王輝憲,馬玉美,羅啟枚,謝聃,劉東波, 熊興耀*
(湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)a.理學(xué)院;b.園藝園林學(xué)院,湖南 長(zhǎng)沙 410128)
原花青素(procyanidins,簡(jiǎn)稱PC)是植物中廣泛存在的一類屬于雙黃酮衍生物的天然多酚化合物,有人將其歸為生物類黃酮[1-2],也有人將其歸為縮合鞣質(zhì)[3].這類化合物由不同數(shù)量的兒茶素或表兒茶素結(jié)合而成,最簡(jiǎn)單的是兒茶素、表兒茶素或兒茶素與表兒茶素形成的二聚體,此外還有三聚體、四聚體等直至十聚體.原花青素具有極強(qiáng)的抗氧化特性,一般存在于植物的果實(shí)、種子、花和皮中,在葡萄、山楂、花生、銀杏、白樺樹(shù)、松樹(shù)等植物中的含量都很豐富[4].在原花青素各種不同聚合體中以二聚體B2的抗氧化能力最強(qiáng).原花青素具有多種生物活性,能防治多種疾病,具有高效、低毒、高生物利用率等特點(diǎn),在植物中的主要作用是保護(hù)植物中易被氧化的成分,在人體內(nèi)的抗氧化和清除自由基的能力是V-E的50倍、V-C的20倍[5-6],并且還具有保護(hù)心血管、預(yù)防高血壓、抗腫瘤、抗輻射、抗突變及美容等作用[7].中國(guó)葡萄資源豐富,每年用于釀造酒和其他飲料的鮮葡萄超過(guò)10萬(wàn)t,每年生產(chǎn)葡萄酒后的廢渣中就有(400~600)萬(wàn)kg的葡萄籽[8].葡萄籽中含有大量的原花青素,因此充分利用好釀酒后的葡萄籽資源,不僅物盡其用,而且還會(huì)帶來(lái)巨大的經(jīng)濟(jì)效益.筆者研究大孔樹(shù)脂分離純化葡萄籽原花青素的方法和工藝,旨在為刺葡萄的綜合利用提供理論依據(jù).
以湖南懷化市芷江地區(qū)出產(chǎn)的高山刺葡萄籽為試材;原花青素B2標(biāo)準(zhǔn)品購(gòu)自SEGMA公司;原花青素標(biāo)準(zhǔn)品(≥95%)購(gòu)自天津市尖峰天然產(chǎn)物研究開(kāi)發(fā)有限公司(探索試驗(yàn)條件所用原花青素為80%的低聚原花青素產(chǎn)品);8種大孔樹(shù)脂(表1)均為乳白色不透明球狀顆粒,購(gòu)自滄州遠(yuǎn)威化工有限公司和滄州寶恩化工有限公司.
表1 8種樹(shù)脂的性能參數(shù)Table 1 Capability parameter of 8 macroporous resins
主要儀器為組合恒溫磁力攪拌器、RE-52AA旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(上海亞榮生化儀器廠)、SHB-Ⅲ循環(huán)水式多用真空泵(鄭州長(zhǎng)城科工貿(mào)有限公司)、DLSB-5/10型低溫冷卻液循環(huán)泵(鄭州長(zhǎng)城科工貿(mào)有限公司)、D2-2BC型真空干燥箱(天津泰斯特儀器有限公司)、ES-1100電子天平(長(zhǎng)沙湘平科技發(fā)展有限公司)、VIS-7220紫外分光光度計(jì)(北京瑞利分析儀器廠)和玻璃層析柱.
主要試劑乙醇(95%)、乙酸乙酯、正丁醇、濃鹽酸、NH4Fe(SO4)2、NaCl均為分析純;甲醇為色譜純.
