì)胞(死細(xì)胞)數(shù)與觀察的保衛(wèi)細(xì)胞總數(shù),計(jì)算保衛(wèi)細(xì)胞死亡率。每個(gè)處理至少選用3 個(gè)植株的不同葉片,每次至少觀察2 000 個(gè)保衛(wèi)細(xì)胞。保衛(wèi)細(xì)胞死亡率(%)=死亡保衛(wèi)細(xì)胞數(shù)/觀察保衛(wèi)細(xì)胞數(shù)×100%。
參照González 等的實(shí)驗(yàn)方法[10],藥物處理結(jié)束后表皮條于10 μmol·L-1的活性氧熒光指示劑2',7'-二氯熒光黃雙乙酸酯(2',7'-dichlorofluorescein diacetate,DCFH-DA)中暗孵育30 min 后,熒光顯微鏡(激發(fā)波長488 nm)下觀察并拍照。使用圖像分析軟件Image-Pro Plus 6.0 測量每組3 個(gè)表皮條中約300 個(gè)細(xì)胞的熒光值,計(jì)算其平均值。將對(duì)照組熒光值計(jì)為1,各處理組的相對(duì)熒光值為處理組熒光值與對(duì)照組的比值。
計(jì)算每組3 個(gè)重復(fù)實(shí)驗(yàn)的平均值和標(biāo)準(zhǔn)誤,采用SPSS17.0 對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行F 檢驗(yàn)后,采用Duncan 方法進(jìn)行多重比較,分析不同處理組和對(duì)照組之間的差異顯著性。
根據(jù)FDA 染色原理,活細(xì)胞發(fā)出亮綠色熒光,若細(xì)胞熒光亮度降低說明細(xì)胞活性下降,不能很好地將FDA 水解為極性熒光素分子,將無綠色熒光的細(xì)胞記為死細(xì)胞。研究發(fā)現(xiàn),0.1 mg·L-1的NaAsO2對(duì)保衛(wèi)細(xì)胞活性無明顯影響,0.3 ~10 mg·L-1的NaAsO2能致蠶豆氣孔保衛(wèi)細(xì)胞活性降低,且隨著NaAsO2濃度的升高細(xì)胞存活率逐漸下降,10 mg·L-1處理組存活率下降了28.4%(圖1),濃度大于10 mg·L-1時(shí),多數(shù)細(xì)胞熒光微弱,顯示細(xì)胞活性很低。
用ROS 熒光探針DCFH-DA 標(biāo)記后檢測發(fā)現(xiàn),對(duì)照組保衛(wèi)細(xì)胞具較弱的綠色熒光,3 與10 mg·L-1的NaAsO2處理組保衛(wèi)細(xì)胞內(nèi)ROS 熒光信號(hào)強(qiáng)度明顯增強(qiáng),即脅迫組胞內(nèi)ROS 水平升高(圖2)。由此可見,砷處理組細(xì)胞活性降低伴隨著胞內(nèi)ROS 水平的升高。
圖2 砷對(duì)蠶豆保衛(wèi)細(xì)胞內(nèi)ROS 水平的影響Fig.2 Changes of relative intensity of ROS fluorescence in V.faba guard cell exposed to arsenic
為證實(shí)ROS 與細(xì)胞死亡的關(guān)系,用一定濃度的抗氧化劑AsA 或CAT 與NaAsO2共同作用,檢測ROS 水平降低后細(xì)胞死亡率的變化,發(fā)現(xiàn)2 種類型的抗氧化劑均可顯著抑制砷誘發(fā)的細(xì)胞死亡(圖3)。處理液中加入1 mmol·L-1的AsA 能抑制砷引起的細(xì)胞死亡,提高細(xì)胞存活率,使3 與10 mg·L-1NaAsO2處理組細(xì)胞存活率分別提高14.1%和23.5%;加入濃度為1 000 U·mL-1的CAT 同樣能夠顯著降低砷誘導(dǎo)的細(xì)胞死亡率,使3 與10 mg·L-1NaAsO2組細(xì)胞存活率分別提高了15.4%和25.6%。研究結(jié)果表明,砷誘導(dǎo)的保衛(wèi)細(xì)胞死亡與脅迫過程中胞內(nèi)ROS 水平升高密切相關(guān),ROS 參與介導(dǎo)了砷誘導(dǎo)的細(xì)胞死亡。
圖3 抗氧化劑抗壞血酸(AsA)與過氧化氫酶(CAT)對(duì)砷致蠶豆保衛(wèi)細(xì)胞死亡的抑制作用Fig.3 Antagonistic effects of antioxidants(AsA and CAT)on As-induced guard cell death in V.faba
在砷處理液中加入一定濃度的Ca2+干擾劑降低胞內(nèi)Ca2+水平后,細(xì)胞存活率提高,死亡率下降(圖4)。處理液中加入的Ca2+特異性螯合劑EGTA 后,3 和10 mg·L-1NaAsO2組細(xì)胞存活率分別提高4.3%和15.9%,與砷單獨(dú)處理組相比均顯著增高(P <0.05);加入0.1 mmol·L-1的Ca2+通道抑制劑LaCl3后,3 和10 mg·L-1NaAsO2處理組細(xì)胞存活率分別提高了15.0%和24.6%,亦顯著高于砷單獨(dú)處理組(P <0.05)。這表明,砷誘導(dǎo)的保衛(wèi)細(xì)胞死亡與脅迫引發(fā)胞內(nèi)Ca2+水平升高有關(guān),在胞內(nèi)Ca2+升高過程中胞外Ca2+內(nèi)流發(fā)揮了重要作用。
