王海麗,葛長城,徐公義,趙德明
(1.聊城職業(yè)技術(shù)學(xué)院 聊城市畜禽疫病診療工程技術(shù)研究中心,山東聊城 252000;2.中國農(nóng)業(yè)大學(xué),北京 100193)
豬傳染性胸膜肺炎(Porcine contagious pleuropneumonia)是由豬胸膜肺炎放線桿菌 (Actinobacillus pleuropneumoniae,APP)引起的一種急性或慢性以肺炎和胸膜炎為特征的傳染病。該病可以通過空氣或豬之間相互接觸而傳播,近年來發(fā)病率日益增高,給養(yǎng)豬業(yè)造成了重大的經(jīng)濟(jì)損失,已成為危害養(yǎng)豬業(yè)最嚴(yán)重的疾病之一[1]。APP對(duì)患豬肺部防御系統(tǒng)的破壞,使此病往往與偽狂犬病、豬藍(lán)耳病等病毒性疾病混合或繼發(fā)感染,加大疾病的危害,造成更大的損失[2]。APP共有15種血清型,且各個(gè)國家流行的優(yōu)勢(shì)血清型各不相同[3]。不同血清型間及同一血清型不同菌株的毒力由多種因素決定,包括莢膜多糖、脂多糖、轉(zhuǎn)鐵結(jié)合蛋白、脲酶和RTX毒素等[4]。
RTX(repeat in toxin,RTX)是多種革蘭陰性菌產(chǎn)生的一種外毒素,具有可使脂質(zhì)雙層膜形成通道的特性。不同血清型的APP分別表達(dá)不同的溶血素(hemolysins)和細(xì)胞毒素(cytotoxins),即 ApxⅠ、ApxⅡ、ApxⅢ和ApxⅣ,都屬于細(xì)胞孔形成毒素。前3種Apx毒素既是APP致病的主要毒力因子,又是APP主要的保護(hù)性抗原[5]。ApxⅠ具有典型的RTX毒素單元結(jié)構(gòu)特征,具有很強(qiáng)的溶血活性和細(xì)胞毒性,分子質(zhì)量為105ku,它對(duì)豬的肺泡巨噬細(xì)胞和中性粒細(xì)胞也具有很強(qiáng)的細(xì)胞毒性作用,由毒力較強(qiáng)的血清1、5、9、10和11型表達(dá)并分泌[6]。ApxⅡ存在于除血清10型外的所有血清型。ApxⅢ被血清2、3、4、6、8、15型分泌;所有的血清型均能分泌ApxⅣ,據(jù)稱其只在體內(nèi)表達(dá),在體外培養(yǎng)基中不能誘導(dǎo)其表達(dá),故血清10型在體外培養(yǎng)只表達(dá)ApxⅠ[7]。ApxⅠ操縱子包括4個(gè)基因,分別為激活基因ApxⅠC、結(jié)構(gòu)毒素基因ApxⅠA和兩個(gè)分泌必需基因ApxⅠB和ApxⅠD。有證據(jù)顯示ApxⅠA基因是位于ApxⅠN端的疏水結(jié)構(gòu),是ApxⅠ的主要抗原位點(diǎn),能刺激機(jī)體產(chǎn)生中和保護(hù)性抗體[8]。
根據(jù)山 東 省 APP 血 清 型 特 點(diǎn)[9-10],本 試 驗(yàn) 以APP血清10型標(biāo)準(zhǔn)菌株天然分泌的外毒素ApxⅠ為免疫原,以血清5型ApxⅠN端1 149bp基因克隆、表達(dá)的融合蛋白為篩選抗原,研制了抗ApxⅠA單克隆抗體mAb,并對(duì)其生物學(xué)活性進(jìn)行了分析。
