徐 鳳,常艷兵,張銀烽,陶滿(mǎn)蘭,楊云慧
(云南師范大學(xué)化學(xué)化工學(xué)院,云南昆明650092)
納米材料是指材料的基本單元大小限制在1~100 nm范圍的材料。由于其尺寸小而具有的量子效應(yīng)、表面效應(yīng)和宏觀量子隧道效應(yīng)等特性,因此納米材料在催化、磁介質(zhì)、生物醫(yī)藥和生物電分析領(lǐng)域等方面有著廣闊的應(yīng)用前景[1]。經(jīng)過(guò)近幾十年的研究,已經(jīng)制備出了各種形貌的納米材料,比如納米顆粒[2]、納米管[3]、納米線[4]、納米棒[5]、納米帶[6~7]等。
適體是由25~80個(gè)堿基組成的能與蛋白質(zhì)、多肽、金屬離子、小分子等特異性結(jié)合的寡核苷酸DNA或RNA鏈。自從1990年Gold[8]和Ellington[9]等實(shí)驗(yàn)室各自獨(dú)立地建立自己的核苷酸文庫(kù)并創(chuàng)立一種從超過(guò)1015個(gè)核苷酸分子文庫(kù)里篩選出能與配體專(zhuān)一、高效結(jié)合的DNA或RNA片段的指數(shù)級(jí)富集的配基系統(tǒng)進(jìn)化技術(shù)(SELEX)以后,適體的合成與研究引起了越來(lái)越多的科研工作者的關(guān)注。適體的出現(xiàn)彌補(bǔ)了傳統(tǒng)免疫反應(yīng)的不足,也為傳統(tǒng)免疫傳感器注入了新的活力。
由于納米材料在比表面和結(jié)構(gòu)上的重要特性,其研究和開(kāi)發(fā)在近年來(lái)得到迅速發(fā)展,特別在適體生物傳感器的研制方面有廣泛的應(yīng)用。納米材料在適體傳感器中的應(yīng)用主要有兩方面:①將納米材料修飾到電極表面用于適體分子的固定;②納米材料作為標(biāo)記物用于檢測(cè)。該文將從這兩方面來(lái)綜述納米材料最近幾年在適體傳感器中的應(yīng)用。
由于納米材料具有比表面積大,電化學(xué)窗口寬,電子傳遞能力高而廣泛應(yīng)用于電極修飾。將納米材料修飾到適體傳感器的表面主要有兩個(gè)方面的作用:提高適體分子的固定量和增大電化學(xué)信號(hào)。
1.1.1 利用金納米顆粒固定適體
隨著生物化學(xué)合成技術(shù)的發(fā)展,目前可以通過(guò)商業(yè)途徑購(gòu)買(mǎi)到按要求修飾的合成寡核苷酸,修飾方式主要是在適體DNA的末端連接含硫化合物,再通過(guò)這一基團(tuán)將適體固定在納米金顆粒表面。Chen[10]等研制了一種使用表面增強(qiáng)的拉曼散射光譜來(lái)檢測(cè)腺苷的適體傳感器。先將金包被的銀溶膠固定到金片表面,然后將一段標(biāo)記了巰基的捕獲探針修飾到傳感器表面,再將抗腺苷的適體與標(biāo)記有四甲基羅丹明的DNA的混合物修飾到傳感器上,最后將腺苷滴到傳感器上,由于腺苷與腺苷適體的特異性結(jié)合導(dǎo)致傳感器上標(biāo)記四甲基羅丹明的DNA釋放到拉曼散射的培養(yǎng)基上,這樣就產(chǎn)生了拉曼散射增強(qiáng)的信號(hào),實(shí)現(xiàn)了對(duì)腺苷的檢測(cè)。該傳感器的檢測(cè)線性范圍是2.0×10-8~2.0×10-6mol/L, 檢測(cè)下限為 1.0×10-8mol/L。
Kang等[11]還采用納米金和殼聚糖的混合物修飾電極表面來(lái)改善電極的導(dǎo)電性,開(kāi)發(fā)了一種抗體作為捕獲探針,適體作為檢測(cè)探針,亞甲基藍(lán)作為電活性物質(zhì)的凝血酶電化學(xué)適體傳感器(結(jié)構(gòu)如圖1)。該傳感器的檢測(cè)下限為0.5 nmol/L,檢測(cè)線性范圍為1~60 nmol/L。