用0.1 mmol·L-1的MAPK 抑制劑PD98059 與NaAsO2共同處理蠶豆表皮條后,保衛(wèi)細(xì)胞存活率顯著高于砷單獨(dú)處理組(P <0.05),3 mg·L-1砷處理組死亡率接近對(duì)照水平(圖5),說明MAPK 參與了砷誘發(fā)的細(xì)胞死亡過程。
圖4 EGTA 與LaCl3對(duì)砷致蠶豆保衛(wèi)細(xì)胞死亡的抑制作用Fig.4 Antagonistic effects of EGTA and LaCl3 on As-induced guard cell death in V.faba
圖5 MAPK 抑制劑PD98059 對(duì)砷致蠶豆保衛(wèi)細(xì)胞死亡的抑制作用Fig.5 Antagonistic effect of MAPK inhibitor PD98059 on As-induced guard cell death in V.faba
植物暴露于無機(jī)砷中會(huì)激發(fā)ROS 的產(chǎn)生,ROS具有很強(qiáng)的氧化能力,能直接破壞植物體內(nèi)蛋白質(zhì)、核苷酸、膜脂等生物大分子的結(jié)構(gòu),引發(fā)脂質(zhì)過氧化反應(yīng)[11],ROS 還可作為信號(hào)分子介導(dǎo)多種生物學(xué)過程。
本研究發(fā)現(xiàn),NaAsO2處理誘發(fā)保衛(wèi)細(xì)胞死亡和胞內(nèi)ROS 水平升高同期發(fā)生。外源性給予ROS 清除劑AsA 和CAT 可降低非生物脅迫誘發(fā)的胞內(nèi)ROS 水平[8],在NaAsO2處理液中加入AsA 或CAT后,NaAsO2誘發(fā)的細(xì)胞死亡被抑制,說明NaAsO2誘發(fā)蠶豆保衛(wèi)細(xì)胞死亡與胞內(nèi)ROS 升高有關(guān),砷脅迫下保衛(wèi)細(xì)胞內(nèi)ROS 水平升高介導(dǎo)了蠶豆保衛(wèi)細(xì)胞的死亡。本結(jié)果為ROS 參與砷毒性作用過程提供了直接證據(jù)。
MAPK 途徑是氧化還原敏感的信號(hào)途徑,可受ROS 調(diào)節(jié)。特異性激酶抑制劑PD98059 能抑制MAPK 的激活[9],從而阻斷MAPK 信號(hào)通路。本研究中加入MAPK 抑制劑PD98059 后能顯著抑制砷處理誘發(fā)的保衛(wèi)細(xì)胞死亡,表明MAPK 可能作為ROS 下游信號(hào)參與介導(dǎo)了砷誘導(dǎo)的蠶豆保衛(wèi)細(xì)胞死亡。
研究表明,脅迫產(chǎn)生的過量ROS 可激活質(zhì)膜Ca2+通道和胞內(nèi)Ca2+通透性離子通道,引起胞外Ca2+內(nèi)流,導(dǎo)致胞內(nèi)Ca2+水平升高[7,12-13]。Ca2+特異性螯合劑EGTA 能通過螯合作用降低細(xì)胞外Ca2+濃度從而有效阻止胞外Ca2+內(nèi)流;LaCl3作為Ca2+通道特異性抑制劑,能有效阻止胞外Ca2+進(jìn)入細(xì)胞;因此,加入外源EGTA 或LaCl3能有效降低胞內(nèi)Ca2+[7]。本研究中,加入EGTA 或LaCl3后砷處理組細(xì)胞死亡率均顯著降低,說明胞內(nèi)Ca2+升高參與介導(dǎo)了砷誘發(fā)的細(xì)胞死亡,胞外Ca2+內(nèi)流是胞內(nèi)Ca2+升高的重要原因。因此,砷處理組蠶豆保衛(wèi)細(xì)胞內(nèi)ROS 水平升高可能通過激活質(zhì)膜Ca2+通道,使胞外Ca2+內(nèi)流,導(dǎo)致胞內(nèi)Ca2+水平升高,從而激活相關(guān)下游信號(hào)引發(fā)細(xì)胞死亡。
胞質(zhì)中Ca2+超載可影響細(xì)胞核與線粒體內(nèi)的Ca2+水平,在Ca2+失衡的條件下基因表達(dá)、能量代謝、線粒體膜通透性等發(fā)生改變,可引發(fā)細(xì)胞壞死、凋亡、自噬性死亡[14]。細(xì)胞死亡信號(hào)途徑中有很多Ca2+靶標(biāo),包括蛋白激酶、NO 合酶、核酸內(nèi)切酶、磷脂酶、蛋白磷酸化酶、轉(zhuǎn)谷氨酰胺酶、蛋白酶等。
