鄧華菲,何漢江
(湘南學院病理生理學教研室,湖南郴州 423000)
血管內(nèi)皮細胞不僅是保護血管形態(tài)和功能的一層天然屏障,還能分泌一些血管活性物質,如一氧化氮(nitric oxide,NO)、內(nèi)皮素-1、血管緊張素Ⅱ等。大量研究表明[1-3],NO介導的內(nèi)皮依賴性血管舒張功能的損傷是許多心血管疾病如動脈粥樣硬化、高血壓及糖尿病血管并發(fā)癥的共同病理基礎。已知氧化低密度脂蛋白(oxidized low-density lipoprotein,ox-LDL)在動脈粥樣硬化的發(fā)生發(fā)展中起重要作用[4]。溶血磷脂酰膽堿(lysophosphatidylcholine,LPC)是ox-LDL的主要成分,也是ox-LDL損傷血管內(nèi)皮依賴性舒張功能的主要脂質成分[5]。用LPC體外孵育正常血管也能模擬ox-LDL對血管內(nèi)皮依賴性舒張的損傷作用[6]。因此,阻止LPC對血管內(nèi)皮的損害是防治動脈粥樣硬化的一條有效途徑。
依達拉奉(edaravone,Eda)是一種新型的自由基清除劑,主要用于腦缺血的治療。新近研究表明Eda能對抗異丙腎上腺素對心肌細胞的損傷作用[7]。Takaaki Okabe 等[8]發(fā)現(xiàn) Eda 能抑制載脂蛋白-E缺乏小鼠動脈粥樣硬化的發(fā)生和發(fā)展。徐向輝等[9]研究發(fā)現(xiàn)Eda預處理能降低腦缺血/再灌注對大鼠血管內(nèi)皮功能的損傷。但Eda能否改善LPC誘導的血管內(nèi)皮損傷尚不清楚。因此,本實驗用LPC體外孵育兔胸主動脈環(huán)誘導血管內(nèi)皮損傷,探討Eda對LPC損傷血管內(nèi)皮的作用及機制,為Eda用于防治心血管疾病提供實驗和理論依據(jù)。
1.1 藥物與試劑 Eda購自南京先聲藥業(yè)有限公司,批號80-091215。溶血磷脂酰膽堿、苯腎上腺素、硝普鈉購自Sigma公司。乙酰膽堿(ACh)購自上海三愛思試劑有限公司。丙二醛(malonaldehyde,MDA)、一氧化氮(nitric oxide,NO)和超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)檢測試劑盒購于南京建成生物工程研究所。BCA蛋白定量試劑盒購自北京百泰克生物技術有限公司。
1.2 實驗動物 實驗用家兔,體質量1.5~2.2 kg,♀♂各半,每組5只。由湘南學院動物學部提供。
1.3 實驗儀器 Pclab-UE生物醫(yī)學信號采集處理系統(tǒng)(成都泰盟科技有限公司),張力換能器(北京微信斯達科技發(fā)展有限責任公司)。低溫離心機(美國Beckman公司),熒光分光光度計(日本Hitachi公司),UV755B分光光度計(上海分析儀器總廠)
1.4 離體血管舒張功能檢測 將家兔用戊巴比妥鈉麻醉(40 mg·kg-1),分離胸主動脈置于 4℃Krebs-Henseleit(K-H)緩沖液(成分:NaCl 118.3,KCl 4.7,CaCl22.5,MgSO41.2,KH2PO41.2,NaHCO325.0,Glucose 11.0 mmol·L-1)中。小心剔除血管周圍脂肪和結締組織,盡量避免損傷血管內(nèi)皮。截取3~4 mm的血管環(huán)懸掛于兩個不銹鋼掛鉤上,一端固定于器官浴槽,另一端連接張力換能器,用Pclab-UE生物醫(yī)學信號采集處理系統(tǒng)記錄血管張力變化。血管環(huán)置于盛有5 ml克氏液的器官浴槽中(37℃恒溫),并持續(xù)充以95%O2和5%CO2的混合氣體,加靜息張力6 g,每隔15 min更換浴槽中的克氏液1次,平衡90 min。血管環(huán)先用60 mmol·L-1KCl使血管環(huán)平滑肌去極化,重復2~3次至血管環(huán)收縮達坪值;沖洗后重新平衡血管環(huán),再用0.1 μmol·L-1苯腎上腺素預收縮血管,待張力上升并穩(wěn)定后,加入 0.03 ~3 μmol·L-1累積濃度的乙酰膽堿舒張血管,計算不同濃度ACh誘導的血管舒張值占苯腎上腺素引起的最大收縮值的百分數(shù)表示血管環(huán)的舒張百分比。最大舒張反應大于80%的血管環(huán)被認為內(nèi)皮完整,可用于實驗。
