胡紅蓮 盧德勛 劉大程 珊 丹 李勝利 張春華 石 巖
(1.內(nèi)蒙古農(nóng)牧業(yè)科學(xué)院動物營養(yǎng)研究所,呼和浩特010030;2.內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué)動物科學(xué)與醫(yī)學(xué)學(xué)院,呼和浩特010018)
隨著飼養(yǎng)集約化程度的不斷加強(qiáng)和對產(chǎn)奶量要求的提高,使得亞急性瘤胃酸中毒(subacute ruminal acidosis,SARA)成為現(xiàn)代奶業(yè)中危害最大,最常見的疾病之一,造成了不可估量的經(jīng)濟(jì)損失,已引起了營養(yǎng)學(xué)界極大的關(guān)注。大量研究表明,無論是急性瘤胃酸中毒還是SARA其發(fā)生的根本原因是動物采食過量或大量的易發(fā)酵碳水化合物飼料。大多數(shù)研究者均采用精粗比進(jìn)行量化研究,肖訓(xùn)軍[1]報道精料水平為70%時誘發(fā)綿羊發(fā)生SARA;常影[2]報道當(dāng)精料水平達(dá) 80%時,誘導(dǎo)閹牛發(fā)生SARA。然而日糧精粗比這一指標(biāo)較為籠統(tǒng),只能粗略而不能精準(zhǔn)地說明日糧中易發(fā)酵碳水化合物的真正含量和營養(yǎng)物質(zhì)之間相互平衡,因?yàn)椴徽撌蔷线€是粗料各自都包括可發(fā)酵碳水化合物和纖維物質(zhì),只是比例和含量不同而已。因此,當(dāng)日糧精粗比上升引起瘤胃pH下降時,就很難判斷究竟是由于NFC還是易消化纖維過多造成的。非纖維性碳水化合物(non-fiber carbohydrate,NFC)包括日糧中極易發(fā)酵的碳水化合物部分如淀粉、糖、果膠和有機(jī)酸等在內(nèi),能夠較為全面體現(xiàn)日糧中易發(fā)酵碳水化合物的含量,中性洗滌纖維(neutral detergent fiber,NDF)則能全面體現(xiàn)日糧中纖維物質(zhì)含量。迄今為止,日糧易發(fā)酵碳水化合物的攝入量究竟達(dá)到多大時才能引起反芻動物發(fā)生SARA,改變瘤胃發(fā)酵模式,還鮮有報道,因此有必要對此進(jìn)行研究。
選用6只體重30~35 kg的泌乳初期經(jīng)產(chǎn)關(guān)中奶山羊,安裝永久性瘤胃瘺管。試驗(yàn)日糧參照NRC(1981)[3]奶山羊飼養(yǎng)標(biāo)準(zhǔn),并結(jié)合我國奶山羊飼養(yǎng)標(biāo)準(zhǔn)[4]配制,以玉米、豆粕、麥麩、青干草為主要原料,按照日糧中NFC與NDF比例的不同分為Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ4組(分 4期進(jìn)行試驗(yàn)),其NFC/NDF比分別為1.02、1.24、1.63、2.58。日糧組成及營養(yǎng)水平見表1。
表1 日糧組成及營養(yǎng)水平(風(fēng)干基礎(chǔ))Table 1 Composition and nutrient levels of the diets (air-dry basis,%)
采用自身對照試驗(yàn)設(shè)計,試驗(yàn)動物依次飼喂NFC/NDF比分別為 1.02(Ⅰ期)、1.24(Ⅱ期)、1.63(Ⅲ期)、2.58(Ⅳ期)的4種日糧(即Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ和Ⅳ組),每期 10 d,包括7 d預(yù)試期和 3 d正試期。試驗(yàn)動物單籠飼養(yǎng),先喂粗料后喂精料,日喂2次(分別在06:00和18:00),自由飲水。