1.1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物、細(xì)胞系及菌株 6周齡Balb/c純系小鼠,由上海中科院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供(清潔級(jí));小鼠骨髓瘤細(xì)胞系(SP2/0)由中國農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物醫(yī)學(xué)院病理實(shí)驗(yàn)室保存并傳代;APP 3、5、7、10型標(biāo)準(zhǔn)菌株購自中國獸醫(yī)藥品監(jiān)察所;豬鏈球菌2型、豬多殺性巴氏桿菌、副豬嗜血桿菌、豬胸膜肺炎放線桿菌等菌株為聊城市畜禽疫病診療工程技術(shù)研究中心保存。APP血清10型豬陽性血清由聊城市畜禽疫病診療工程技術(shù)研究中心制備。
1.1.2 主要試劑 RPMI 1640為Gibco公司產(chǎn)品;HAT、HT為Invitrogen公司產(chǎn)品;PEG 1500為Roche公司產(chǎn)品;羊抗小鼠IgG-HRP為Promega公司產(chǎn)品;弗氏完全佐劑、弗氏不完全佐劑為Gibco BRL公司產(chǎn)品;HAT、HT、Mab亞類鑒定試劑盒為Sigma公司產(chǎn)品。
1.2.1 免疫原的提取及純化 將血清10型APP接種于含0.2mL/L NAD、50mL/L 犢牛血清、1 mmol/L CaCl2的LB液體培養(yǎng)基中,37℃振蕩培養(yǎng)12h(180r/min),培養(yǎng)物于4℃5 000r/min離心30 min,收集上清液。將上清緩慢加入飽和硫酸銨至60%飽和度,4℃過夜,經(jīng)4℃以5 000r/min離心30 min,收集沉淀,并用10mmol/L Tris-HCl緩沖液(pH 7.4)溶解;通過4℃透析、超濾管濃縮、Sephadex G-200凝膠層析純化Apx I。層析液用紫外分光光度法及SDS-PAGE進(jìn)行濃度、純度的鑒定。
1.2.2 基因的克隆與測(cè)序 根據(jù)GenBank登錄的ApxⅠA基因序列(AF363361),設(shè)計(jì)一對(duì)特異性引物:上游引物:5′-CCGGAATTCGAAAATGGTTTGGGAC(劃線部分為引入的EcoRⅠ的酶切位點(diǎn));下 游 引 物:5′-CCGGGATCCGAAGATTGCCTGTTTAG(劃線部分為引入的BamHⅠ酶切位點(diǎn))。將PCR產(chǎn)物回收后克隆至載體pMD18-T中,轉(zhuǎn)化至感受態(tài)E.coli BL21。通過限制性內(nèi)切酶篩選和鑒定陽性質(zhì)粒,并由上海博亞生物技術(shù)有限公司進(jìn)行序列測(cè)定,測(cè)定結(jié)果使用http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST 進(jìn)行同源性分 析,并應(yīng)用DNA Star軟件驗(yàn)證其閱讀框。
1.2.3 ApxⅠA原核表達(dá)載體的構(gòu)建 采用常規(guī)方法將ApxⅠA基因片段克隆至pET-32a載體中,并轉(zhuǎn)化BL21感受態(tài)細(xì)胞。對(duì)酶切鑒定的陽性質(zhì)粒進(jìn)行測(cè)序分析。
1.2.4 蛋白的表達(dá)、純化 選取高表達(dá)的pET-32a-apxⅠA重組體擴(kuò)大培養(yǎng)[11],IPTG 誘導(dǎo)目的蛋白的表達(dá)。培養(yǎng)液離心后的沉淀用PBS(pH 7.4)洗兩遍。用1/10培養(yǎng)液的PBS重懸菌體,冰浴下超聲碎菌30min(工作30s,間隔30s),于4℃12 000r/min離心15min,收集沉淀,用等體積含20 g/L十二烷基肌氨酸鈉(SKL)的 PBS(pH 7.4)重懸,震振溶解,4℃下至包涵體充分溶解后10 000 r/min離心10min,將上清轉(zhuǎn)入透析袋并加入終濃度為2g/L的PEG 4 000和終濃度為50mmol/L的氧化型谷胱甘肽與100mmol/L的還原性谷胱甘肽,用PBS(pH 8.0)4℃透析3d,每天換3次,不斷攪拌。SDS-PAGE分析重組蛋白表達(dá)情況。
