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        Aβ寡聚體預處理的BV2細胞對PC12細胞凋亡的影響

        2011-08-25 03:56:38藺慕會徐忠信陳曉虹
        中風與神經(jīng)疾病雜志 2011年11期

        藺慕會, 徐忠信, 陳曉虹

        β淀粉樣蛋白(amyloid protein,Aβ)導致的tau蛋白異常磷酸化、神經(jīng)原纖維纏結(jié)、神經(jīng)元凋亡被認為是導致阿爾茨海默病(Alzheimer disease,AD)的主要原因[1]。有研究認為小膠質(zhì)細胞可在AD的發(fā)生發(fā)展中清除Aβ,起到保護神經(jīng)元的作用,但也有研究認為小膠質(zhì)細胞可通過炎癥反應加重神經(jīng)元損傷。本研究將預先被Aβ寡聚體處理的BV2細胞與PC12通過篩網(wǎng)共育,部分模擬體內(nèi)小膠質(zhì)細胞與神經(jīng)元關(guān)系,來探討小膠質(zhì)細胞對神經(jīng)元損傷的作用。

        1 材料與方法

        1.1 材料 PC12細胞購于中國科學院北京細胞生物研究所,BV2細胞購于上海復祥生物科技有限公司。細胞轉(zhuǎn)移篩網(wǎng)購于美國BD Falcon公司;1640培養(yǎng)基、DMEM培養(yǎng)基、胎牛血清購于GIBCO公司;Aβ1-42,HFIP(六氟丙醇),抗 tau,tau(pS396)一抗、二抗購于sigma公司;BCA蛋白定量試劑盒購于美國PIERCE公司;Western blot化學發(fā)光檢測試劑盒購于武漢博士德公司;MTT(噻唑藍)購于上海華舜生物工程有限公司;雙染凋亡試劑盒購于上海寶賽公司。

        1.2 方法

        1.2.1 Aβ 寡聚體的制備及細胞培養(yǎng) 按Klein WL(2002)方法制備 Aβ1 ~42 寡聚體[2],用1640培養(yǎng)液(含10%胎牛血清,100u/ml青霉素,100g/L鏈霉素)將PC12細胞培養(yǎng)在24孔培養(yǎng)板中。用DMEM培養(yǎng)液(含10%胎牛血清)將BV2細胞培養(yǎng)在轉(zhuǎn)移篩網(wǎng)上。在BV2細胞經(jīng)Aβ1-42處理24h后,將培養(yǎng)液及生長有BV2細胞的轉(zhuǎn)移篩網(wǎng)同時移入PC12細胞培養(yǎng)板與PC12細胞共育。

        1.2.2 分組 在PC12細胞培養(yǎng)液中分別加入0、1、5、10μmol/L Aβ1-42 處理24h 作為對照組即Aβ+PC12;實驗組則在BV2細胞培養(yǎng)液中加入0、1、5、10μmol/L Aβ1-42 預處理24h,然后通過轉(zhuǎn)移篩網(wǎng)將Aβ1-42處理過的BV2細胞及培養(yǎng)液移入未處理過的PC12細胞培養(yǎng)孔共育24h,即Aβ+BV2+PC12。

        1.2.3 MTT方法檢測 PC12細胞抑制率 棄去 PC12 上清,加入 MTT(0.5mg/ml),37℃孵育 4h,細胞內(nèi)見到藍色沉淀后,吸出培養(yǎng)上清液,每孔加入200μl DMSO,使結(jié)晶物充分溶解,空白孔調(diào)零,經(jīng)全自動酶標儀于490nm處測定各孔數(shù)值(655nm作為參考波長)。細胞抑制率計算:1-(OD實驗組/OD對照組)×100%。

        1.2.4 流式細胞儀檢測細胞凋亡 收集細胞,PBS洗3遍,1000r/min離心10min,細胞沉淀中加入70%乙醇2ml,-20℃固定過夜,1000r/min離心10min,細胞沉淀中加入PI染色液1ml,流式細胞儀檢測,用Cell Quest3.0軟件分析。

        1.2.5 Western blot方法檢測 tau、tau(pS396)蛋白表達 將蛋白裂解緩沖液(預冷至0℃)加入經(jīng)過漂洗的單層PC12細胞中,靜置20min;收集細胞,用蛋白定量分析(bicinchonic acid assay BCA法)測定總蛋白濃度。加樣蛋白含量50μg,經(jīng)10%SDSPAGE電泳分離,4℃條件下轉(zhuǎn)膜,置膜于5%脫脂奶粉封閉1h,在室溫下分別加入兔抗大鼠 tau(pS396);tau一抗(1∶1000),4℃ 過夜,室溫下加入辣根過氧化物酶標記的二抗(1∶4000),60min。化學發(fā)光顯色,計算機掃描分析。

        1.2.6 統(tǒng)計學處理 實驗數(shù)據(jù)以 χ±SD表示,采用統(tǒng)計程序軟件SPSS10.0 for windows,采用t檢驗。

        2 結(jié)果

        2.1 MTT法檢測PC12細胞抑制率 除空白對照外(0μmol/L Aβ1-42),所有濃度的 ADDLs均可導致PC12細胞抑制,且PC12細胞抑制表現(xiàn)為ADDL濃度依賴性關(guān)系,即隨著Aβ濃度增加PC12抑制率也明顯增加,10μmol/L組最明顯,與空白對照組相比,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05);其中實驗組PC12細胞抑制率增加更明顯,10μmol/L組最明顯,并且與對照組中相同濃度組比較,PC12細胞抑制率增加更明顯,其差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05),見表1。

        表1 MTT檢測PC12細胞抑制率酶標儀檢測結(jié)果(OD值)

