禹江濤 王紅陽(yáng) 韓廣超 王 袁 張麗麗
(河北聯(lián)合大學(xué)附屬醫(yī)院呼吸內(nèi)科 河北唐山 063000)
細(xì)胞凋亡是在基因嚴(yán)格控制下主動(dòng)的細(xì)胞“自殺”行為,又稱為細(xì)胞程序性死亡。細(xì)胞通過(guò)信號(hào)傳導(dǎo)引起某些基因轉(zhuǎn)錄和翻譯發(fā)生改變,引起細(xì)胞器縮小而不裂解,染色體DNA斷裂,形成凋亡小體最終被巨噬細(xì)胞識(shí)別并吞噬。近年來(lái)有文獻(xiàn)報(bào)道,睡眠呼吸暫停導(dǎo)致神經(jīng)損傷從而影響認(rèn)識(shí)功能[1]。同時(shí)研究表明,慢性間歇低氧可誘導(dǎo)神經(jīng)細(xì)胞凋亡引起神經(jīng)系統(tǒng)損傷[2~4]。我們前期動(dòng)物實(shí)驗(yàn)已證實(shí)慢性間歇低氧條件下神經(jīng)細(xì)胞出現(xiàn)凋亡[2,5]。細(xì)胞凋亡有復(fù)雜的調(diào)控過(guò)程,包括信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)系統(tǒng)、基因激活與轉(zhuǎn)錄、酶系統(tǒng)等。
間歇低氧引起細(xì)胞凋亡的機(jī)制尚不完全清楚,目前已知調(diào)控細(xì)胞凋亡的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路有:內(nèi)質(zhì)網(wǎng)相關(guān)性死亡(ERAD)通路、線粒體通路及死亡受體通路。其中ERAD途徑:包含內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激誘導(dǎo)轉(zhuǎn)錄C/EBP的同源蛋白、JNK的活化和caspase-12蛋白水解酶的活化。當(dāng)內(nèi)質(zhì)網(wǎng)發(fā)生應(yīng)激時(shí),位于內(nèi)質(zhì)網(wǎng)的caspase-12酶活性升高并活化,從內(nèi)質(zhì)網(wǎng)轉(zhuǎn)運(yùn)到胞漿,最終激活caspase-3等,最后引發(fā)細(xì)胞凋亡。線粒體通路:線粒體相關(guān)的主要凋亡蛋白有:CytC、BCL-2家族蛋白、凋亡蛋白酶激活因子-1(Apaf-1)以及凋亡誘導(dǎo)因子(AIF)等。BCL-2家族蛋白通過(guò)對(duì)線粒體通透性轉(zhuǎn)換孔PTP進(jìn)行調(diào)節(jié),最終引起CytC的釋放,誘導(dǎo)caspase水解導(dǎo)致細(xì)胞凋亡。而線粒體內(nèi)的凋亡蛋白,如AIF等,進(jìn)入細(xì)胞質(zhì)后作用于細(xì)胞核,引起染色體凝集,引起凋亡[6]。死亡受體通路:死亡受體是細(xì)胞上的一類跨膜蛋白,屬于腫瘤壞死因子(TNFR)受體基因超家族,目前已知的死亡受體(TNFR -1、Fas、DR3、DR4、DR5)在細(xì)胞外均由一段含半胱氨酸的區(qū)域,配體與之結(jié)合后誘發(fā)細(xì)胞內(nèi)側(cè)具有蛋白質(zhì)水解功能的“死亡區(qū)域”發(fā)生改變,傳遞凋亡信號(hào),最終誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡。有研究表明神經(jīng)細(xì)胞損傷與間歇低氧后產(chǎn)生氧化應(yīng)激有關(guān)[7],這與Row B W等[8]研究CIH導(dǎo)致學(xué)習(xí)記憶損傷中發(fā)現(xiàn)大鼠體內(nèi)氧化應(yīng)激水平比正常對(duì)照組高的結(jié)果一致??傊?,間歇低氧可以引起神經(jīng)細(xì)胞凋亡,從而導(dǎo)致認(rèn)知、學(xué)習(xí)及記憶功能障礙,但確切機(jī)制尚不明確,有待進(jìn)一步研究。