1.2.5 抗原性鑒定 將純化的血清10型外毒素ApxⅠ蛋白及融合蛋白rApxⅠA進(jìn)行SDS-PAGE電泳,轉(zhuǎn)化至硝酸纖維素膜上,以APP血清10型豬陽性血清為一抗,Western blot分析。
1.2.6 動(dòng)物免疫 用制備的天然毒素加等量弗氏完全佐劑乳化,分多點(diǎn)皮下注射3只Balb/c小鼠(30μg/只~50μg/只),14d后將適量抗原加等量弗氏不完全佐劑乳化,進(jìn)行第2次免疫,14d后第3次免疫。三免10d后,斷尾取血液1滴,測(cè)抗體效價(jià)。選滴度高的1只小鼠,用50μg天然毒素不加佐劑,腹腔注射加強(qiáng)免疫。3d~4d后,無菌取小鼠脾臟,制備免疫脾細(xì)胞懸液。
1.2.7 檢測(cè)方法的建立 采用方陣滴定法確定間接ELISA所用包被抗原和抗體的最適工作濃度。將Balb/c小鼠陽性血清和陰性血清均做倍比稀釋,確定最適工作濃度。
1.2.8 細(xì)胞融合和單克隆抗體的篩選 按文獻(xiàn)[12]方法制備免疫小鼠脾細(xì)胞與SP2/0細(xì)胞,融合劑采用PEG 1 500。融合過程參考文獻(xiàn)[13]方法進(jìn)行。待融合細(xì)胞生長到培養(yǎng)孔底面積的1/3~1/2時(shí)采用間接ELISA方法篩選。選擇分泌抗體效價(jià)高、呈單個(gè)克隆生長、形態(tài)良好的雜交瘤細(xì)胞繼續(xù)克隆3次以上,直至抗體分泌陽性率達(dá)100%為止,及時(shí)液氮凍存并制備單抗腹水。
1.2.9 單克隆抗體的特異性及穩(wěn)定性鑒定
(1)間接ELISA鑒定單抗的特異性 用豬鏈球菌2型、豬多殺性巴氏桿菌、副豬嗜血桿菌37℃震蕩培養(yǎng)后,離心收取上清中蛋白,方法同APP外毒素的制備方法,包被ELISA板。腹水的工作濃度為1∶1 000,以間接ELISA測(cè)定4H3和11B5mAb特異性。
(2)Western blot鑒定 豬鏈球菌2型、豬多殺性巴氏桿菌、副豬嗜血桿菌培養(yǎng)物,加入IPTG誘導(dǎo)培養(yǎng)后,分別離心收集菌體裂解后進(jìn)行SDS-PAGE電泳,然后用濕法將蛋白轉(zhuǎn)印到硝酸纖維素膜上,80 V 轉(zhuǎn)印1.5h,PBST洗膜3次,5min/次,腹水按一定濃度稀釋后作用于膜4℃過夜,洗膜同上。加入1∶10 000稀釋的羊抗鼠IgG-HRP,室溫?fù)u床上作用2h,洗膜3次,DAB顯色。
(3)雜交瘤分泌抗體的穩(wěn)定性 對(duì)鑒定的2株陽性ApxⅠ雜交瘤細(xì)胞,分別液氮中保存細(xì)胞株。另外部分細(xì)胞傳30代以上,以間接ELISA檢測(cè)培養(yǎng)上清。細(xì)胞凍存6個(gè)月后復(fù)蘇細(xì)胞,顯微鏡下檢測(cè)細(xì)胞活性。
(4)單克隆抗體亞型鑒定 按鼠類單克隆抗體亞類鑒定試劑盒說明書鑒定Ig亞類,以O(shè)D490nm值明顯高于其他孔者,所加亞類血清判斷為單抗亞類。