1.2.1 葡萄籽中原花青素的提取與初步分離
將1 kg刺葡萄籽粉碎,用超臨界CO2法提取葡萄籽油脫脂[9-10]后,用 5%NaCl水溶液以 1∶5的料液比攪拌1 h去蛋白質(zhì),然后進(jìn)行原花青素的提取[11].提取液為 70%的乙醇溶液,料液比 1∶7,溫度60 ℃,提取時(shí)間2 h.提取2次.將上述原花青素的提取液減壓蒸餾(45 ℃)至無(wú)醇,離心分離,上清液用4倍體積的乙酸乙酯分6次萃取,合并乙酸乙酯萃取液,減壓蒸餾(≤35 ℃)至有少量沉淀析出后置于真空干燥箱干燥(≤30 ℃)2 h,得低聚原花青素粗產(chǎn)品,備用.
1.2.2 提取物中原花青素含量的測(cè)定
在文獻(xiàn)[12-13]的基礎(chǔ)上,對(duì)鐵鹽濃度和濃鹽酸-正丁醇的比例進(jìn)行改進(jìn)后,測(cè)定提取物中原花青素的含量.
1.2.3 大孔樹(shù)脂的預(yù)處理
取8種型號(hào)的大孔樹(shù)脂用無(wú)水乙醇浸泡24 h,濕法裝柱,用無(wú)水乙醇沖至無(wú)渾濁,用蒸餾水洗至無(wú)醇味.經(jīng)酸、堿處理后用蒸餾水洗至中性[14-15].
1.2.4 樹(shù)脂靜態(tài)吸附與解吸試驗(yàn)
(1)靜態(tài)吸附試驗(yàn).分別準(zhǔn)確稱取0.500 0 g預(yù)處理過(guò)的8種大孔樹(shù)脂于錐形瓶中,分別加入5 mL無(wú)水乙醇使樹(shù)脂充分漲溶,再分別加入50 mL原花青素水溶液(原花青素含量為0.4 mg/mL),封口,置于25 ℃水浴搖床中振搖24 h,測(cè)定溶液吸光度,檢測(cè)樹(shù)脂的吸附量.
Qe為樹(shù)脂吸附量(mg/g);C0為吸附前溶液中原花青素的質(zhì)量濃度(mg/mL);C1為吸附后溶液中原花青素的質(zhì)量濃度(mg/mL);V1為溶液體積(mL);W為樹(shù)脂干重(g).
(2)靜態(tài)解吸試驗(yàn).將上述充分吸附后的原花青素水溶液進(jìn)行過(guò)濾,去除水液,再將其置于錐形瓶中,各加入50%的乙醇水溶液50 mL,封口,置于25 ℃水浴搖床中振搖24 h,檢測(cè)樹(shù)脂的解吸率,并根據(jù)靜態(tài)吸附和靜態(tài)解析試驗(yàn)確定最佳樹(shù)脂.
Qd為解析量(mg/g);C2為解析液中原花青素的質(zhì)量濃度(mg/mL); V2為解析液體積(mL);D為解析率.
1.2.5 吸附、解吸條件的確定
(1)吸附條件的確定.取0.500 0 g預(yù)處理過(guò)的所選最佳樹(shù)脂,加入0.4 mg/mL原花青素水溶液50 mL,以吸附時(shí)間、吸附溫度和供試液pH值設(shè)計(jì)L16(43)正交試驗(yàn),用鹽酸-正丁醇法測(cè)定吸附完全后原花青素溶液的吸光度,考察吸附條件對(duì)樹(shù)脂吸附性能的影響,確定最佳吸附條件.
(2)解吸條件的確定.取0.500 0 g所選最佳樹(shù)脂,加入0.4 mg/mL原花青素水溶液50 mL,在相同條件下吸附飽和后,濾去水溶液,以乙醇水溶液濃度、pH值、洗脫時(shí)間及洗脫溫度設(shè)計(jì)L16(44)正交試驗(yàn),用鹽酸-正丁醇法測(cè)定解吸完全后原花青素溶液的吸光度,考察洗脫條件對(duì)解吸效果的影響,確定最佳解吸條件.