1.3.1 瘤胃液的采集與分析測定
每個采樣期分別在飼喂前(0 h)及采食后3、6、9和12 h采集瘤胃液,每次采集20 mL,用4層紗布過濾,濾液經(jīng)3 500 r/min離心 10 min,取4 mL上清液加到裝有1 mL 25%偏磷酸的樣品瓶中用于測定揮發(fā)性脂肪酸(volatile fatty acid,VFA),其余上清液留樣備測乳酸,于-20℃冷凍保存。VFA采用GC-7A氣相色譜儀測定(檢測器:FID;色譜柱:柱長2 m、內(nèi)徑3 mm的不銹鋼柱;測定條件:柱溫150℃,汽化室溫度230℃,空氣壓力0.35 kg/cm2,空氣流速140 mL/min,氫氣壓力1.2 kg/cm2,氫氣流速14 mL/min,氮?dú)?載氣)流速 55 mL/min,進(jìn)樣量1 μ L)。乳酸測定方法參照文獻(xiàn)[1]。
1.3.2 血液的采集與分析測定
每個采樣期最后1天分別于飼喂前(0 h)及采食后3、6、9和12 h采集試驗(yàn)羊頸靜脈血10 mL,肝素鋰抗凝,2 000 r/min離心10 min,制取血漿,吸取血漿1 mL,緩慢加入到裝有8 mL蒸餾水的錐形瓶,再加入0.333 mol/L硫酸溶液 0.5 mL,靜置使其酸化完全再加入10%鎢酸鈉溶液0.5 mL,2 500 r/min離心10 min,制得無蛋白血濾液,然后上機(jī)測定VFA含量。
1.3.3 瘤胃pH實(shí)時監(jiān)測
采用動態(tài)pH連續(xù)監(jiān)測記錄系統(tǒng)對測試期每日pH進(jìn)行24 h動態(tài)監(jiān)測。動態(tài)pH連續(xù)監(jiān)測記錄系統(tǒng)主要由pH電極(450 CD,美國Sensorex有限公司生產(chǎn))、pH變送器(692型,美國Jenco有限公司生產(chǎn))和無紙記錄儀(R4100型,浙大中控儀表有限公司生產(chǎn))3部分組成。設(shè)定每隔5 s顯示1次pH,每隔10 min記錄1次pH,將每日所采集的pH數(shù)據(jù)運(yùn)用Excel進(jìn)行處理分析。
采用SPSS 11.5版統(tǒng)計軟件中One-way ANOVA過程進(jìn)行方差分析,并采用Duncan氏法進(jìn)行多重比較。結(jié)果以平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤來表示。
由圖1和表2可知,瘤胃pH與采食時間呈曲線變化,各期飼喂前瘤胃pH均較高,采食后3~6 h瘤胃pH達(dá)到最低值。同一日糧不同時間點(diǎn)pH隨著采食后時間推移逐漸下降,于3~6 h降到最低值,而后又逐漸上升,周而復(fù)始隨采食時間呈周期性動態(tài)變化。不同日糧同一時間點(diǎn)pH變化基本趨勢為Ⅳ期最低,Ⅲ期低于Ⅱ期和Ⅰ期。隨著日糧NFC含量增加,瘤胃pH下降速率和幅度隨之加大,瘤胃pH平均值、最低值、最大值隨著日糧NFC/NDF比的增加而呈降低趨勢,日糧NFC/NDF比的增加對瘤胃pH<5.2持續(xù)時間沒有顯著差異(P>0.05),但對瘤胃pH<5.8和6.0持續(xù)時間有顯著的影響(P<0.05),瘤胃pH<5.5持續(xù)時間Ⅳ期顯著高于Ⅰ 、Ⅱ、Ⅲ期(P<0.05),Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ期之間沒有顯著差異(P>0.05)。同一日糧不同pH持續(xù)時間隨pH下降而降低,而不同日糧同一pH持續(xù)時間隨日糧NFC/NDF比的增加而增加。
圖1 日糧不同NFC/NDF比對奶山羊瘤胃pH動態(tài)變化的影響Fig.1 Effects of different dietary NFC/NDF ratios on ruminal pH dynamics in dairy goats