從GenBank數(shù)據(jù)庫中下載APP血清1型(AF240779、X52899、X68595、U05042)、血清5型(U04954、CP000569、AF363361)、血 清 9 型(X73ll7)、血清10型 (D16582)ApxI A 基因序列,與去除酶切位點(diǎn)和保護(hù)性堿基的測(cè)序基因序列,進(jìn)行核核酸序列同源性比較發(fā)現(xiàn),同豬傳染性胸膜肺炎l、5、9、10型的 ApxI A基因同源性高達(dá)98.8%~100%。
質(zhì)粒用EcoRⅠ和BamHⅠ進(jìn)行雙酶切,凝膠電泳顯示,觀察到約1 049bp的目的片段,表明成功地構(gòu)建了含ApxⅠA基因片段的重組表達(dá)質(zhì)粒(圖1)。SDS-PAGE顯示,誘導(dǎo)后的重組菌在分子質(zhì)量約41ku處有一清晰的新生條帶,純化后獲得了較為純的單一蛋白條帶(圖2)。
圖1 重組質(zhì)粒pET-32a-apxⅠA的酶切鑒定Fig.1 Identification of recombinant plasmid pET-32a-apxⅠA by enzyme digestion
獲得的天然外毒素,經(jīng)硫酸銨純化、濃縮后,經(jīng)紫外分光光度計(jì)測(cè)定蛋白濃度為1.9mg/mL。Western blot檢測(cè)蛋白大小約105ku(圖3)。
圖2 表達(dá)產(chǎn)物的SDS-PAGE分析Fig.2 SDS-PAGE analysis of fusion protein rApxⅠA
圖3 天然外毒素SDS-PAGE分析結(jié)果Fig.3 SDS-PAGE analysis of natural outer toxin
Western blot的結(jié)果顯示,提取的APP天然外毒素ApxⅠ在相對(duì)分子質(zhì)量在105ku處與APP豬陽性血清發(fā)生特異性反應(yīng)條帶;原核表達(dá)的融合蛋白約在41ku處與APP豬陽性血清發(fā)生特異性反應(yīng)條帶,表明制備的融合蛋白具有特異性(圖4)。
細(xì)胞融合后5d觀察,細(xì)胞的融合率為100%,抗體檢測(cè)陽性率為51%。選擇其中4個(gè)抗體陽性的融合細(xì)胞孔細(xì)胞株進(jìn)行了3~5次克隆化,最終獲得細(xì)胞陽性率為100%,分泌穩(wěn)定、形態(tài)良好的細(xì)胞株共2株。
在490nm波長下,腹水與rApxⅠA蛋白、APP 10型作用數(shù)值,明顯高于APP 3型、APP 7型、豬鏈球菌2型、豬多殺性巴氏桿菌、副豬嗜血桿菌的數(shù)值(圖5),說明4H3、11B5兩株抗ApxⅠ單克隆抗體有良好的特異性。
圖4 蛋白的Western blot分析Fig.4 Western blot analysis of proteins
圖5 ApxⅠA mAb特異性檢測(cè)Fig.5 Specific detection of ApxⅠA mAb
2株ApxⅠA單克隆抗體腹水與APP 3型、APP 7型、豬鏈球菌2型、豬多殺性巴氏桿菌、副豬嗜血桿菌的裂解液沒有反應(yīng)條帶,而與rApxⅠA、APP 10型分別在相對(duì)分子質(zhì)量約41ku和100ku處有棕色反應(yīng)條帶(圖6),表明2株單克隆抗體具有良好的反應(yīng)原性。
上述2株雜交瘤細(xì)胞分泌的單克隆抗體腹水效價(jià)在1∶104~1∶105;單克隆細(xì)胞株在培養(yǎng)24h且有很強(qiáng)的活力下,吸取培養(yǎng)上清進(jìn)行測(cè)定。上清中單抗效價(jià)為1∶256~1∶512之間(表1)。表明連續(xù)傳代的雜交瘤細(xì)胞培養(yǎng)液上清中抗體效價(jià)沒有降低。