ERK:細(xì)胞外信號(hào)調(diào)節(jié)激酶(Extracelluar signal-regulated kinase)是真核生物細(xì)胞內(nèi)的一類絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶,是生物體內(nèi)最重要的信號(hào)通路之一,由國(guó)外學(xué)者從哺乳動(dòng)物細(xì)胞研究并最早發(fā)現(xiàn)的絲裂原活化蛋白激酶(MAPK)家族成員。主要包括兩種異構(gòu)體 ERK1和 ERK2(分別為 p44MAPK和p42MAPK),二者與同源性高,一般統(tǒng)稱為ERK1/2。ERK信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路存在于大多數(shù)細(xì)胞中,ERK通路被激活后,作用于細(xì)胞漿或細(xì)胞核的底物,引起相關(guān)蛋白的特異性表達(dá),調(diào)控細(xì)胞的應(yīng)激、分化、增殖和凋亡等[9]。在腦缺血研究發(fā)現(xiàn),ERK通路的激活介導(dǎo)細(xì)胞死亡[10],與既往研究 ERK通路抑制神經(jīng)細(xì)胞死亡[11]相比較,ERK通路在神經(jīng)細(xì)胞的存活與凋亡過(guò)程中起著雙重角色。
低氧條件下,目前研究表明HIF-1的活性表達(dá)受REK的直接修飾調(diào)節(jié),同時(shí)REK對(duì)HIF-1蛋白的修飾不影響其穩(wěn)定性及DNA結(jié)合能力,但抑制胞外信號(hào)調(diào)節(jié)激酶(ERK)的活性后HIF-1的轉(zhuǎn)錄活性也被抑制[12]。Sodhi的研究表明,應(yīng)用ERK抑制劑(PD98059)及保留部分功能的Ras蛋白突變異構(gòu)體等試驗(yàn)中證明REK通路信號(hào)傳導(dǎo)活化并修飾HIF-1蛋白[13]。其中ERK1/2轉(zhuǎn)位到細(xì)胞核內(nèi)是信號(hào)傳遞的關(guān)鍵,且在早期有活性,長(zhǎng)期慢性刺激HIF-1的反式激活功能不能活化。
細(xì)胞為了適應(yīng)不同氧氣濃度形成了完整的信號(hào)傳導(dǎo)及調(diào)控機(jī)制。其中低氧誘導(dǎo)因子(HIF)廣泛存在于人體及哺乳動(dòng)物的一種轉(zhuǎn)錄因子。HIF由HIF-1α和HIF-1β兩個(gè)亞基組成,在低氧條件下激活多種基因的轉(zhuǎn)錄來(lái)適應(yīng)低氧環(huán)境。研究[14]表明HIF-1β不受氧濃度影響,而HIF-1和HIF-1α受氧濃度調(diào)節(jié),HIF-1α是活性調(diào)節(jié)亞基,正常條件下HIF-1α的表達(dá)和降解處于動(dòng)態(tài)平衡狀態(tài)。低氧條件下,HIF-1α的降解受到抑制,從而積聚。HIF-1β存在于胞漿和胞核,其與HIF-1α進(jìn)入胞核后與HIF-1β形成HIF-1異二聚體,HIF-1與低氧反應(yīng)元件(HRE)結(jié)合并調(diào)控下游基因。目前已知受HIF-1調(diào)控的眾多下游基因不但參與細(xì)胞的增殖分化、而且參與細(xì)胞代謝及細(xì)胞死亡等多種病理生理過(guò)程。其中受HIF-1直接調(diào)控的細(xì)胞死亡相關(guān)蛋白有BNIP3和BNIP3L(BNIP3-like),均為Bcl-2中只含BH3結(jié)構(gòu)域亞家族中的成員。他們的啟動(dòng)子中均含有HRE,并在低氧條件下誘導(dǎo)表達(dá)。與既往認(rèn)為 BNIP3和BNIP3L是促凋亡蛋白不同,最近一些研究表明:HIF-1依賴性的BNIP3表達(dá)在大鼠心臟細(xì)胞線粒體自噬是不可或缺的[15];Bellot等[16]證實(shí),當(dāng)正常細(xì)胞或癌細(xì)胞在低氧條件下發(fā)生線粒體自噬現(xiàn)象防止細(xì)胞死亡,而線粒體自噬通過(guò)HIF-1介導(dǎo)BNIP3和BNIP3L表達(dá)而發(fā)生。Zhang等[17]研究發(fā)現(xiàn)在低氧條件下線粒體發(fā)生自噬現(xiàn)象,其中低氧誘導(dǎo)因子HIF-1誘導(dǎo)的BNIP3表達(dá)起著至關(guān)重要作用。眾所周知哺乳動(dòng)物的正常紅細(xì)胞內(nèi)無(wú)線粒體,因?yàn)榫W(wǎng)織紅細(xì)胞向成熟紅細(xì)胞轉(zhuǎn)化過(guò)程中,細(xì)胞內(nèi)線粒體通過(guò)自噬而消失[18]。且相關(guān)研究[19]表明,線粒體自噬與其外膜上的BNIP3L(類BNIP3蛋白)相關(guān),BNIP3L缺失的小鼠紅細(xì)胞仍有線粒體存在。其中Beclin-1與Atg5的表達(dá)也參與了自噬過(guò)程。Beclin-1是一種與BNIP3和BNIP3L具有相同BH3結(jié)構(gòu)域的蛋白質(zhì),被認(rèn)為在調(diào)控自噬體的形成中有重要作用。