1.5 實驗分組 實驗分為4大組,即正常對照組:血管環(huán)用克氏液平衡45 min;LPC損傷組:用5 mg·L-1的LPC孵育家兔胸主動脈環(huán)30 min;Eda+LPC 組:分別用25、50 和100 μmol·L-1的 Eda 預處理胸主動脈環(huán)15 min后,加入5 mg·L-1的LPC共同孵育 30 min。Eda 單獨處理組:100 μmol·L-1的Eda單獨孵育胸主動脈環(huán)45 min。血管環(huán)經(jīng)上述處理后,再加入 0.1 μmol·L-1苯腎上腺素預收縮血管并加入累積濃度的ACh再次檢測內(nèi)皮依賴性舒張反應。實驗結束前,檢測血管環(huán)對10 μmol·L-1硝普鈉誘導的內(nèi)皮非依賴性舒張反應,并計算各種濃度ACh和10 μmol·L-1硝普鈉誘導血管舒張的百分比。
1.6 血管組織中NO和MDA含量及SOD活性的測定 血管環(huán)舒張功能檢測完成后,將血管環(huán)快速保存于-70℃超低溫冰箱中待檢測。解凍血管環(huán),用濾紙吸干水份,稱重,用小手術剪將其剪碎,加入預冷的生理鹽水;在冰浴上用勻漿器制成10%的組織勻漿,4℃離心10 min后,取上清液,按試劑盒說明和相關要求操作,檢測血管組織中NO、MDA含量及SOD活性,并用BCA蛋白定量試劑盒檢測血管組織中蛋白含量,計算單位蛋白中所含NO、MDA及SOD。
2.1 Eda對LPC抑制兔血管內(nèi)皮依賴性舒張的作用 經(jīng)上述藥物處理后,各組血管環(huán)對0.1 μmol·L-1苯腎上腺素均能產(chǎn)生相似的收縮反應(數(shù)據(jù)未顯示),當收縮達坪值后,加入累積濃度的ACh可誘導正常對照組血管環(huán)產(chǎn)生內(nèi)皮依賴性和劑量依賴性的舒張反應;而用5 mg·L-1LPC孵育離體胸主動脈30 min后,明顯地降低了ACh誘導的內(nèi)皮依賴性舒張反應(Fig 1)。但未影響其非內(nèi)皮依賴性舒張反應(數(shù)據(jù)未顯示)。與正常對照組相比,LPC處理組最大舒張百分比(maximal relaxation rate,Emax)降低而半數(shù)有效濃度(half maximum effective concentration,EC50:指引起最大舒張百分比的50%時所需的 ACh 濃度)升高(Tab 1)。用 25 ~100 μmol·L-1的Eda預孵育兔離體胸主動脈環(huán)15 min,然后與5 mg·L-1的LPC共同孵育血管環(huán)30 min,明顯降低LPC對兔胸主動脈環(huán)內(nèi)皮依賴性舒張反應的抑制作用;使血管環(huán)對ACh誘導的內(nèi)皮依賴性舒張增加(Fig 1)。與LPC組比較,Eda處理組血管環(huán)的Emax明顯增加而EC50則明顯降低(Tab 1)。與正常對照組相比,Eda單獨處理組沒有改變兔胸主動脈環(huán)的內(nèi)皮依賴性和非內(nèi)皮依賴性舒張反應(數(shù)據(jù)未顯示)。
Fig 1 Effect of edaravone(Eda)on the impaired endothelium-dependent relaxation of rabbit aortas induced by LPC(±s,n=5)
2.2 Eda對離體血管組織中NO和MDA含量以及SOD活性的影響 與正常對照組相比,LPC處理組血管組織中MDA含量增加,SOD活性下降,NO釋放減少。Eda(25 ~100 μmol·L-1)處理后,MDA含量下降,SOD活性升高,NO釋放增多。與正常對照組比較,Eda單獨處理組MDA含量、SOD活性、NO的釋放無明顯改變(Tab 2)。