表2 日糧不同NFC/NDF比對奶山羊瘤胃pH最大值、最小值、平均值及pH低于6.0、5.8、5.5、5.2 持續(xù)時間的影響Table 2 Effects of different dietary NFC/NDF ratios on ruminal maximum,minimum,mean values of pH and duration time when pH under 6.0,5.8,5.5 and 5.2 in dairy goats
2.2 日糧不同NFC/NDF比對奶山羊瘤胃VFA及乳酸含量的影響
由表3可知,隨著日糧NFC/NDF比的提高,瘤胃總揮發(fā)性脂肪酸(total volatile fatty acid,TVFA)、丙酸和丁酸含量均呈現(xiàn)增加趨勢,Ⅳ期達(dá)到最高值,顯著高于Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ期(P<0.05);丙酸和丁酸含量在Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ期之間沒有顯著差異(P>0.05);TVFA 含量除采食后3、6、12 h,Ⅰ 、Ⅱ 、Ⅲ期之間沒有顯著差異(P>0.05)。乙酸含量和A/P變化是隨著日糧NFC/NDF比的提高而呈現(xiàn)先增加后降低的趨勢,乙酸含量和A/P以Ⅳ期最低,顯著低于Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ期(P<0.05),Ⅱ期乙酸含量和A/P最高,乙酸含量除采食后3、6、12 h,A/P 除采食后3、12 h外,其他時間點(diǎn)在Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ期之間差異不顯著(P>0.05)。同一日糧,瘤胃乙酸、丙酸、丁酸及TVFA含量隨采食時間呈現(xiàn)先升高后下降趨勢,于采食后3~6 h達(dá)到其峰值。Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ期未檢測到乳酸,Ⅳ期雖檢測到乳酸,但其含量較低,不同時間點(diǎn)均低于 0.1 mmol/L,且差異不顯著(P>0.05)。
表3 日糧不同NFC/NDF比對奶山羊瘤胃VFA及乳酸含量的影響Table 3 Effects of different dietary NFC/NDF ratios on ruminal VFA and lactate content in dairy goats(mmol/L)
由表4可知,血漿乙酸、丙酸、丁酸及TVFA含量都呈現(xiàn)出隨日糧NFC/NDF比提高而增加的趨勢。在0~3 h,日糧NFC/NDF比提高對血漿乙酸含量沒有顯著影響(P>0.05),在采食后6~9 h,Ⅳ期乙酸含量顯著高于Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ期(P<0.05),但Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ期之間無顯著差異(P>0.05);Ⅰ 、Ⅱ、Ⅲ期日糧NFC/NDF比對血漿丙酸和TVFA含量無顯著影響(P>0.05),Ⅳ期達(dá)到了最高值,顯著高于Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ期(P<0.05);血漿丁酸含量隨著日糧NFC/NDF比提高而有所提高,但差異不顯著(P>0.05)。在同一日糧情況下,血漿乙酸、丙酸、丁酸及TVFA含量均隨采食時間呈現(xiàn)先升高后下降的趨勢,于采食后6 h達(dá)到其峰值。