Li等[12]將固定到玻碳電極上的金納米顆粒作為固定帶巰基的適體的一個(gè)平臺(tái),采用[Fe(CN)6]3-/4-作為檢測(cè)探針來(lái)檢測(cè)傳感器界面電子的轉(zhuǎn)移量。凝血酶的量與電極表面電子轉(zhuǎn)移量在凝血酶濃度為0.12~30 nmol/L成線性關(guān)系。該小組考察了三種不同的適體與凝血酶之間的結(jié)合與分解速率,并證實(shí)了將金納米顆粒沉積到玻碳電極作為固定適體的平臺(tái)可以提高傳感器的檢測(cè)靈敏度。Feng等[13]設(shè)計(jì)了一種檢測(cè)腺苷的非標(biāo)記型適體傳感器,采用1,6-硫醇將金納米顆粒固定到金電極表面,固定的金納米顆粒能提高電極表面俘獲探針的量,采用亞甲基藍(lán)作為檢測(cè)探針來(lái)檢測(cè)腺苷的量。該傳感器檢測(cè)范圍寬,靈敏度高,傳感器使用超過(guò)十次后信號(hào)仍能保持到原有信號(hào)的90%。Zhao等[14]設(shè)計(jì)了一種新型的檢測(cè)茶堿的RNA適體傳感器。該小組首先通過(guò)電沉積使玻碳電極表面生成金納米顆粒,然后探針RNA通過(guò)巰基組裝到金納米顆粒上。該小組用阿霉素作為電化學(xué)檢測(cè)探針,通過(guò)阿霉素在電極表面的氧化還原情況檢測(cè)茶堿的濃度,線性范圍為2.0~50.0 μmol/L,檢測(cè)下限為 1.2 μmol/L。Suprun[15]等利用生物素親和素技術(shù)將適體固定到已用金納米顆粒修飾的絲網(wǎng)印刷電極上面,用溶出伏安法在一定電位下將金納米顆粒氧化為金的氧化物,通過(guò)檢測(cè)金的氧化物的量來(lái)測(cè)定電極上凝血酶的含量。該方法的檢測(cè)下限達(dá)10-9mol/L,線性范圍為 10-8~10-5mol/L(溶液中),2×10-14~2×10-11mol/L(電極上)。
圖1 傳感器制備流程圖[11]Fig.1 Schematic representations of the principle for the sensing steps[11]
1.1.2 利用磁性納米顆粒固定適體
Kawde[16]等首次證實(shí)了核酸適體可以用于電化學(xué)檢測(cè)蛋白質(zhì)。該小組首先將生物素標(biāo)記的抗溶菌酶適體結(jié)合到鏈霉親和素化的納米磁珠上,然后再加靶蛋白溶菌酶,由于溶菌酶適體和溶菌酶的特異性結(jié)合導(dǎo)致納米磁珠上溶菌酶適體的解離,用磁性分離從磁珠上解離的溶菌酶適體,最后通過(guò)計(jì)時(shí)電位溶出法檢測(cè)溶菌酶適體的量來(lái)測(cè)定溶菌酶的濃度,該方法對(duì)溶菌酶的檢測(cè)下限為7 nmol/L。
1.1.3 利用碳納米管固定適體
楊佳等[17]用碳納米管負(fù)載釕聯(lián)吡啶衍生物標(biāo)記的凝血酶適體Ⅱ,根據(jù)釕聯(lián)吡啶衍生物的電化學(xué)發(fā)光信號(hào)強(qiáng)度的改變采用夾心法檢測(cè)凝血酶的濃度,該方法的檢出限為1.3×10-12mol/L。且在對(duì)凝血酶濃度為1.0×10-10mol/L的情況下進(jìn)行平行測(cè)定,其相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為5.0%。李延[18]用單壁碳納米管負(fù)載凝血酶的第二段適體和釕聯(lián)吡啶的復(fù)合物構(gòu)成電化學(xué)發(fā)光檢測(cè)探針檢測(cè)凝血酶, 該傳感器檢測(cè)的線性范圍為 1.0×10-14~1.0×10-11mol/L,檢測(cè)下限為 3.0×10-15mol/L,且在凝血酶的濃度為5.0×10-13mol/L的情況下進(jìn)行11次平行測(cè)定的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為5.3%。