1.2.6 樹(shù)脂動(dòng)態(tài)吸附試驗(yàn)
(1)上柱速率對(duì)吸附量的影響.分別取一定量處理過(guò)的所選樹(shù)脂濕法裝柱,以0.4 mg/mL原花青素溶液上柱,調(diào)節(jié)不同上柱速率,收集流出液.每收集10 mL流出液用鹽酸-正丁醇法測(cè)量1次其中原花青素的含量,考察上柱速率2、4、6 BV/h對(duì)樹(shù)脂吸附性能的影響.
(2)洗脫速率對(duì)洗脫解吸率的影響.分別取一定量處理過(guò)的所選樹(shù)脂濕法裝柱,給定相同的上柱條件,按最佳吸附條件進(jìn)行吸附,使其飽和,以不同的洗脫速率洗脫,考察洗脫速率 1、2、3 BV/h對(duì)洗脫效果的影響.
通過(guò)上述試驗(yàn),確定所選樹(shù)脂對(duì)原花青素吸附分離的最佳工藝條件.
1.2.7 刺葡萄籽低聚原花青素的純化
將溶劑浸提所得低聚原花青素粗提物溶于蒸餾水中,以上述試驗(yàn)所選定的樹(shù)脂為吸附劑,上柱吸附至飽和,然后以60%乙醇水溶液按最佳工藝條件進(jìn)行洗脫,每10 mL收集1次洗脫液,用鹽酸-正丁醇法測(cè)定洗脫液中原花青素的含量.
1.2.8 純化物中B2含量的測(cè)定
準(zhǔn)確稱取0.001 0 g原花青素二聚體B2標(biāo)準(zhǔn)品,用甲醇(GR)定容至10 mL,得質(zhì)量濃度為0.1 mg/mL的B2標(biāo)準(zhǔn)液,稀釋,配制成質(zhì)量濃度為15、30、45、60、75 μg/mL的原花青素二聚體B2系列標(biāo)準(zhǔn)溶液.通過(guò)HPLC法測(cè)定原花青素二聚體B2標(biāo)準(zhǔn)曲線.測(cè)定條件:流動(dòng)相甲醇與水的體積比為24∶76,并經(jīng) 0.45 μm 濾膜過(guò)濾,脫氣;流速 0.8 mL/min;檢測(cè)波長(zhǎng)280 nm;進(jìn)樣量20 μL.在相同條件下測(cè)定1.2.1方法所得低聚原花青素粗產(chǎn)品(質(zhì)量濃度為 0.1 mg/mL)和經(jīng)大孔樹(shù)脂純化后純化物(原花青素質(zhì)量濃度為120 μg /mL)中B2的峰面積,計(jì)算B2的含量.
將處理過(guò)的 1 kg刺葡萄籽在最佳提取條件下進(jìn)行提取,乙酸乙酯萃取后得到低聚粗產(chǎn)品 4.608 g,正丁醇萃取后得高聚粗產(chǎn)品4.251 g,產(chǎn)品總質(zhì)量為8.859 g,得率為0.89%.
以鹽酸-正丁醇法測(cè)定原花青素標(biāo)準(zhǔn)品的標(biāo)準(zhǔn)曲線方程為y =0.859 7x + 0.011 3,R2=0.999 2,式中y為吸光度,x為溶液中原花青素的質(zhì)量濃度(mg/mL).
2.3.1 樹(shù)脂的篩選
原花青素具有多酚鍵和糖苷鍵,有一定的極性和親水性,生成氫鍵的能力較強(qiáng),有利于極性和弱極性的樹(shù)脂吸附,但吸附能力太強(qiáng)不利于解吸.由表2可見(jiàn),所用樹(shù)脂吸附效果最好的是HPD- 300,其次是 HPD-700、YWD-03K7、YWD-04B1和YWD-06C,幾種樹(shù)脂的吸附能力相差不大,其中HPD-700和YWD-03K7樹(shù)脂的吸附能力完全相同.
