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        神經(jīng)元的發(fā)育過程中p75NTR 和sortilinr的表達研究

        2012-10-21 13:51:52李曉婷王友翠夏冠男王廷華齊建國
        四川解剖學(xué)雜志 2012年4期
        關(guān)鍵詞:換液軸突純度

        李曉婷 王友翠 夏冠男 王廷華 齊建國

        (四川大學(xué) 華西基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)與法醫(yī)學(xué)院,成都 610041)

        神經(jīng)元是神經(jīng)系統(tǒng)的基本結(jié)構(gòu)和功能單位,其高度分化,形態(tài)多樣,結(jié)構(gòu)復(fù)雜,在生理功能上具有接受刺激、傳導(dǎo)沖動和整合信息的能力。腦功能的運行需要神經(jīng)元通過這一復(fù)雜的神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)進行信息傳遞。突觸是實現(xiàn)這一傳遞的特殊結(jié)構(gòu)。在神經(jīng)元發(fā)育過程中,細胞的生存、生長、遷移、與其他細胞建立功能性聯(lián)系,以及神經(jīng)再生過程中軸突的生長等,除了受內(nèi)源性程序的調(diào)控,還受到局部環(huán)境因素的影響,例如神經(jīng)營養(yǎng)因子的維持和促生長功能。

        proBDNF是腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子BDNF 的前體,傳統(tǒng)的觀點認為這些神經(jīng)營養(yǎng)因子前體是無活性的,但是2001 年,Lee等科學(xué)家首次發(fā)現(xiàn)神經(jīng)營養(yǎng)因子前體可以促進細胞凋亡[10]。此后的研究發(fā)現(xiàn),proBDNF的促細胞凋亡作用是由p75NTR 介導(dǎo)的。此外,Henry K Teng 等[11]發(fā) 現(xiàn),proBDNF 能 夠促進體外培養(yǎng)的表達p75和sortilin的神經(jīng)元凋亡。

        P75NTR(p75neurotrophin receptor),為一種Ⅳ型膜蛋白,分子量75kD,是神經(jīng)營養(yǎng)因子的低親和力受體,屬于腫瘤壞死因子受體(TNFR)超家族成員。Sortilin,相對分子量95kD,是一種Ⅰ型跨膜糖蛋白,為已知的第一個不屬于G-蛋白偶聯(lián)受體超家族的跨膜神經(jīng)肽受體,在體內(nèi)廣泛分布。但是其在體內(nèi)的作用既不是合成肽類,也不是反應(yīng)肽類。因此,我們建立體外神經(jīng)元發(fā)育的模型,研究其生長發(fā)育過程中p75、sortilin的表達變化。為今后進一步研究proBDNF對神經(jīng)元發(fā)育的影響奠定基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1.1 動物

        采用新生0~1h的SD 大鼠,由四川大學(xué)實驗動物中心提供。

        1.2 主要試劑及其配

        DMEM/F12(1∶1,Gibco);B27(Gibco),胎牛血清(Hyclone),多聚賴氨酸(Invitrogen),青鏈霉素混合液,谷氨酰胺,胰酶等單克隆p75(MC192),sortilin抗體由澳大利亞周新福教授饋贈;tau-1 抗體購自,特異性識別軸突;Neun抗體,神經(jīng)元的特異性抗體。10%培養(yǎng)基:DMEM/F12 88ml,雙抗(青、鏈霉素)各1ml,F(xiàn)BS 10 ml,-20℃儲存。無血清培養(yǎng)基:neurobasal 97ml,雙抗(青、鏈霉素)各1ml,B27 2 ml,-20℃儲 存。多聚賴氨酸:Poly-D-Lysine(PDL),濃度為1mg/ml,工作液濃度為0.1mg/ml。

        1.3 新生大鼠海馬神經(jīng)元的體外培養(yǎng)

        提前一天做好準(zhǔn)備工作,取新生0~1h 的SD大鼠,浸泡75%酒精30s~1min消毒,斷頭(以上操作在細胞培養(yǎng)間進行)。將鼠腦置于高溫消毒后盛有預(yù)冷D-Hanks液的培養(yǎng)皿中,放進超凈工作臺。左手用眼科鑷夾住兩眼睛處固定腦袋,右手用眼科剪分層依次剪開皮膚、顱骨,從人字縫及矢狀縫將頭皮和顱軟骨組織分開,暴露出兩側(cè)大腦半球、嗅球及小腦。鑷子與腦干垂直、右手取出兩大腦半球,用冷的D-Hanks液將殘留血液沖洗干凈,置于另一裝有預(yù)冷D-Hanks液的培養(yǎng)皿中,放于解剖顯微鏡下。用顯微鑷輕輕剔除腦膜,小心分開皮層,暴露并取出雙側(cè)海馬組織,在D-Hanks液中漂洗后放入15ml離心管或1.5ml EP 管中,加入孵育好的10%FBS+DMEM/F12培養(yǎng)基,一個大腦3ml,吹打10~20次制成細胞懸液,靜置于試管架上3~5min,使較大組織塊沉淀下來。取上層懸液,進行計數(shù)后按照實驗要求以1×105/mL 密度接種于包被好的培養(yǎng)板或玻片上。將培養(yǎng)板置于37℃,5%CO2恒溫培養(yǎng)箱培養(yǎng),24h 后全量換液。以后根據(jù)細胞的生長情況及實驗要求,每3d半量或全量換液,同時在倒置顯微鏡下觀察細胞的形態(tài)和生長情況。換液時注意要提前把培養(yǎng)基放進培養(yǎng)箱孵育然后再進行換液。