圖6 Western blot鑒定mAb特異性Fig.6 Specific detection mAb by Western blot
上述2株雜交瘤細(xì)胞體外傳30代后,間接ELISA檢測(cè)培養(yǎng)上清中的mAb,其效價(jià)基本不變。保存于液氮中的雜交瘤細(xì)胞凍存6個(gè)月后其效價(jià)基本不變(表1),說明獲得的2株雜交瘤細(xì)胞系穩(wěn)定性好。
4H3mAb分子的亞類為IgG3;11B5mAb的分子亞類為IgG2a。
表1 單克隆抗體效價(jià)檢測(cè)Table 1 Detection titers of monoclonal antibodies
APP溶血毒素Apx I分子質(zhì)量為105ku,是分泌到APP菌體外的一類外毒素,對(duì)豬的肺泡巨噬細(xì)胞和中性粒細(xì)胞也具有很強(qiáng)的細(xì)胞毒性作用,由毒力較強(qiáng)的血清1、5、9、10和11型表達(dá)并分泌,其中APP血清10型包括ApxⅠ和ApxⅣ兩種Apx毒素,而體外培養(yǎng)中不會(huì)產(chǎn)生ApxⅣ毒素[14]。本研究的制備采用APP 10型標(biāo)準(zhǔn)株體外培養(yǎng)法獲取天然ApxⅠ蛋白。Apx I分泌量相對(duì)較少,受多種因素的影響。由于APP 10型是依賴NAD的Ⅰ型,低濃度NAD的培養(yǎng)條件能夠使APP分泌更多的毒素[15],另外,培養(yǎng)液中游離的Ca2+可影響ApxⅠ的分泌[16],筆者在LB培養(yǎng)液中加入0.2g/L NAD和終濃度為1mmol/L的CaCl2,在此條件下培養(yǎng)12h時(shí)Apx I的分泌量達(dá)到最大。在Apx I純化時(shí),將Sephadex G-200凝膠過濾層析、超濾管超濾同時(shí)進(jìn)行,由于超濾管具有濃縮作用,這樣較使用聚乙二醇濃縮既可以保證Apx I活性不會(huì)降低,而且也提高了樣品的純度及產(chǎn)量,滿足了研究的需要。
據(jù)報(bào)道,ApxⅠ的N-端蛋白免疫原性良好,可以抵抗特異性菌致死劑量的攻擊,對(duì)鼠可誘發(fā)保護(hù)性免疫,基本可以達(dá)到ApxⅠ的免疫效果。ApxⅠA位于ApxⅠ的N端,本研究構(gòu)建了APP pET-32aapxⅠA表達(dá)質(zhì)粒,可表達(dá)ApxⅠA融合蛋白以用于單克隆抗體的篩選,為研究ApxⅠA的生物學(xué)活性及其在疾病和疫苗免疫中的作用奠定了基礎(chǔ)。
在單克隆抗體制備過程中,陽性克隆的篩選選擇表達(dá)純化的融合蛋白rApxⅠA為包被抗原,采用間接ELISA檢測(cè),避免了融合蛋白中His Tag標(biāo)簽蛋白的干擾,確保了單克隆抗體的特異性。通過方陣滴定法確定了間接ELISA抗原的包被濃度與腹水的最佳稀釋度分別為1∶160(此時(shí)蛋白濃度約為50μg/mL)和1∶1 000。研制出的2株分泌抗ApxⅠA的雜交瘤細(xì)胞系經(jīng)ELISA和Western blot鑒定,具有良好的特異性和穩(wěn)定性,為進(jìn)一步建立豬胸膜肺炎放線桿菌檢測(cè)方法奠定了基礎(chǔ)。
[1]Tascon R I,Vazquez Boland J A,Gutierrez Martin C B,et al.Virulence factors of the swine pathogenActinobacilluspleuropneumoniae[J].Microbiol SEM ,1996,12:171-184.