表4 日糧不同NFC/NDF比對奶山羊血漿VFA含量的影響Table 4 Effects of different dietary NFC/NDF ratios on plasma VFA content in dairy goats (mmol/L)
瘤胃pH是一項(xiàng)反映瘤胃發(fā)酵水平最基本、最重要的指標(biāo)之一,是瘤胃發(fā)酵的“引領(lǐng)者”,對維持瘤胃內(nèi)環(huán)境相對恒定起到了主導(dǎo)作用。影響瘤胃pH的因素很多,主要包括日糧性質(zhì)、唾液分泌量、有機(jī)酸生成、吸收和排出速度等等,但其波動的根本原因則是日糧結(jié)構(gòu)與營養(yǎng)水平[5]。本試驗(yàn)結(jié)果表明,瘤胃pH下降速率和下降幅度隨著日糧NFC/NDF比的增大而隨之加大,Ⅳ期表現(xiàn)最為突出,采食后短時間內(nèi)呈線性下降,各時間點(diǎn)pH均顯著低于前3期(P<0.05),瘤胃pH最低值不僅出現(xiàn)時間較早,其值也顯著低于前3期(P<0.05),這說明瘤胃pH波動幅度隨著日糧NFC/NDF比的增大而明顯加大(表2)。隨著日糧NFC/NDF比的增大,瘤胃pH均值從6.09降至5.66(P<0.05),最大值從6.58降至6.22(P<0.05),最低值則從5.65降至5.22(P <0.05);不僅如此,瘤胃 pH 低于 5.2、5.5、5.8和6.0所持續(xù)時間也在逐漸延長,即瘤胃pH<6.0持續(xù)時間分別為 9.40、12.16、18.22和20.53 h/d,瘤胃pH<5.8持續(xù)時間分別為2.42、5.92、11.22和17.06 h/d,瘤胃pH<5.5持續(xù)時間分別則為0、0.11、0.67和7.50 h/d,這些數(shù)據(jù)表明日糧結(jié)構(gòu)對瘤胃pH產(chǎn)生了顯著的影響。Nocek等[6]研究表明,瘤胃pH下降速率、幅度以及最低值所持續(xù)的時間均隨日糧谷物含量的增加而增加,本試驗(yàn)數(shù)據(jù)與此結(jié)論一致。
瘤胃pH也是衡量瘤胃酸中毒程度的關(guān)鍵指標(biāo)[6],目前大多數(shù)研究者將5.2作為衡量急性瘤胃酸中毒發(fā)生時pH閾值[7-8],而SARA發(fā)生時pH閾值卻存在較大分歧,主要集中于 6.0[9]、5.8[10]、5.5[11]。最新研究常以瘤胃pH平均值、最低值以及低于某個閾值所持續(xù)時間和曲線面積大小來判斷SARA的嚴(yán)重程度[7-8],但這些閾值所持續(xù)的時間目前還沒有一個統(tǒng)一標(biāo)準(zhǔn)。在本研究中,瘤胃pH低于6.0、5.8、5.5的持續(xù)時間及曲線面積隨著日糧NFC/NDF比的增加而增加,進(jìn)入Ⅱ期每日有12 h/d以上時間瘤胃處于pH<6.0的酸性環(huán)境,pH<5.8長達(dá)5.92 h/d,Ⅲ期每日pH<6.0長達(dá)18 h/d以上,pH<5.8也長達(dá) 11 h/d以上。Keunen等[12]報道,奶牛處于 SARA狀態(tài),瘤胃 pH<6.0長達(dá)10.5 h以上,若以6.0或5.8作為SARA發(fā)生時pH閾值,本研究進(jìn)入Ⅱ期就意味著試驗(yàn)動物發(fā)生SARA,然而本研究中試驗(yàn)動物在Ⅱ期乃至Ⅲ期均處于健康狀態(tài),采食正常,無任何亞健康跡象,可見,從本研究結(jié)果判斷,6.0或5.8均不宜作為判定SARA發(fā)生的pH臨界閾值。本研究進(jìn)入Ⅳ期試驗(yàn)動物才表現(xiàn)出明顯的SARA臨床癥狀:精神萎靡,反芻次數(shù)明顯減少,排尿、排糞量減少,且糞便稀軟多呈團(tuán)狀,甚至出現(xiàn)拉稀現(xiàn)象,而且采食量出現(xiàn)較大的波動,剛開始2天其采食量仍較高,達(dá)到1.08 kg/d[13],隨后幾天急劇下降,甚至個別試驗(yàn)動物出現(xiàn)了拒食。