Tab 1 Effects of LPC and edaravone(Eda)on the Emaxand EC50values for acetylcholine-induced relaxation of rabbit aortic rings(±s,n=5)
Tab 1 Effects of LPC and edaravone(Eda)on the Emaxand EC50values for acetylcholine-induced relaxation of rabbit aortic rings(±s,n=5)
The maximal relaxation(Emax)response to 3 μmol·L -1acetylcholine(ACh)of rabbit aortic rings is expressed as percentage of contraction elicited by phenylephrine 0.1 μmol·L -1.The half-maximum effective concentration(EC50)response to ACh is calculated by linear regression from log concentration-effect curves of ACh.**P<0.01 vs control group;##P<0.01 vs 5 mg·L-1LPC group
Group ACh Emax/% ACh EC50/nmol·L -1 Control 85.12 ±2.83 115.08 ±29.96 LPC 5 mg·L -1 43.55±6.31** 230.96±40.52**Eda 25 μmol·L -1+LPC 5 mg·L -1 54.93± 5.71## 197.53±33.60 Eda 50 μmol·L -1+LPC 5 mg·L -1 67.83±2.22## 164.84±11.16##Eda 100 μmol·L -1+LPC 5 mg·L -1 82.32±2.14## 130.71±11.20##
Tab 2 Effects of LPC and edaravone(Eda)on the content of NO and MDA and the activity of SOD in isolated vascular tissues(±s,n=5)
Tab 2 Effects of LPC and edaravone(Eda)on the content of NO and MDA and the activity of SOD in isolated vascular tissues(±s,n=5)
**P<0.01 vs control group;#P<0.05,##P<0.01 vs 5 mg·L-1LPC group
Group MDA/μmol·g-1 SOD/μU·g-1 NO/μmol·g -1 Control 5.49±0.27 161.45±9.54 4.22±0.31 LPC 5 mg·L-1 6.98±0.44** 99.21±10.34** 2.63±0.33**Eda 25 μmol·L -1+LPC 5 mg·L -1 6.29±0.27# 115.76±13.4## 2.84±0.29 Eda 50 μmol·L -1+LPC 5 mg·L -1 5.86±0.43## 133.82±7.16## 3.46±0.24##Eda 100 μmol·L -1+LPC 5 mg·L -1 5.44±0.39## 155.76±7.67## 4.16±0.20##Eda 100 μmol·L - 15.52±0.30 158.59±9.52 4.19±0.22