依據(jù)細(xì)胞毒性機(jī)制研究理論,結(jié)合本研究結(jié)果,筆者認(rèn)為,砷誘發(fā)植物細(xì)胞死亡可能通過下述3 條途徑:(1)脅迫產(chǎn)生的ROS 可直接攻擊DNA、蛋白質(zhì)等生物大分子,使DNA 分子斷裂、修復(fù)酶活性降低,DNA 損傷無法及時(shí)修復(fù),導(dǎo)致細(xì)胞死亡[15];(2)ROS 激活質(zhì)膜Ca2+通道,使胞外Ca2+內(nèi)流,胞內(nèi)Ca2+水平升高,進(jìn)而激活Ca2+依賴性核酸內(nèi)切酶,使細(xì)胞核DNA 在核小體連接處被切割,細(xì)胞凋亡;(3)胞內(nèi)ROS 和Ca2+水平升高使線粒體膜通透性破壞,細(xì)胞色素c、凋亡誘導(dǎo)因子釋放并于胞質(zhì)中形成凋亡復(fù)合體,激活類Caspase 蛋白酶,特異性切割下游底物,細(xì)胞凋亡[16-17]。雖然砷脅迫可能激活多種細(xì)胞死亡途徑,但本結(jié)果為細(xì)胞死亡的程序性調(diào)控提供了直接證據(jù)。
綜上所述,一定濃度的砷可誘發(fā)蠶豆保衛(wèi)細(xì)胞死亡,砷脅迫誘發(fā)胞內(nèi)ROS 水平升高,ROS 激活質(zhì)膜Ca2+通道,使胞外Ca2+內(nèi)流,胞內(nèi)Ca2+水平升高,激活了胞內(nèi)Ca2+信號(hào)系統(tǒng),Ca2+可激活細(xì)胞內(nèi)死亡相關(guān)基因表達(dá)執(zhí)行細(xì)胞死亡程序,引發(fā)細(xì)胞死亡。用植物細(xì)胞研究了砷毒性作用的信號(hào)途徑,該途徑與動(dòng)物細(xì)胞中報(bào)道的結(jié)果相似[18-19],說明植物細(xì)胞在檢測環(huán)境有毒物質(zhì)的測試中同樣有效,而運(yùn)用蠶豆葉面氣孔保衛(wèi)細(xì)胞檢測環(huán)境化學(xué)物的細(xì)胞毒性,具有取材簡便、檢測靈敏快速、重復(fù)性好等優(yōu)點(diǎn),因此,該方法可用于對(duì)環(huán)境化學(xué)物質(zhì)毒性作用的檢測和評(píng)價(jià)。
[1] Garelick H,Jones H,Dybowska A,et al.Arsenic pollution sources[J].Reviews of Environmental Contamination and Toxicology,2008,197:17-60
[2] Wu L H,Yi H L,Yi M.Assessment of arsenic toxicity using Allium/Vicia root tip micronucleus assays[J].Journal of Hazardous Materials,2010,176(1 -3):952-956
[3] Hetherington A M.Guard cell signaling[J].Cell,2001,107(6):711-714
[4] Schroeder J I,Allen G J,Hugouvieux V,et al.Guard cell signal transduction[J].Annual Review of Plant Physiology and Plant Molecular Biology,2001,52:627-658
[5] Samuilov V D,Kiselevshy D B,Sinitsyn S V,et al.H2O2intensifies CN–-induced apoptosis in pea leaves[J].Biochemistry,2006,71(4):384-394
[6] 劉鑫,儀慧蘭.鋁誘導(dǎo)蠶豆氣孔保衛(wèi)細(xì)胞凋亡研究[J].農(nóng)業(yè)環(huán)境科學(xué)學(xué)報(bào),2010,29(9):1659-1664.Liu X,Yi H L.Aluminum induces apoptosis in Vicia faba guard cells[J].Journal of Agro-Environment Science,2010,29(9):1659 -1664(in Chinese)
[7] Yi H L,Yin J J,Liu X,et al.Sulfur dioxide induced programmed cell death in Vicia guard cells[J].Ecotoxicology and Environmental Safety,2012,78:281 -286
[8] Bi Y H,Chan W L,Zhang W N,et al.Production of reactive oxygen species,impairment of photosynthetic function and dynamic changes in mitochondria are early events in cadmium-induced cell death in Arabidopsis thaliana[J].Biology of the Cell,2009,101(11):628-643