此時瘤胃pH在5.5~5.2之間持續(xù)時間長達(dá)7 h/d以上,但沒有持續(xù)下降到5.2水平以下,瘤胃pH低于5.5的曲線面積也由 0增加到1.09,這表明將5.5和5.2作為SARA發(fā)生時瘤胃pH臨界閾值上限和下限更為準(zhǔn)確?;诒狙芯拷Y(jié)果,當(dāng)瘤胃pH在5.5~5.2之間波動時間持續(xù)長達(dá)7 h/d以上,pH<5.5曲線面積大于1 pH?h時,標(biāo)志著動物處于SARA狀態(tài)。
VFA含量是瘤胃發(fā)酵的主要指標(biāo)之一,影響其含量變化的最根本因素之一也是日糧結(jié)構(gòu)。本研究中,隨著日糧NFC/NDF比的增加,瘤胃乙酸含量呈現(xiàn)降低的趨勢,而丙酸、丁酸及TVFA含量呈現(xiàn)出增加的趨勢,當(dāng)日糧NFC/NDF比達(dá)2.58時,瘤胃乙酸含量、A/P顯著降低(P<0.05),丙酸、丁酸和TVFA含量顯著增加(P<0.05),其中丁酸含量增幅最大,這說明NFC含量的變化可以改變瘤胃發(fā)酵類型。一般來說在高精料日糧條件下發(fā)酵應(yīng)為明顯的丙酸型,但在本次試驗(yàn)中雖然A/P的比值有所下降,但并未呈現(xiàn)出明顯的丙酸型,而丁酸顯著增加成為顯著特征。這可能說明丁酸與亞急性酸中毒發(fā)展進(jìn)程密切相關(guān)。有研究指出,丁酸酸中毒可能是亞急性酸中毒和急性酸中毒的過渡階段[2]。
血漿中的VFA主要由瘤胃發(fā)酵產(chǎn)生的VFA經(jīng)瘤胃壁吸收而來的,本研究中血漿中TVFA含量及其各組分含量的變化均隨日糧NFC/NDF比的增加而呈現(xiàn)增加的趨勢,這說明日糧結(jié)構(gòu)變化對血漿TVFA含量有著一定的影響。在本研究中血漿TVFA含量是隨瘤胃TVFA含量的增加而增加,但血漿乙酸含量與瘤胃乙酸含量變化趨勢恰好相反,其原因還有待于研究。
乳酸是瘤胃微生物利用底物發(fā)酵產(chǎn)生的另一種酸性物質(zhì)。在正常瘤胃發(fā)酵狀態(tài)下,乳酸并不是瘤胃發(fā)酵的一種重要中間產(chǎn)物,也不被吸收[14]。許多以往的研究證實(shí),當(dāng)瘤胃發(fā)酵異常時,瘤胃乳酸含量增加是導(dǎo)致急性瘤胃酸中毒的直接原因,但在SARA發(fā)病中的作用卻報道不一。一些研究表明反芻動物發(fā)生亞急性酸中毒時乳酸累積高達(dá)50 mmol/L[15],但另一些研究表明瘤胃乳酸含量較低,不會超過10 mmol/L[12]或根本不存在[16]。本研究中當(dāng)日糧NFC/NDF比達(dá)2.58時,瘤胃中才檢測到乳酸存在,但其含量很低,低于0.1 mmol/L,這與肖訓(xùn)軍[1]對綿羊研究的結(jié)果相近。乳酸的酸度(pKa=3.1)是 VFA 酸度(pKa=4.8)的 10倍,可見,乳酸雖然是強(qiáng)酸,但因其含量較低不足以使瘤胃pH顯著下降。這說明隨著日糧NFC/NDF比增加,瘤胃pH下降主要源于瘤胃TVFA增多,瘤胃TVFA含量增多是本研究奶山羊發(fā)生SARA的主要原因,而非乳酸。
①隨著日糧NFC/NDF比的增加,瘤胃pH下降主要源于瘤胃TVFA增多,而非乳酸。
②當(dāng)日糧NFC/NDF比達(dá)2.58,即NFC攝入量為610.5 g,NDF攝入量為236.6 g時,奶山羊發(fā)生SARA。
[1] 肖訓(xùn)軍.毛茛科植物提取物對飼喂高碳水化合物飼糧反芻動物瘤胃發(fā)酵的影響[D].碩士學(xué)位論文.北京:中國農(nóng)業(yè)大學(xué),2001.
