孔曉霞 李夢(mèng)楠 朱雯婷 李 超 秦 臻 張 婷

(溫州醫(yī)學(xué)院低氧醫(yī)學(xué)研究所 機(jī)能實(shí)驗(yàn)教學(xué)中心，浙江 溫州 325035)

低氧(Hypoxia)是許多惡性疾病的重要病理生理特征之一，大約有90%的實(shí)質(zhì)性腫瘤中都存在低氧現(xiàn)象。適度的低氧環(huán)境可激發(fā)機(jī)體一系列內(nèi)在的適應(yīng)性過(guò)程，不但可以維持細(xì)胞的正常功能，而且對(duì)抵抗機(jī)體損傷具有一定作用〔1〕。自噬(Autophagy)是細(xì)胞利用溶酶體降解自身受損的細(xì)胞器和大分子物質(zhì)的過(guò)程〔2〕。在低氧或者營(yíng)養(yǎng)缺乏時(shí)，細(xì)胞能夠通過(guò)自噬方式獲取ATP以及其他保證基本代謝過(guò)程的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)，從而拮抗損傷，對(duì)細(xì)胞生存具有保護(hù)作用〔3〕。但是，過(guò)度激活的自噬會(huì)引起程序性細(xì)胞死亡，導(dǎo)致細(xì)胞生存率下降，這種細(xì)胞死亡方式被定義為自噬型細(xì)胞死亡〔4〕?？梢?jiàn)，自噬在細(xì)胞分化和增殖中的作用依然存在著廣泛的爭(zhēng)議。本研究通過(guò)探討低氧條件對(duì)順鉑(DDP)抗腫瘤效應(yīng)的影響及細(xì)胞自噬的作用，以進(jìn)一步闡明低氧和腫瘤發(fā)生發(fā)展的關(guān)系。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 細(xì)胞株 人非小細(xì)胞肺癌A549細(xì)胞株由溫州醫(yī)學(xué)院機(jī)能實(shí)驗(yàn)中心保存。

1.1.2 儀器與試劑 激光共聚焦顯微鏡(FV1000型，日本O-lympus)觀察A549細(xì)胞熒光染色結(jié)果;酶標(biāo)儀(美國(guó)Thermo公司)用于亞甲基四唑藍(lán)(MTT)法檢測(cè)細(xì)胞生存率。細(xì)胞培養(yǎng)用1640培養(yǎng)液以及新生牛血清購(gòu)于美國(guó)Hyclone公司。DDP及免疫熒光染料(MDC)、熒光染料(Hoechst33342)均購(gòu)于美國(guó)Sigma公司。

1.2 方法

1.2.1 A549細(xì)胞培養(yǎng) A549細(xì)胞置于完全培養(yǎng)基(10%新生牛血清，1640培養(yǎng)液，pH7.4)中，37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。每2～3 d用0.25%胰酶消化后，換液傳代培養(yǎng)用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

1.2.2 MTT法測(cè)定細(xì)胞生存率 取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期A549細(xì)胞，經(jīng)消化制成細(xì)胞懸液，以每孔100 μl，1×104細(xì)胞數(shù)接種于96孔板，24 h后按實(shí)驗(yàn)分組加入 10 μmol/L DDP和 20 μmol/L DDP，分別放入常氧(20%O2)和低氧培養(yǎng)箱(1%O2)。在8 h后加入MTT(5 mg/ml)20 μl，繼續(xù)培養(yǎng)4 h后吸出培養(yǎng)液，加入二甲基亞砜(DMSO)150 μl，振蕩 10 min，570 nm 測(cè)其吸光度值。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。

1.2.3 MDC染色檢測(cè)細(xì)胞自噬空泡變化 MDC是一種自噬空泡的標(biāo)志物，可以通過(guò)MDC染色觀察判斷細(xì)胞自噬過(guò)程的發(fā)生。以4%預(yù)冷的多聚甲醛，4℃下固定15 min，磷酸鹽緩沖液(PBS)洗2遍，加入終濃度為50 μmol/L的 MDC染色液，37℃孵育60 min，PBS洗2遍。激光共聚焦顯微鏡下觀察細(xì)胞自噬空泡的變化。

1.2.4 Hoechst33342染色檢測(cè)細(xì)胞凋亡 取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期A549細(xì)胞，經(jīng)消化制成細(xì)胞懸液，以每孔5×104細(xì)胞數(shù)接種于24孔板中，細(xì)胞貼壁后，按照實(shí)驗(yàn)分組在藥物處理后12 h，PBS洗2遍，棄上清，加入終濃度1 μg/ml的 Hoechst33342染色，37℃孵育15 min，PBS洗2遍，激光共聚焦顯微鏡觀察細(xì)胞染色質(zhì)凝集及形態(tài)變化。

1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 應(yīng)用SPSS13.0統(tǒng)計(jì)軟件，數(shù)據(jù)以表示，多組間比較使用單因素方差分析(One-way ANOVA)。

2 結(jié)果

2.1 常氧和低氧條件下DDP對(duì)A549細(xì)胞增殖率的影響 在常氧條件下，單獨(dú)應(yīng)用DDP作用于A549細(xì)胞12 h，細(xì)胞增殖率明顯下降，并呈劑量依賴性;而在低氧條件下，DDP對(duì)A549細(xì)胞的損傷作用明顯降低，細(xì)胞死亡率與常氧條件下的DDP組相比明顯降低(P﹤0.05)。見(jiàn)圖1。