        2.2 流式細胞儀分析PC12細胞凋亡率結(jié)果對照組與實驗組中空白對照組均為少量PC12細胞凋亡,兩組相比無統(tǒng)計學意義;當Aβ濃度為1、5、10μmol/L時,對照組與實驗組中均可見PC12細胞凋亡增多(P<0.05),并呈濃度依賴性升高;Aβ濃度相同時兩組比較,實驗組PC12細胞凋亡進一步增多,其差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)(見圖1、圖2)。

        2.3 PC12細胞tau(pS396)、tau蛋白表達情況各組PC12細胞tau蛋白表達無明顯差別,對照組中 Aβ(1、5、10μmol/L)組 tau(pS396)表達增多,差異有統(tǒng)計學意義(P <0.05);實驗組 Aβ(1、5、10μmol/L)組中PC12細胞tau(pS396)表達明顯增多,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05);實驗組與對照組相同Aβ濃度組相比PC12細胞tau(pS396)表達增加,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05),見圖3。

        3 討論

        目前認為AD是一種由于基因缺陷直接或間接改變淀粉樣蛋白前體(APP)表達或蛋白酶解過程從而影響Aβ聚集穩(wěn)定性的病理綜合征。Aβ導致的tau蛋白異常磷酸化,神經(jīng)遞質(zhì)丟失,神經(jīng)膠質(zhì)增生和炎癥反應等,最終可導致神經(jīng)元功能失調(diào),死亡。小膠質(zhì)細胞作為腦內(nèi)重要的免疫細胞之一,參與多種疾病的發(fā)生、發(fā)展,包括 AD[3~5]。但小膠質(zhì)細胞在AD發(fā)生發(fā)展中的作用是清除Aβ保護神經(jīng)元,還是通過炎癥反應加重神經(jīng)元損傷尚有爭議。本研究通過PC12細胞抑制率、細胞凋亡檢測及Tau蛋白表達變化的分析,觀察了BV2細胞被Aβ寡聚體處理后對PC12細胞凋亡的影響,進而探討了小膠質(zhì)細胞在神經(jīng)元損傷中的作用。

        圖1 Aβ(5μmol/L)對照組PC12細胞凋亡

        圖2 Aβ(5μmol/L)實驗組PC12細胞凋亡

        圖3 PC12細胞tau(pS396)、tau蛋白表達

        有研究發(fā)現(xiàn)來源于AD患者腦內(nèi)的小膠質(zhì)細胞對培養(yǎng)皿底部預先聚集的Aβ沉積物有明顯趨向性,3w內(nèi)Aβ沉積物被小膠質(zhì)細胞覆蓋。在動物實驗及尸檢也證實AD患者及動物模型中小膠質(zhì)細胞能聚集于老年斑周圍并內(nèi)吞Aβ。有學者發(fā)現(xiàn)裝載Aβ的小膠質(zhì)細胞遷移到血管或腦室旁試圖清除腦內(nèi)Aβ。即小膠質(zhì)細胞對Aβ具有趨化作用和吞噬性。關(guān)于小膠質(zhì)細胞是吞噬、清除Aβ阻止AD發(fā)展,還是在Aβ作用下分泌細胞毒性物質(zhì)加速AD發(fā)展,目前仍存在爭議。

        本研究選擇與神經(jīng)元有很多相似之處的PC12細胞及已被廣泛用來體外培養(yǎng)、代替小膠質(zhì)細胞的BV2細胞[6]通過細胞篩網(wǎng)共同培養(yǎng),進而觀察被Aβ寡聚體預處理的BV2細胞對PC12細胞凋亡的影響。PC12細胞來自鼠腎上腺嗜鉻細胞瘤細胞系,BV2細胞來源于鼠小膠質(zhì)細胞瘤細胞。篩網(wǎng)孔徑8μm,允許篩網(wǎng)內(nèi)外的大分子蛋白和液體交流及細胞突觸通過,不允許細胞通過。該模型可分別對PC12細胞及BV2細胞的形態(tài)、蛋白質(zhì)、RNA等進行檢測,是較理想的模型。結(jié)果表明,所有濃度的ADDLs均可導致PC12細胞凋亡,且PC12細胞凋亡表現(xiàn)為ADDL濃度依賴性關(guān)系,即隨著Aβ濃度增加PC12抑制率、細胞凋亡、tau(pS396)表達也明顯增加,其中用Aβ寡聚體預處理BV2細胞24h后再與PC12細胞共育,與Aβ寡聚體直接處理的PC12細胞組相比,前者PC12細胞上述指標增加更明顯,對照組與實驗組中空白對照組未見明顯的PC12細胞凋亡。提示BV2細胞能放大β淀粉樣蛋白對PC12細胞的損傷,加速tau蛋白異常磷酸化,增加神經(jīng)元凋亡,但“靜止狀態(tài)”下的小膠質(zhì)細胞(Aβ寡聚體0μmol/)無神經(jīng)元損傷作用。支持在病理狀態(tài)下小膠質(zhì)細胞在神經(jīng)元損傷中起促進作用,因此可能加重AD的病情。但本研究應用的PC12細胞及BV2細胞不是原代培養(yǎng)的神經(jīng)元及小膠質(zhì)細胞,并且僅此二細胞共育,并不能完全模仿體內(nèi)復雜的內(nèi)環(huán)境如血液、腦脊液、其他細胞成分的影響等,因此有一定的局限性。本研究結(jié)果提示,小膠質(zhì)細胞在一定條件下可促進神經(jīng)元損傷。因此,進一步探討小膠質(zhì)細胞在神經(jīng)元損傷中的作用機制,對于揭示AD發(fā)病機制以及為AD的臨床治療提供理論依據(jù)將具有重要的意義。

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