低氧條件下,BNIP3和BNIP3L表達(dá)增多,Beclin-1被競(jìng)爭(zhēng)性的從與Bcl-2或者Bcl-XL的復(fù)合物中游離出來(lái)形成PI3K復(fù)合體(Ⅲ型磷脂酰肌醇 -3-激酶復(fù)合體),并通過(guò)PI3K/Akt途徑激活線粒體自噬的發(fā)生[20],Atg5是此調(diào)節(jié)途徑的關(guān)鍵蛋白,起重要的介導(dǎo)作用。研究表明,長(zhǎng)期低氧條件下,轉(zhuǎn)錄因子PERK被激活,誘導(dǎo)Atg5的表達(dá),進(jìn)而發(fā)生自噬;目前LC3檢測(cè)自噬特異性高,當(dāng)自噬現(xiàn)象發(fā)生時(shí),LC3形成LC3-Ⅱ,且研究表明LC3-Ⅱ與細(xì)胞內(nèi)自噬泡成正比。且免疫組化檢測(cè)LC3B-Ⅱ與電鏡觀察自噬現(xiàn)象結(jié)果一致程度高,可作為檢測(cè)自噬現(xiàn)象的重要指標(biāo)[21]。同時(shí)外源性H2O2同樣能導(dǎo)致線粒體損傷并激活自噬[22]。
線粒體自噬是近年來(lái)被發(fā)現(xiàn)的一種在低氧狀態(tài)下保障細(xì)胞氧化還原穩(wěn)態(tài)的重要調(diào)控途徑[23]。細(xì)胞在間歇低氧條件下發(fā)生代謝改變,線粒體通過(guò)降解蛋白質(zhì)及損傷的細(xì)胞器來(lái)防止凋亡途徑的觸發(fā),從而保護(hù)細(xì)胞。另外,在長(zhǎng)期或劇烈應(yīng)激條件下,持續(xù)的線粒體自噬導(dǎo)致細(xì)胞凋亡。因此,線粒體自噬在細(xì)胞的存活及死亡中起到重要的調(diào)節(jié)作用。線粒體通過(guò)氧化磷酸化產(chǎn)生ATP的同時(shí),還生成活性氧(ROS),包括:O2-、H2O2等。機(jī)體產(chǎn)生的ROS主要由線粒體代謝過(guò)程產(chǎn)生[24],低氧條件下通過(guò)以下途徑參與腦組織損傷:①損傷線粒體膜,線粒體釋放CytC、凋亡誘導(dǎo)因子(AIF)等凋亡相關(guān)蛋白進(jìn)入細(xì)胞質(zhì),誘導(dǎo)caspase水解,誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡。②ROS攻擊DNA,發(fā)生氧化反應(yīng),導(dǎo)致嘌呤、嘧啶氧化損害,引起DNA的斷裂,導(dǎo)致信號(hào)傳導(dǎo)中斷。③通過(guò)上調(diào)核因子-κB(NF-κB)的表達(dá),使環(huán)氧化酶2、iNOS及多種炎癥因子如TNF-α及IL-8等表達(dá)增高[25]。機(jī)體處于間歇低氧條件下,機(jī)體的抗氧化平衡狀態(tài)被打破,損害脂質(zhì)、蛋白質(zhì)、DNA等的生理功能,引起細(xì)胞損傷甚至導(dǎo)致細(xì)胞凋亡。而線粒體自噬可清除受損的線粒體減少ROS的產(chǎn)生,維持細(xì)胞內(nèi)環(huán)境穩(wěn)定,促進(jìn)細(xì)胞存活。
目前研究較多的是氧化應(yīng)激、炎癥反應(yīng)及持續(xù)低氧誘導(dǎo)線粒體自噬的相關(guān)機(jī)制,對(duì)于慢性間歇低氧條件下線粒體自噬研究報(bào)道較少。睡眠呼吸暫停低通氣綜合征是一種病因復(fù)雜且病理機(jī)制尚不完全明確的疾病,OSAS造成慢性間歇低氧,使機(jī)體處于應(yīng)激狀態(tài),誘導(dǎo)脂質(zhì)、蛋白及DNA損傷,從而造成細(xì)胞損傷甚至死亡。間歇低氧應(yīng)激狀態(tài)下,機(jī)體的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路被激活,活化相關(guān)基因轉(zhuǎn)錄,促進(jìn)細(xì)胞修復(fù)。線粒體是細(xì)胞代謝及能量產(chǎn)生的重要場(chǎng)所,對(duì)細(xì)胞的存活起到至關(guān)重要作用,當(dāng)機(jī)體受到間歇低氧應(yīng)激時(shí),線粒體自噬通過(guò)降解受損的線粒體來(lái)適應(yīng)低氧環(huán)境以維持細(xì)胞內(nèi)動(dòng)態(tài)平衡,防止進(jìn)一步損傷。然而線粒體自噬是把雙刃劍,在慢性間歇低氧早期,通過(guò)降解損傷的線粒體對(duì)細(xì)胞存活具有重要意義,但長(zhǎng)期慢性間歇低氧可能導(dǎo)致線粒體過(guò)度自噬誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡。但與其他間歇低氧相關(guān)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路如:P38、JNK等之間有無(wú)相互作用還待進(jìn)一步研究。線粒體自噬導(dǎo)致細(xì)胞凋亡途徑可能是造成OSAS患者學(xué)習(xí)、認(rèn)知等功能障礙的病理機(jī)制之一,盡管間歇低氧條件下線粒體自噬機(jī)制并不完全明確,但是仍為OSAS的進(jìn)一步研究提供新的方向。