1.2.1 以金納米顆粒為標(biāo)記物
Wang等[19]設(shè)計(jì)了一種電化學(xué)發(fā)光適體傳感器來(lái)檢測(cè)腺苷的濃度。該組將金納米顆粒與電化學(xué)發(fā)光物質(zhì)釕聯(lián)吡啶形成的絡(luò)合物標(biāo)記作為傳感器的發(fā)光平臺(tái),將二茂鐵標(biāo)記的腺苷適體作為發(fā)光強(qiáng)度控制開(kāi)關(guān),通過(guò)傳感器的發(fā)光強(qiáng)度來(lái)檢測(cè)腺苷的濃度。鄭靜等[20]將凝血酶的第二段適體用金膠標(biāo)記后作為檢測(cè)信標(biāo),采用夾心法通過(guò)檢測(cè)信標(biāo)金膠上的核苷酸鏈與另一段標(biāo)記有金膠的互補(bǔ)鏈進(jìn)一步雜交而實(shí)現(xiàn)金的選擇性富集,金的富集可實(shí)現(xiàn)信號(hào)擴(kuò)增而大大提高了傳感器的靈敏度。該傳感器的結(jié)構(gòu)示意圖見(jiàn)圖2,此方法對(duì)凝血酶的檢測(cè)下限達(dá)4.52×10-15mol/L,且在對(duì)凝血酶濃度為7.47×10-14mol/L的情況下平行測(cè)定8次,其相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為3.0%。
圖2 凝血酶適體生物傳感器示意圖[20]Fig.2 Schematic illustration of the thrombin aptasensor[20](A)Fabrication of the sandwich format bymagnetic nanoparticle labeled aptamerⅠ,thrombin and gold nanoparticle labeled aptamerⅡ;(B)enrichment of gold nanoparticles through the hybridization with the complementary oligonucleotide
Wang等[21]利用凝血酶為模型設(shè)計(jì)了一種利用金納米顆粒和適體組合的適體傳感器,原理是將用染料標(biāo)記的DNA和標(biāo)記有金納米顆粒的適體雜交,利用金納米顆粒的熒光淬滅程度實(shí)現(xiàn)凝血酶的檢測(cè),該組設(shè)計(jì)了三種模型并認(rèn)為通過(guò)自組裝將適體和金納米顆粒固定到電極上是最好的模型。Wang等[22]將納米顆粒和適體相結(jié)合采用表面等離子共振的方法靈敏的檢測(cè)了人類(lèi)免疫球蛋白E(IgE)。該傳感器利用了金納米顆粒對(duì)檢測(cè)信號(hào)的放大作用,檢測(cè)下限為1 ng/mL。Zheng等[23]同時(shí)利用了磁性納米顆粒和金納米顆粒開(kāi)發(fā)了一種快速高效靈敏檢測(cè)凝血酶的適體傳感器。該文用磁性納米顆粒固定適體,用金納米顆粒標(biāo)記互補(bǔ)核苷酸鏈,將適體與互補(bǔ)核苷酸的雜交體系作為探針,由于凝血酶的引入,導(dǎo)致探針結(jié)構(gòu)破壞,標(biāo)記金納米顆粒的互補(bǔ)核苷酸被釋放出來(lái),再將游離出來(lái)的金納米顆粒氧化為AuCl4-,最后用差分脈沖法檢測(cè)AuCl4-的信號(hào)來(lái)檢測(cè)凝血酶的濃度。該方法的優(yōu)越性在于能簡(jiǎn)單快速而靈敏的檢測(cè)凝血酶并由于不需要標(biāo)記凝血酶而可以用于復(fù)雜體系真實(shí)樣品的檢測(cè)。
1.2.2 以量子點(diǎn)為標(biāo)記物