[2] 常 影.閹牛亞急性瘤胃酸中毒發(fā)病機(jī)理和飼喂高油玉米籽粒緩解效果的研究[D].博士學(xué)位論文.北京:中國農(nóng)業(yè)大學(xué),2006.
[3] NRC.Nutrient Requirements of Goats:Angora,dairy and meat goats in temperate and tropical countries[S].Washington,D.C.:National Academy Press,1981.
[4] 金公亮.奶山羊飼養(yǎng)標(biāo)準(zhǔn)[J].畜牧獸醫(yī)雜志,1989,2:7-12.
[5] 趙國琦,賈亞紅,陳小蓮,等.不同NDF/NFE比的日糧對山羊瘤胃發(fā)酵參數(shù)影響的研究[J].中國畜牧雜志,2006,42(13):29-33.
[6] Nocek J E,Allman J G,Kautz W P.Evaluation of an indwelling ruminal probe methodology and effect of grain level on diurnal pH variation in dairy cattle[J].Journal of Dairy Science,2002,85:422-428.
[7] Darren W B.Effect of the number of step-up diets fed during grain adaptation on acidosis and feeding behaviour of feedlot cattle[D].Master degree thesis.Saskatoon:The University of Saskatchewan,2005.
[8] Penner G B,Beauchemin K A,Mutsvangwa T.Severity of ruminal acidosis in primiparous Holstein cows during the periparturient period[J].Journal of Dairy Science,2007,90:365-375.
[9] Bauer M L,Herold D W,Britton R A,et al.Efficacy of laidlomycin propionate to reduce ruminal acidosis in cattle[J].Journal of Dairy Science,1995,73:3 445-3 454.
[10] Yang W Z,Beauchemin K A.Effects of physically effective fiber on chewing activity and ruminal pH of dairy cows fed diets based on barley silage[J].Journal of Dairy Science,2006,89:217-228.
[11] Enemark J M D ,J? rgensen R J,Enemark P S.Rumen acidosis with special emphasis on diagnostic aspects of sub clinical rumen acidosis:A review[J].Veterinarijair Zootechnika,2002,20:16-29.
[12] Keunen J E,Plaizier J C,Kyriazakis L,et al.Effects of a subacute ruminal acidosis model on the diet selection of dairy cows[J].Journal of Dairy Science,2002,85(12):3 304-3 313.
[13] 胡紅蓮.奶山羊亞急性瘤胃酸中毒營養(yǎng)生理機(jī)制的研究[D].博士學(xué)位論文.呼和浩特:內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué),2008.
[14] 段得賢,賀信恒,曹光榮.奶山羊過食谷物中毒的研究[J].西北農(nóng)學(xué)院學(xué)報,1981,3:21-33.
[15] Horn G W,Gordon J L,Prigge E C,et al.Dietary buffers and ruminal and blood parameters of subclinical lactic acidosis in steers[J].Journal of Animal Science,1979,48:683-691.
[16] Beauchemin K A,Yang W Z,Rode L M.Effects of particle size of alfalfa-based dairy cow diets on chewing activity,ruminal fermentation,and milk production[J].Journal of Dairy Science,2003,86:630-643.