[1]M athieu A,M azza S,D cary A,et al.Effects of obstru ctive sleep apnea on cognitive function on:acomparison betw een younger and old er OSAS patients[J].SleepMed,2008,9(2):112
[2]王紅陽(yáng),張盼盼,陳寶元.不同程度慢性間歇低氧對(duì)大鼠神經(jīng)細(xì)胞凋亡的影響[J].山東醫(yī)藥,2010,50(52):45
[3]劉輝國(guó),張志鋒,張珍祥.間歇缺氧大鼠海馬神經(jīng)元凋亡及其機(jī)制[J].中華結(jié)核和呼吸雜志,2007,30(5):368
[4]Xu W,Chi L,Row BW,et al.Increased oxidative stress is associated with chronic intermittent hypoxia-mediated brain cortical neuronal cell apoptosis in a mouse model of sleep apnea[J].Neuroscience,2004,126(2):313
[5]王紅陽(yáng),楊 林,陳寶元.間歇性重度低氧對(duì)大鼠學(xué)習(xí)記憶影響[J].中國(guó)公共衛(wèi)生,2011,27(1):74
[6]Otera H,Ohsakaya S,Nagaura Z,etal.Export of mitochondrial AIF in response to proapoptotic stimuli depends on processing at the intermembrane space[J].EMBO J,2005,24:1375
[7]張存雪,李 源,周永海,等.慢性間歇低氧幼鼠認(rèn)知損傷機(jī)制的研究[J].浙江醫(yī)學(xué),2007,29(12):1268
[8]Row B W,Liu R,Xu W,et a1.Intermittent hypoxia is associated with oxidative stress and spatial learning detlcits in the rat[J].AmJ Respir Crit Care Med,2003,167(11):1548
[9]Inoue T,Suzuki Y,Mizuno K,et al.SHP -1 exhibits a proapoptotic functi on in antigerr stimulated mast cells:positive regulation of mitochondrial death pathways and negative regulation of survival signaling pathways[J].Mol Immunol,2009,47(2 -3):222
[10]Wang X,Wang H ,Xu L,et al.S ignificant neuroprotection against ischemic brain injury by inhibition of the MEK1 protein kinase in mice:exploration of potential mechanism associated with apoptosis[J].J Pharmacol ExpTher,2003,304(1):172
[11]Noshita N,Sugawara T,Hayashi T ,et al.Copper/zinc superoxide dismutase attenuates neuronal cell death by preventing extracellular s ignalregulated kinase activation after transient focal cerebral ischemia in mice[J].J Neurosci,2002,22(18):7923
