蘭洲,田鐵輝,關紅峰,華會明,劉曉秋*
(1.沈陽藥科大學中藥學院,遼寧 沈陽 110016;2.沈陽藥科大學高職學院,遼寧 沈陽 110032)
柳穿魚黃酮類成分的提取工藝優(yōu)化
蘭洲1,田鐵輝2,關紅峰1,華會明1,劉曉秋1*
(1.沈陽藥科大學中藥學院,遼寧 沈陽 110016;2.沈陽藥科大學高職學院,遼寧 沈陽 110032)
目的:優(yōu)化柳穿魚中黃酮類成分的提取工藝。方法:采用正交試驗方法,以分光光度法測定總黃酮的含量和HPLC法測定柳穿魚苷的含量為指標,確定柳穿魚中黃酮類成分的提取工藝。結果:最佳提取工藝為80%乙醇8倍量,回流提取2次,每次1 h。結論:此提取工藝合理可行,為柳穿魚的進一步研究提供參考。
柳穿魚;黃酮;提取工藝;分光光度法;HPLC
柳穿魚為玄參科(Scrophlariaceae)植物柳穿魚Linaria vulgarissubsp.sinensis(Bebeaux)Hong的干燥全草。具有清熱解毒,散瘀消腫之功效。該植物的化學成分有黃酮類[1]、環(huán)烯醚萜苷類[2]、生物堿類[3]、三萜類[4]等。民間主要用于黃疸、頭痛、頭暈、痔瘡便秘、皮膚病和燙傷[5]。其主要成分為黃酮類化合物,具有抗炎、降血壓、抗癌、鎮(zhèn)痛等多種藥理活性[6-9]。黃酮類成分中含有柳穿魚苷、蒙花苷、乙酰蒙花苷、柳穿魚苷元、刺槐素、木犀草素、香葉木素、白楊素[1],其中柳穿魚苷為黃酮類的主要成分[10-12]。目前,尚沒有關于柳穿魚黃酮提取工藝的報道,本文以HPLC測定柳穿魚苷的含量和分光光度法測定總黃酮的含量為指標,通過正交設計優(yōu)選黃酮類成分的提取工藝,為柳穿魚的開發(fā)和合理利用提供依據(jù)。
UV-2100紫外分光光度計(日本島津公司),RE5-CS旋轉蒸發(fā)器(上海亞榮生化儀器廠),SHB-Ⅲ循環(huán)水式多用真空泵(鄭州長城科工貿(mào)有限公司),高效液相色譜儀(LC-10Atvp泵、DAD檢測器、CLASS-VP工作站,日本Shimadzu公司)。Diamonsil ODSC18色譜柱(250 mm×4.6 mm,5μm,北京迪馬科技公司)。
柳穿魚藥材于2008年9月采自哈爾濱江北郊區(qū),經(jīng)內(nèi)蒙古醫(yī)學院喬俊纏教授鑒定為柳穿魚Linaria vulgarissubsp.sinensis(Bebeaux)Hong的干燥全草。柳穿魚苷(本實驗室自制,純度為99.2%)。柳穿魚苷對照品(純度質(zhì)量分數(shù)>98%,自制),乙腈(色譜純,天津康科德科技有限公司),甲醇(色譜純,天津康科德科技有限公司),純凈水(杭州娃哈哈集團有限公司),其他試劑(分析純,市售)。
2.1.1 對照品溶液的制備 取柳穿魚苷對照品約5 mg,精密稱定。加80%乙醇制成每1 mL含0.212 mg的溶液,作為對照品溶液。
2.1.2 供試品溶液的制備 取藥材約0.5 g,精密稱定,置50 mL量瓶中,用80%乙醇稀釋至刻度,精密吸取上清液1mL,置25mL量瓶中,用80%乙醇稀釋至刻度,搖勻,即得。
2.1.3 測定波長的選擇 精密量取供試品溶液和對照品溶液適量,在200~400 nm對供試品溶液和對照品溶液掃描,供試品和對照品均在330 nm處有最大吸收,故確定330 nm為測定波長。
2.1.4 標準曲線的繪制 分別精密吸取 “2.1.1”項下的柳穿魚苷對照溶液 0.2,0.4,0.5,0.6,0.7 mL,加80%乙醇至10mL,搖勻,于330 nm波長處測定吸光度。以吸光度(A)為縱坐標,對照品量(X)為橫坐標繪制標準曲線,得回歸方程A=4.450×10-2X+8.500×10-3,r=0.999 1(n=5)。表明柳穿魚苷在4.24~14.84μg·mL-1呈良好的線性關系。