NO介導的內(nèi)皮依賴性血管舒張功能降低是動脈粥樣硬化的特征性病變。大量動物實驗和臨床研究表明,ox-LDL是動脈粥樣硬化的獨立危險因子,而LPC是ox-LDL產(chǎn)生氧自由基和致血管內(nèi)皮損傷的主要成分[4-5]。在本實驗中我們用 5 mg·L-1LPC孵育家兔離體胸主動脈環(huán),觀察血管環(huán)的內(nèi)皮依賴性舒張反應、血管組織中NO含量及血管組織中的脂質過氧化代謝產(chǎn)物MDA和氧自由基清除劑SOD的活性。結果顯示,LPC降低了血管內(nèi)皮依賴性舒張反應,但沒有影響非內(nèi)皮依賴性血管舒張反應。這和我們以前在大鼠離體胸主動脈環(huán)[6]、以及其他學者在新西蘭兔胸主動脈[10]和豬冠狀動脈[11]的研究結果相似。LPC降低血管內(nèi)皮依賴性舒張功能的機制尚不完全清楚。大量研究表明,LPC可以激活蛋白激酶C,促進超氧陰離子的產(chǎn)生[11],后者使NO氧化滅活增加。此外,LPC還能降低內(nèi)皮細胞一氧化氮合成酶(endothelial nitric oxide synthase,eNOS)mRNA的表達,減少NO合成[5]。本實驗研究發(fā)現(xiàn)LPC孵育的血管組織中MDA含量升高而NO水平和SOD活性下降。這些結果表明,增加NO滅活和減少NO合成,從而降低NO的生物利用度是LPC導致血管內(nèi)皮依賴性舒張功能降低的主要原因。
Eda的化學名為3-甲基-1-苯基-2-吡唑啉-5-酮,是一種具有捕獲羥自由基活性的自由基清除劑,表現(xiàn)為抗氧化的細胞保護效應,因而最先用于防治腦缺血/再灌注中的氧化損傷,減輕腦水腫,抑制遲發(fā)性神經(jīng)細胞死亡,具有較明顯的神經(jīng)保護功能?,F(xiàn)在越來越多的證據(jù)表明氧自由基在動脈粥樣硬化發(fā)生發(fā)展中具有十分重要的作用,這為氧自由基清除劑Eda防治動脈粥樣硬化提供了理論依據(jù)。本實驗發(fā)現(xiàn)Eda孵育家兔離體胸主動脈可明顯改善LPC誘導的血管內(nèi)皮依賴性舒張功能的損害,降低了血管組織中MDA的水平和增加了NO含量以及SOD的活性。徐向輝等[9]研究發(fā)現(xiàn)Eda預處理明顯改善大鼠腦缺血/再灌注后血管內(nèi)皮功能,其機制與降低MDA和增加SOD活性有關,周紅杰等[12]報道,Eda降低腦出血大鼠腦組織MDA含量并增加SOD活性;Yoshida等[13]研究發(fā)現(xiàn)Eda能逆轉ox-LDL對eNOS的抑制效應;Jitsuiki等[14]給吸煙者注射依達拉奉后,其前臂血管對ACh的舒張反應增加,應用eNOS抑制劑——N-甲基-L-精氨酸取消了Eda的作用。這些研究表明,Eda具有清除氧自由基及促進內(nèi)皮細胞NO合成的作用,該作用可能與其對抗LPC所致的血管內(nèi)皮功能損害有關。
綜上所述,Eda改善了LPC對血管內(nèi)皮依賴性舒張功能的損傷,其機制可能與其清除LPC產(chǎn)生的氧自由基,增加NO的生物利用度等抗氧化特性有關。
[1] 李 磊,戴 敏.動脈粥樣硬化血管內(nèi)皮分泌功能失調與平滑肌細胞增殖[J].中國藥理學通報,2010,26(2):155 -8.
[1] Li L,Dai M.The cause of atherosclerosis secretory dysfunction in vascular endothelial cells and proliferation of smooth muscle cells[J].Chin Pharmacol Bull,2010,26(2):155 -8.
[2] 王現(xiàn)珍,蔣嘉燁,陸家鳳,等.SHR高血壓進程中不同類型血管內(nèi)皮功能損傷及藥物修復研究[J].中國藥理學通報,2010,26(2):163-8.