圖1 常氧和低氧條件下DDP對(duì)A549細(xì)胞增殖率的影響

2.2 MDC染色檢測(cè)細(xì)胞自噬空泡變化 單獨(dú)應(yīng)用10 μmol/L DDP作用于A549細(xì)胞時(shí)，未見(jiàn)MDC熒光聚集現(xiàn)象，表明細(xì)胞內(nèi)無(wú)明顯自噬空泡堆積。單獨(dú)的低氧條件下或低氧條件下應(yīng)用DDP作用A549細(xì)胞12 h，細(xì)胞均出現(xiàn)大量自噬空泡積聚，表明有自噬過(guò)程發(fā)生，并有明顯差異(P＜0.05)。見(jiàn)圖2。

2.3 Hoechst33342染色檢測(cè)細(xì)胞凋亡 單獨(dú)應(yīng)用DDP作用A549細(xì)胞12 h，細(xì)胞核碎裂，染色質(zhì)凝聚明顯，表明有顯著細(xì)胞凋亡過(guò)程發(fā)生;在單純低氧條件下，未見(jiàn)細(xì)胞核形態(tài)明顯變化，無(wú)明顯細(xì)胞凋亡發(fā)生。而低氧條件下，DDP作用A549細(xì)胞12 h，細(xì)胞染色質(zhì)凝聚水平與常氧條件下DDP組相比顯著下降(P﹤0.05)，細(xì)胞損傷程度明顯降低。見(jiàn)圖3。

圖2 MDC染色檢測(cè)常氧或低氧條件下DDP作用A549細(xì)胞自噬空泡的變化及平均熒光強(qiáng)度分析(×600)

圖3 Hoechst33342染色檢測(cè)常氧和低氧條件下DDP對(duì)A549凋亡細(xì)胞核染色質(zhì)濃縮的影響及平均熒光強(qiáng)度(×400)

3 討論

肺癌是目前全球癌癥發(fā)病率和死亡率位居第一的惡性腫瘤，探討其發(fā)生機(jī)制及有效的治療手段一直是受到廣泛關(guān)注的研究熱點(diǎn)之一。在正常機(jī)體中，氧濃度的變化對(duì)組織細(xì)胞的代謝、增殖、分化具有重要的調(diào)節(jié)作用。為了適應(yīng)低氧條件，腫瘤細(xì)胞通過(guò)激活一系列信號(hào)機(jī)制，例如血管生成、細(xì)胞新陳代謝增強(qiáng)、遷移等，促進(jìn)了細(xì)胞增殖、轉(zhuǎn)移、耐藥等。不僅改變了腫瘤細(xì)胞的生物學(xué)特性，引起腫瘤細(xì)胞的遺傳不穩(wěn)定性及惡性選擇，導(dǎo)致腫瘤發(fā)生惡性轉(zhuǎn)化甚至轉(zhuǎn)移。而且研究表明低氧也是腫瘤細(xì)胞對(duì)放療、化療產(chǎn)生抗性的主要原因之一〔5〕。因此，低氧作為抗腫瘤靶點(diǎn)的研究備受許多學(xué)者關(guān)注。已有研究表明自噬在饑餓、氧化應(yīng)激、低氧等條件下對(duì)細(xì)胞具有一定程度的保護(hù)作用〔6〕。本研究提示腫瘤細(xì)胞的低氧環(huán)境可能通過(guò)某種機(jī)制降低了DDP的損傷作用。

低氧誘導(dǎo)因子1(HIF-1)是低氧條件下廣泛存在于哺乳動(dòng)物和人體內(nèi)的一種核轉(zhuǎn)錄因子，HIF-1α能夠上調(diào)BNIP3(只具有BH3區(qū)的Bcl2家族成員)的表達(dá)引起自噬蛋白Beclin 1活性增強(qiáng)，誘導(dǎo)自噬的發(fā)生，達(dá)到保護(hù)細(xì)胞的作用〔7，8〕。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明DDP作用A549細(xì)胞后，自噬水平變化不明顯，但低氧條件則能夠引起細(xì)胞發(fā)生自噬。常氧條件下應(yīng)用DDP作用A549細(xì)胞，細(xì)胞核發(fā)生明顯皺縮，染色質(zhì)凝聚。但低氧條件下，DDP對(duì)細(xì)胞核的損傷作用則顯著降低。這提示在低氧條件下，細(xì)胞自噬信號(hào)的激活，對(duì)于DDP誘導(dǎo)的細(xì)胞損傷可能起到了一種促增殖性的保護(hù)作用，進(jìn)而降低了細(xì)胞死亡率。

以上結(jié)果表明，DDP能夠引起A549細(xì)胞發(fā)生凋亡，在低氧條件下引起的自噬降低了DDP的損傷作用，其具體機(jī)制及涉及的信號(hào)通路還有待于進(jìn)一步探討。

1 Matsumoto S，Yasui H，Mitchell JB，et al.Imaging cycling tumor hypoxia〔J〕.Cancer Res，2010;70(24):10019-23.

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3 Mizushima N，Levine B，Cuervo AM，et al.Autophagy fights disease through cellular self-digestion〔J〕.Nature，2008;451(7182):1069-75.

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5 Degenhardt K，Mathew R，Beaudoin B，et al.Autophagy promotes tumor cell survival and restricts necrosis，inflammation，and tumorigenesis〔J〕.Cancer Cell，2006;10(1):51-64.

6 Cosse JP，Michiels C.Tumour hypoxia affects the responsiveness of cancer cells to chemotherapy and promotes cancer progression〔J〕.Anticancer Agents Med Chem，2008;8(7):790-7.

7 Azad MB，Chen Y，Henson ES，et al.Hypoxia induces autophagic cell death in apoptosis-competent cells through a mechanism involving BNIP3〔J〕.Autophagy，2008;4(2):195-204.

8 Zhang H，Bosch-Marce M，Shimoda LA，et al.Mitochondrial autophagy is an HIF-1-dependent adaptive metabolic response to hypoxia〔J〕.J Biol Chem，2008;283(16):10892-903.