        1.4 神經(jīng)元鑒定

        培養(yǎng)3d時細胞已具有一定的形態(tài),因此本實驗選取3d的細胞進行鑒定,采用neun細胞免疫組織化學(xué)法。Neun陽性染色位于神經(jīng)元的胞漿內(nèi),多為棕色或棕紅色。

        倒置相差顯微鏡下觀察、拍照、計數(shù)。本實驗中,所有著色細胞,代表細胞總數(shù)。根據(jù)公式計算出神經(jīng)元純度:[neun 陽性細胞數(shù)/著色細胞數(shù)(總細胞數(shù))]×100%=神經(jīng)元陽性率(即神經(jīng)元純度)。

        1.5 神經(jīng)元發(fā)育過程中p75和sortilin的表達

        根據(jù)實驗要求選取不同時間點、不同條件的細胞取至試驗臺,吸去培養(yǎng)基,用預(yù)熱的0.01 M PBS漂洗兩次(不要把PBS 直接加到細胞上,也不要使細胞干掉);然后用4%多聚甲醛固定30 min(多甲在37℃預(yù)熱后再用,防止溫度差異導(dǎo)致細胞脫落);0.01M PBS充分漂洗;按二步法分別行免疫細胞化學(xué)染色。

        2 結(jié)果

        2.1 體外培養(yǎng)海馬神經(jīng)元的生長情況

        普通倒置光學(xué)顯微鏡下觀察,接種0h,大多數(shù)細胞呈圓球型懸浮于培養(yǎng)基中,折光性較好,單個散在分布。接種12~24h貼壁后,神經(jīng)元周圍長出類似于偽足的包裹體,邊界不整齊;培養(yǎng)3d,包裹體周圍開始有一些向外生長的突起,其中一個突起較其它突起迅速生長延伸,發(fā)育成較長的軸突,其余幾個短小的突起則形成樹突,神經(jīng)元之間逐漸形成網(wǎng)絡(luò);培養(yǎng)7d,軸突繼續(xù)延伸,樹突分支增多,神經(jīng)元軸突和樹突相互交叉、連接,形成復(fù)雜的網(wǎng)絡(luò)。

        2.2 neun免疫組化染色鑒定,經(jīng)計算陽性率可達到90%以上。Neun 陽性染色位于神經(jīng)元的胞漿內(nèi),多為棕色或棕紅色。根據(jù)公式計算出神經(jīng)元純度:[neun陽性細胞數(shù)/著色細胞數(shù)(總細胞數(shù))]×100%=神經(jīng)元陽性率(即神經(jīng)元純度)。

        2.3 細胞免疫組化

        經(jīng)細胞免疫組織化學(xué)染色發(fā)現(xiàn),p75NTR、sortilin在神經(jīng)元發(fā)育過程中均有表達。

        3 討論

        神經(jīng)元的體外培養(yǎng)一直是神經(jīng)科學(xué)領(lǐng)域研究的重要技術(shù)。海馬做為邊緣系統(tǒng)的重要結(jié)構(gòu),具有高度序化的板層結(jié)構(gòu)和神經(jīng)元高度集中并相對獨立的特點,而且在學(xué)習(xí)、記憶、認知、情緒反應(yīng)以及神經(jīng)系統(tǒng)疾病病理生理變化有情方面具有重要的作用,因此本次實驗選取體外培養(yǎng)海馬神經(jīng)元作為模型。

        目前國內(nèi)外對于海馬神經(jīng)元的體外培養(yǎng),傳統(tǒng)方法多選用胎鼠進行取材。但由于胎鼠的胎齡不容易掌握,某些核團及功能區(qū)的解剖位置不易準(zhǔn)確定位,因此選擇新生鼠來代替胎鼠進行海馬神經(jīng)元體外培養(yǎng)的取材。且近年來選擇新生鼠進行神經(jīng)元原代培養(yǎng)的實驗日漸增多[8]。

        新生鼠與胎鼠相比,神經(jīng)元分化程度高,神經(jīng)突起發(fā)育成熟,神經(jīng)元之間以及與纖維組織之間的連接比較緊密。而且有研究表明,通過投射電鏡觀察出生1d的新生大鼠海馬,偶見神經(jīng)元突觸,且結(jié)構(gòu)發(fā)育不完全、突觸連接部位很短、突觸小泡極少[7]。因此為提高神經(jīng)元的純度以及存活率,我們參照原有的,比較權(quán)威的培養(yǎng)方法[4],取出生0~1h的SD大鼠海馬組織,在解剖顯微鏡下剔除腦膜,精確定位取材,以保證組織的純度。經(jīng)機械吹打10~20次,使組織分散成單細胞懸液。以1×105/mL 密度種植于含10% 胎牛血清的DMEM/F12培養(yǎng)基中,24 h后全量換液。培養(yǎng)3d后,經(jīng)neun鑒定,神經(jīng)元的純度可以達到80%以上。

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