Yang等[24]利用CdSe量子點(diǎn)標(biāo)記凝血酶第二段適體,采用夾心法依次將凝血酶的第一段適體、凝血酶、標(biāo)記量子點(diǎn)的第二段適體固定到金電極表面,然后通過(guò)在硝酸溶液中用方波溶出伏安法來(lái)檢測(cè)Cd2+的濃度來(lái)測(cè)定凝血酶的濃度,且該傳感器在凝血酶濃度為1 pmol/L時(shí)平行測(cè)定相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為9.3%。 Huang[25]等設(shè)計(jì)了一種采用量子點(diǎn)電化學(xué)發(fā)光檢測(cè)凝血酶的適體傳感器。首先將巰基標(biāo)記的凝血酶第一段適體固定到金電極上,然后將目標(biāo)物凝血酶結(jié)合到適體1上,接著向電極上滴加用生物素標(biāo)記的凝血酶適體2,這樣電極上就形成了適體1/凝血酶/適體2的夾心結(jié)構(gòu)。最后將鏈霉親和素標(biāo)記的量子點(diǎn)被加到電極上與適體2形成生物素-親和素體系,量子點(diǎn)的發(fā)光強(qiáng)弱反應(yīng)了電極上凝血酶的濃度,該傳感器檢測(cè)的線性范圍為0~20 μg/mL,且該傳感器選擇性好,性能穩(wěn)定。
納米材料是一種性能優(yōu)異的功能材料,應(yīng)用開(kāi)發(fā)的前景十分廣闊。將納米材料應(yīng)用于適體傳感器為適體傳感器的發(fā)展提供了巨大的空間。與傳統(tǒng)的傳感器相比,基于納米材料的適體傳感器具有超高的靈敏度和良好的選擇性,且可實(shí)現(xiàn)高通量的實(shí)時(shí)檢測(cè)分析。但是由于一些納米材料合成困難以及適體的篩選耗時(shí),篩選過(guò)程復(fù)雜等不利因素制約了基于納米材料的適體傳感器的發(fā)展。隨著納米技術(shù)和傳感器技術(shù)的發(fā)展,如何將納米科學(xué)和適體傳感器有機(jī)的結(jié)合,如何利用納米材料的特殊性能來(lái)提高適體傳感器的檢測(cè)靈敏度和檢測(cè)通量是科研工作者努力的方向和研究的熱點(diǎn),也是適體傳感器發(fā)展的新方向之一。
[1]Kerner E H.Dynamical Feynman's Theorem[J].Phys.Rev.Lett.,1959,2(4):152~153.
[2]Nelson E J,Samulski E T.Preparation of CdS nanoparticles within an ordered polypeptide matrix [J].Mater.Sci.Eng.C,1995,2(3):133~140.
[3]Iijima S.Helical microtubules of graphitic carbon[J].Nature,1990,347(11):56~58.
[4]Liu J,Lin Y H,Liang L,et al.Templateless assembly of molecularly aligned conductive polymer nanowires:a new approach for oriented nanostructures[J].Chem.Euro.J.,2003,9(3):605~611.
[5]K?nekamp R,Word R C,Dosmailov M,et al.Pentagonal ZnO nanorods[J].Phys.Status Solidi(RRL),2007,1(3):101~103.
[6]Pan Z W,Dai Z R,Wang Z L.Nanobelts of semiconducting oxides[J].Science,2001,291(5 510):1 947~1 949.