[2]Enriquez-Verdugo I,Guerrero A L,Serrano J,et al.Adherence ofActinobacilluspleuropneumoniaeto swine-lung collagen[J].Mirobiology,2004,150:2391-2400.
[3]Blackall P J,Klaasen H L,Van Den Bosch P,et al.Proposal of a new serovar ofActinobacilluspleuropneumoniae:serovar 15[J].Vet Microbiol,2002,84(1-2):47-52.
[4]Haesebrouck F,Chiers K.Actinobacilluspleuropneumoniaeinfection in pigs:the role of virulence factors in pathogenesis and protection[J].Vet Microbiol,1997,58:239-249.
[5]Maier E,Reihhard N,Benz R,et a1.Channel-forming activity and channel size of the RTX toxins ApxⅠ,ApxⅡand ApxⅢofActinobacilluspleuropneumoniae[J].Infect Immun,1996,64:4415-4423.
[6]Boekema B K,Kamp E M,Smits M A,et al.Both ApxⅠand ApxⅡofActinobacilluspleuropneumoniaeserotype 1are necessary for full virulence[J].Vet Microbiol,2004,100(1-2):17-23.
[7]Beck M,Ven Den Bosen J F,Jongendlen M C A,et al.RTX toxin genotyoes and phenotypes inActinobacilluspleuropneumoniaefield strins[J].J Clin Microbiol,1994,32:2749-2753.
[8]Sea J N,F(xiàn)rey J,Kwang J.The N-terminal domain of RTX toxin ApxⅠofActinobacilluspleuropneumoniaeelicits protective immunity in mice[J].Infec Immun,2002,70(11):6464-6467.
[9]徐公義,王海麗,刁有祥,等.豬胸膜肺炎放線桿菌血清型與溶血毒素型的調(diào)查[J].中國獸醫(yī)雜志,2008,44(6):37-38.
[10]王海麗,徐公義,葛長城,等.豬胸膜肺炎放線桿菌種及血清1,5,7型多重PCR檢測(cè)方法的建立[J].中國獸醫(yī)科學(xué),2009,39(8):728-732.
[11]徐公義,王海麗,葛長城,等.豬胸膜肺炎放線桿菌APXⅠ A蛋白的截?cái)啾磉_(dá)與鑒定[J].畜牧與獸醫(yī),2008,40(10):67-69.
[12]朱立平,陳學(xué)清.免疫學(xué)常用實(shí)驗(yàn)方法[M].北京:人民軍醫(yī)出版社,2000:23-74.
[13]孫 煒,王鐵成,楊松濤,等.犬瘟熱病毒單克隆抗體的制備及鑒定[J].動(dòng)物醫(yī)學(xué)進(jìn)展,2011,32(3):73-77.
[14]胡成名,文心田,曹三杰,等.豬胸膜肺炎放線桿菌Apx毒素的分子生物學(xué)與致病機(jī)理[J].動(dòng)物醫(yī)學(xué)進(jìn)展,2007,28(7):94-98.
[15]王 輝,刁有樣,孟凡磊.不同NAD含量條件下培養(yǎng)的豬胸膜肺炎放線桿菌對(duì)小白鼠致病性和免疫保護(hù)性的影響[J].福建農(nóng)林大學(xué)學(xué)報(bào),2007,36(4):400-404.
[16]王春來,楊旭夫,劉 杰.胸膜肺炎放線桿菌溶血毒素特性鑒定及免疫原性研究[J].中國預(yù)防獸醫(yī)學(xué)報(bào),2001,23(3):209-213.