2.1.5 精密度試驗 取同一批藥材約0.5 g,精密稱定,按 “2.1.2”制備供試品溶液。取溶液分別在330 nm波長處重復測定5次,測得5次吸光度平均值為0.306,RSD=1.0%。表明儀器精密度良好。
2.1.6 穩(wěn)定性試驗 取 “2.1.5精密度試驗”項下的供試品溶液,在0,2,4,8,12 h測定吸光度,測得5次吸光度平均值為0.309,RSD=1.5%,表明樣品溶液在12 h內(nèi)基本穩(wěn)定。
2.1.7 重復性試驗 分別取同批藥材6份,各約0.5 g,精密稱定,按 “2.1.2”制備供試品溶液。取溶液分別在330 nm波長處測定吸光度,計算總黃酮的含量,測得平均含量為2.8%,RSD=2.6%。表明重復性良好。
2.1.8 加樣回收率試驗 取已知含量的1號藥材粉末約0.25 g,精密稱定,加入適量的柳穿魚苷對照品約3.7 mg。按 “2.1.2”制備供試品溶液。取溶液在330 nm下測定吸光度,計算總黃酮含量,平均回收率為98.9%,RSD=3.0%。
2.1.9 樣品的測定 取3批藥材適量,按照“2.1.2”制備供試品溶液,測定吸光度,根據(jù)回歸方程計算藥材中總黃酮的量,結果發(fā)現(xiàn),總黃酮的含量分別為2.92%,2.91%,2.81%。
2.2.1 供試品溶液的制備 取藥材約0.5 g,精密稱定,置50 mL量瓶中,加體積分數(shù)為80%的乙醇50 mL,加熱回流30 min,濾過,取濾液10 mL,濃縮至5 mL,經(jīng)0.45μm微孔濾膜濾過,即得供試品溶液。
2.2.2 樣品的測定 取 “2.2.1”項下供試品溶液,按照文獻[13]所建立的HPLC方法,對柳穿魚苷進行含量測定。結果表明,3批藥材柳穿魚苷的含量分別為1.52%,1.50%,1.45%。
根據(jù)單因素分析結果和實際情況,對提取時間(A)、提取次數(shù)(B)、溶劑倍量(C)及乙醇濃度(D)4個因素進行考察,每個因素選擇3個水平,采用L9(34)正交表安排試驗,以柳穿魚中總黃酮和柳穿魚苷含量為考察指標,因素水平安排見表1。
表1 柳穿魚總黃酮提取工藝正交試驗因素水平表
按照 “2.1”項下及 “2.2”項下方法操作,以總黃酮和柳穿魚苷含量為指標,計算結果及進一步的方差分析分別見表2和表3。
表2 正交試驗結果
表3 方差分析表
由表2直觀分析結果表明,以總黃酮成分含量為指標,各因素對指標成分的提取率的影響依次為B>D>A>C,最佳工藝為A3B2C3D3;以柳穿魚苷的含量為指標,各因素對指標成分的提取率的影響依次為D>B>A>C,最佳工藝為A3B2C2D3。
由表3方差分析結果表明,B因素(提取次數(shù))和D因素(乙醇濃度)對總黃酮提取率有影響(P<0.1),對柳穿魚苷的提取率則有顯著性影響(P<0.05)。而A因素(提取時間)和C因素(溶劑倍量)因素的影響不大,對于A因素,結合直觀分析可選擇A2(60 min);對于C因素(溶劑倍量),從節(jié)約溶劑的角度考慮,可選擇C2(8倍量)。最后確定工藝工藝為A2B2C2D3。
取3份藥材各約10 g,精密稱定。按A2B2C2D3提取,即80%乙醇8倍量回流提取2次,每次1 h,測得的總黃酮與柳穿魚苷量分別為23.8,9.2 g·kg-1;25.5,11.7 g·kg-1;24.6,10.5 g·kg-1;與預測值基本一致,結果表明該提取工藝較合理。
根據(jù)文獻報道,柳穿魚中主要的黃酮類成分為柳穿魚苷、蒙花苷、乙酰蒙花苷、刺槐素和柳穿魚苷元等,紫外最大吸收波長分別都在270 nm和330 nm附近,而其中環(huán)烯迷萜苷類、生物堿類和三萜類成分在此波長下均無紫外吸收,因此對總黃酮及柳穿魚苷的測定均不產(chǎn)生干擾。
柳穿魚中主要的黃酮類成分柳穿魚苷、蒙花苷等在水、甲醇及乙醇中溶解性較差,而易溶于熱甲醇和熱乙醇中,因此采用加熱回流提取法進行回流提取。
[1]華會明,孫軍,李銑.柳穿魚黃酮成分的研究[J].中藥材,1999,30(5):332-334.