[7]Xu L,Su Y,Cai D,et al.Synthesis and photoluminescence properties of CdS nanobelts [J].Mater.Lett.,2006,60(11):1 420~1 424.
[8]Tuerk C,Gold L.Systematic evolution of ligands by exponential enrichment:RNA ligands to bacteriophage T4 DNA polymerase[J].Science,1990,249(4 968):505~510.
[9]Ellington A D,Szostak J W.In vitro selection of RNA molecules that bind specific ligands[J].Nature,1990,346(6 287):818~822.
[10]Chen J W,Liu X P,Feng K J,et al.Detection of adenosine using surface-enhanced Raman scattering based onstructure-switching signaling aptamer[J].Biosens.Bioelectron.,2008,24(1):66~71.
[11]Kang Y,Feng K J,Chen J W,et al.Electrochemical detection of thrombin by sandwich approach using antibody and aptamer[J].Bioelectrochem.,2008,73(1):76~81.
[12]Li X X,Shen L H,Zhang D D,et al.Electrochemical impedance spectroscopy for study of aptamer-thrombin interfacial interactions[J].Biosens.Bioelectron.,2008,23(11):1 624~1 630.
[13]Feng K J,Sun C H,Kang Y,et al.Label-free electrochemical detection of nanomolar adenosine based on target-induced aptamer displacement [J].Electrochem.Commun.,2008,10(4):531~535.
[14]Zhao G C,Yang X.A label-free electrochemical RNA aptamer for selective detection of theophylline[J].Electrochem.Commun.,2010,12(2):300~302.
[15]Suprun E,Shumyantseva V,Bulko T,et al.Au-nanoparticles as an electrochemical sensing platform for aptamer-thrombin interaction [J].Biosens.Bioelectron.,2008,24(4):825~830.
[16]Kawde A N,Rodriguez M C,Lee T M H,et al.,Labelfree bioelectronic detection of aptamer-protein interactions[J].Electrochem.Commun.,2005,7(5):537~540.
[17]楊佳.基于適體均相電化學(xué)發(fā)光法檢測(cè)凝血酶的研究[D].陜西:陜西師范大學(xué),2008.
[18]李延.電化學(xué)發(fā)光DNA和適體生物傳感器的研究[D].陜西:陜西師范大學(xué),2008.
[19]Wang X Y,Dong P,He P G,et al.A solid-state electrochemiluminescence sensing platform for detection of adenosine based on ferrocene-labeled structure-switching signaling aptamer[J].Anal.Chim.Acta.,2010,658(2):128~132.
[20]鄭靜,馮婉娟,黃翠華,等.利用互補(bǔ)核酸雜交富集金膠實(shí)現(xiàn)信號(hào)擴(kuò)增的電化學(xué)凝血酶蛋白生物傳感器研究[J].高等學(xué)校化學(xué)學(xué)報(bào),2007,28(12):2 274~2 279.
[21]Wang W J,Chen C L,Qian M X,et al.Aptamer biosensor for protein detection using gold nanoparticles[J].Anal.Biochem.,2008,373(2):213~219.
[22]Wang J L,Munir A,Li Z H,et al.Aptamer-Au NPs conjugates-enhanced SPR sensing for the ultrasensitive sandwich immunoassay[J].Biosens.Bioelectron.,2009,25(1):124~129.
[23]Zheng J,Cheng G F,He P G,et al.An aptamer-based assay for thrombin via structure switch based on gold nanoparticles and magnetic nanoparticles[J].Talanta,2010,80(5):1 868~1 872.
[24]Yang H,Ji J,Liu Y,et al.An aptamer-based biosensor for sensitive thrombin detection[J].Electrochem.Commun.,2009,11(1):38~40.
[25]Huang H P,Zhu J J.DNA aptamer-based QDs electrochemiluminescence biosensor for the detection of thrombin[J].Biosens.Bioelectron.,2009,25(4):927~930.