[9] Clarke A,Desikan R,Hurst R D,et al.NO way back:Nitric oxide and programmed cell death in Arabidopsis thaliana suspension cultures [J].The Plant Journal,2000,24(5):667 -677
[10] González A,de los'Angeles Cabrera M,Josefa Henr quez M,et al.Cross talk among calcium,hydrogen peroxide,and nitric oxide and activation of gene expression involving calmodulins and calcium-dependent protein kinases in Ulva compressa exposed to copper excess[J].Plant Physiology,2012,158(3):1451 -1462
[11] Stoeva N,Berova M,Zlatev Z.Effect of arsenic on some physiological parameters in bean plants[J].Biologia Plantarum,2005,49(2):293-296
[12] Pei Z M,Murata Y,Benning G,et al.Calcium channels activated by hydrogen peroxide mediate abscisic acid signalling in guard cells[J].Nature,2000,406(6797):731-734
[13] Mori I C,Schroeder J I.Reactive oxygen species activation of plant Ca2+channels.A signaling mechanism in polar growth,hormone transduction,stress signaling,and hypothetically mechanotransduction [J].Plant Physiology,2004,135(2):702-708
[14] Zhivotovsky B,Orrenius S.Calcium and cell death mechanisms:A perspective from the cell death community[J].Cell Calcium,2011,50(3):211-221
[15] Pan J W,Zhu M Y,Chen H.Aluminum-induced cell death in root-tip cells of barley[J].Environmental and Experimental Botany,2001,46(1):71-79
[16] 吳麗華,儀慧蘭,張虎芳.NO 參與亞砷酸鈉誘導(dǎo)酵母細(xì)胞死亡的調(diào)控[J].環(huán)境科學(xué)學(xué)報(bào),2012,32(10):2612-2615 Wu L H,Yi H L,Zhang H F.Involvement of NO in sodium arsenite-induced yeast cell death[J].Acta Scientiae Circumstantiae,2012,32(10):2612-2616(in Chinese)
[17] Fleury C,Mignotte B,Vayssière J L.Mitochondrial reactive oxygen species in cell death signaling[J].Biochimie,2002,84(2-3):131-141
[18] Brookes P S,Yoon Y,Robotham J L,et a1.Calcium,ATP,and ROS:A mitochondrial love-hate triangle[J].American Journal of Physiology Cell Physiology,2004,287(4):C817-C833
[19] Shi Y F,Wei Y,Qu S,et al.Arsenic induces apoptosis of human umbilical vein endothelial cells through mitochondrial pathway [J].Cardiovascular Toxicology,2010,10(3):153-160