[2]Esposito P,ScarpatiM L.IridoidⅨ 10-O-β-glucosil-aucubia dallaLinaria vulgaris[J].Gazz Chim Ital,1970,100:836-845.
[3]華會明,樸奉花,王素賢,等.柳穿魚新生物堿的研究[J].沈陽藥科大學學報,1997,14(3):219.
[4]華會明,侯柏玲,李文,等.柳穿魚中三萜類化合物的研究[J].中草藥,2000,31(6):409-412.
[5]江蘇新醫(yī)學院.中藥大辭典(下冊)[M].上海:上海人民出版社,1977:1526.
[6] Esther Del Olmo, Arturo San Feliciano.Chem ical Constituents of Linaria aucheri[J].Turk JChem,2004,28:133-139.
[7]Hyun LIM,Kun Ho SON,Hyeun Wook CHANG,et al.Anti-inflammatory Activity of Pectolinarigenin and Pectolinarin Isolated fromCirsium chanroenicum[J].Biol.Pharm.Bull,2008,31:2063-2067.
[8]Rosa Tundis,Brigitte Deguin,Monica R.Loizzo,et al.Potential antitumor agents:Flavones and their derivatives fromLinaria reflexaDesf[J].Med.Chem.Lett,2005,15:4757-4760.
[9]Monica Rosa Loizzoa,Rosa Tundis,F(xiàn)ederica Menichini,et al.Acetyl-cholinesterase Inhibition by Extracts and Isolated Flavones fromLinaria reflexaDesf.(Scrophulariaceae)[J].Nat.Prod.Com,2007,2:759-763.
[10]VALDE’S B.Flavonoid pigments in flower and leaf of the genusLinaria(Scrophulariaceae)[J].Phytochem,1970,9:1253-1260.
[11]Hua Huim ing,Cheng Maosheng,Li Xian,et al.A new phyrroloquinazoline alkaloid fromLinaria vulgaris[J].Chem Pharm Bull,2002,50(10):1393-1394.
[12]EMI IA I,NEDJALKA H,SIMEON S.Iridoid glucosides fromLinaria vulgaris[J].Phtochem,1992,31(3):1040-1041.
[13]關宏峰,劉曉秋,蘭洲,等.HPLC法同時測定中藥柳穿魚中柳穿魚苷和橙皮苷的含量[J].沈陽藥科大學學報,2009,26(2):119-122.
Optimization of Extraction Process of Flavonoids from Linaria Vulgaris
Lan Zhou1,Tian Tiehui2,Guan Hongfeng1,Hua Huiming1,Liu Xiaoqiu1
(1.School of Traditional Chinese Materia Medica,Shenyang Pharmaceutical University,Shenyang Liaoning110016,China;2.Higher Vocational Technology College of Shenyang Pharmaceutical University,Shenyang Liaoning110032,China)
Objective:To optimize the conditions for extraction of flavonids fromLinaria vulgaris.Methods:The extraction conditions were studied by the orthogonal design with the content of total flavonoids and pectolinarin as indexes.Results:The optimum conditions were as follows Adding 8 times amount of 80%(V∶V)ethanol,and extracting for two times,1 h each times.Conclusion:The optimized method is reasonable and feasible for flavonids fromLinaria vulgarisssp.sinensis,and can provide a reference for further research.
Linaria vulgaris;Flavonoids;Extraction process;Spectrophotometry;HPLC
*劉曉秋,E-mail:liuxiaoqiu3388@tom.com
2010-05-18)