[2] Wang X Z,Jiang J Y,Lu J F,et al.Study in the damage of endothelial function and administration recovery among different arteries during the developing progress of SHR[J].Chin Pharmacol Bull,2010,26(2):163 -8.
[3] Tziomalos K,Athyros V G,Karagiannis A,Mikhailidis D P.Endothelial dysfunction in metabolic syndrome:Prevalence,pathogene-sis and management[J].Nutr Metab Cardiovasc Dis,2010,20(2):140-6.
[4] Mitra S,Deshmukh A,Sachdeva R,et al.Oxidized low-density lipoprotein and atherosclerosis implications in antioxidant therapy[J].Am J Med Sci,2011,342(2):135 - 42.
[5] Min Z,Kang L,Lin L,et al.Resveratrol restores lysophosphatidylcholine-inhibition of extracellular-signal-regulated protein kinase activation[J].Phytother Res,2010,24(12):1762 - 8.
[6] Deng H F,Xiong Y.Effect of pravastatin on impaired endotheliumdependent relaxation induced by lysophosphatidylcholine in rat aorta[J].Acta Pharmacol Sin,2005,26(2):92 - 8.
[7] 黃 涌,阮經(jīng)文,楊春濤,等.依達拉奉保護H9c2心肌細胞對抗異丙腎上腺素誘導的氧化應激及內(nèi)質網(wǎng)應激反應[J].中國藥理學通報,2011,27(3):410 -5.
[7] Huang Y,Ruan J W,Yang C T,et al.Myocardial protection of edaravone against isoprenaline-induced oxidative stress and endoplasmic reticulum stress in H9c2 cells[J].Chin Pharmacol Bull,2011,27(3):410 -5.
[8] Okabe T A,Kishimoto C,Shimada K,et al.Effects of MCI-186(edaravone),a novel free radical scavenger,upon experimental atherosclerosis in apolipoprotein E-deficient mice[J].Circ J,2006,70(9):1216 -9.
[9] 徐向輝,常業(yè)恬,李 李,等.依達拉奉預處理對大鼠腦缺血再灌注后血管內(nèi)皮功能的影響[J].實用醫(yī)學雜志,2008,24(24):4205-7.
[9] Xu X H,Chang Y T,Li L,et al.Effects of edaravone preprocession on vascular endotheloial function of brain in rats after ischemic reperfusion injury[J].J Practic Med,2008,24(24):4205 -7.
[10] Mangin EL Jr,Kugiyama K,Nguy J H,et al.Effects of lysolipids and oxidatively modified low density lipoprotein on relaxation of rabbit aorta[J].Circ Res,1993,72(1):161 -6.
[11] Murohara T,Kugiyama K,Ota Y,et al.Effects of atrial and brain natriuretic peptides on lysophosphatidylcholine-mediated endothelial dysfunction[J].J Cardiovasc Pharmacol,1999,34:870 -8.
[12]周紅杰,朱 潔,王景周,蔣曉江.依達拉奉對腦出血大鼠腦組織丙二醛含量、超氧化物歧化酶活力及腦水含量的影響[J].臨床神經(jīng)病學雜志,2008,21(5):365 -7.
[12] Zhou H J,Zhu J,Wang J Z,Jiang X J.Effects of edaravone on levels of malonaldehyde,superoxide dismutase and water content of cerebral tissue in intracerebral hemorrhage rats[J].J Clin Neurol,2008,21(5):365 -7.
[13] Yoshida H,Sasaki K,Namiki Y,et al.Edaravone,a novel radical scavenger,inhibits oxidative modification of low-density lipoprotein(LDL)and reverses oxidized LDL-mediated reduction in the expression of endothelial nitric oxide synthase[J].Atherosclerosis,2005,179(1):97 -102.
[14] Jitsuiki D,Higashi Y,Goto C,et al.Effect of edaravone,a novel free radical scavenger,on endothelium-dependent vasodilation in smokers[J].Am J Cardiol,2004,94(8):1070 -3.