[12]Pages G,Milanini J,Richard D E,et al.Signaling angiogenesis via p42/p44 MAP kinase cascade[J].Ann N Y Acad Sci,2000,902:187
[13]Sodhi A,Montaner S,Miyazaki H,et al.MAPK and Akt act cooperatively but independently on hypoxia inducible factor-1alpha in rasV12 upregulation of VEGF.Biochem Biophys Res Commun,2001,287(1):292
[14]Li L,Madu CO,Lu A,et al.HIF -1alpha promotes a hypoxia - independent cell migration[J].Open Biol J,2010,3:8
[15]Band M,Joel A,Hernandez A,et al.Hypoxia-induced BNIP3 expression and mitophagy:in vivo comparison of the rat and the hypoxia- tolerant mole rat,Spalax ehrenbergi[J].FASEB J,2009,23(7):2327
[16]Bellot G,Garcia-Medina R,Gounon P,et al.Hypoxia-induced autophagy is mediated through HIF-induction of BNIP3 and BNIP3L via their BH3 - domains[J].Mol Cell Biol,2009,29(10):2570
[17]Zhang H,et al.J Biol Chem[J].2008,283:10892
[18]Mortensen M,F(xiàn)erguson D J,Edelmann M,et al.Loss of autophagy in erythroid cells leads to defective removal of mitochondria and severe anemia in vivo[J].Proc Natl Acad Sci USA,2010,107(2):832
[19]Schweers R L,Zhang J,Randall M S,et al.NIX is required for programmed mitochondrial clearance during reticulocyte maturation[J].Proc Natl Acad Sci USA,2007,104(49):19500
[20]Edinger A L,Thompson C B.Defective autophagy leads to Cancer[J].Cancer Cell,2003,4(6):422
[21]Klionsky DJ,Abeliovich H,Agostinis P,et a1.Guidelines for the use and interpretation of assays for monitoring autophagy in higher eukaryotes[J].Autophagy,2008,4(2):151
[22]Mizushima N.Methods for monitoring autophagy[J].Int J Bioeherm Cell Biol,2004,36(12):2491
[23]Scherz-Shouval R,Shvets E,F(xiàn)ass E,et al.Reactive oxygen species are essential for autophagy and specifically regulate the activity of Atg4[J].EMBO J,2007,26(7):1749
[24]Grubei J,Schaffer S,Halliwell B.The mitochondrial free radical theory of ageing - where do we stand[J].Front Biosci,2008,13:6554
[25]Chan PH.Reactive oxygen radicals in signaling and damage in the ischemic brain[J].J Cereb Blood Flow Metab,2001,21(1):2