表2 大孔樹(shù)脂的靜態(tài)吸附情況Table 2 Static adsorption of the resin
由表3可見(jiàn),解吸率最高的樹(shù)脂是YWD-06C,其次是D-101、YWD-09F和HPD-700,因此,綜合考慮,選取YWD-06C為最佳樹(shù)脂.
表3 大孔樹(shù)脂的靜態(tài)解吸情況Table 3 Static desorption of the resin
2.3.2 吸附條件正交試驗(yàn)結(jié)果
吸附后測(cè)得溶液的吸光度越小,吸附效果越好.由表4可知,在吸附過(guò)程中各因素對(duì)吸附效果的影響都較大,其中吸附時(shí)間的影響最大.時(shí)間太短,吸附不完全;時(shí)間太長(zhǎng),可能會(huì)使原花青素在樹(shù)脂中重新解吸出來(lái).50 ℃時(shí)吸光度較大可能是原花青素在較高溫度下發(fā)生分解生成色素所致.最佳吸附條件為吸附溫度20 ℃,吸附時(shí)間6 h,溶液pH 4.
表4 吸附條件正交試驗(yàn)結(jié)果Table 4 The orthogonal analysis of adsorption
2.3.3 解吸條件正交試驗(yàn)結(jié)果
由表5可知,解吸時(shí)間對(duì)解吸效果影響最大,這是由于時(shí)間太短,解吸不完全;時(shí)間太長(zhǎng),可能會(huì)使解吸出來(lái)的原花青素重新吸附到樹(shù)脂上.其他3個(gè)因素對(duì)解吸效果的影響基本相同.最佳解吸條件:解吸液為60%的乙醇水溶液,pH 4,解吸時(shí)間6 h,解吸溫度25 ℃.
表5 解吸條件正交試驗(yàn)結(jié)果Table 5 The orthogonal analysis of adsorption
2.4.1 吸附流速對(duì)吸附量的影響
以流出液體積為橫坐標(biāo),以流出液中原花青素質(zhì)量濃度為縱坐標(biāo),得上柱速率對(duì)吸附量影響的關(guān)系曲線(圖1).由圖1可知,當(dāng)流速為2 BV/h時(shí),樹(shù)脂對(duì)原花青素的吸附比較完全,但由于流速太慢,使得操作時(shí)間過(guò)長(zhǎng);當(dāng)流速為6 BV/h時(shí),由于流速過(guò)快,原花青素還未被樹(shù)脂完全吸附就隨洗脫液流出,造成原花青素的浪費(fèi),因此選取 4 BV/h為最佳吸附流速.
圖1 不同吸附流速下樹(shù)脂對(duì)原花青素的吸附Fig.1 Adsorption of different flowing velocity
2.4.2 洗脫速率對(duì)吸附量的影響
根據(jù)經(jīng)驗(yàn)[16],洗脫速率一般為吸附速率的1/2,故筆者考察1、2、3 BV/h 3個(gè)洗脫速率對(duì)吸附量的的影響.以流出液體積為橫坐標(biāo),流出液中原花青素質(zhì)量濃度為縱坐標(biāo),得不同流速下樹(shù)脂對(duì)原花青素的解吸曲線(圖2).由圖2可見(jiàn),洗脫速率越小,洗脫越完全;1 BV/h時(shí)雖然洗脫效果較好,但由于流速過(guò)慢,使得操作時(shí)間過(guò)長(zhǎng);流速為2 BV/h時(shí),洗脫曲線集中,對(duì)稱,無(wú)明顯拖尾現(xiàn)象;流速為 3 BV/h時(shí),流速較快,洗脫不完全,拖尾現(xiàn)象嚴(yán)重,所以,選取2 BV/h為最佳流速.
圖2 不同洗脫速率下樹(shù)脂對(duì)原花青素的吸附Fig.2 Desorption curve of different flowing velocity
根據(jù)靜態(tài)試驗(yàn)和動(dòng)態(tài)試驗(yàn)確定的吸附、解吸條件,對(duì)用溶劑法提取的低聚原花青素粗提物進(jìn)行純化,用鹽酸-正丁醇法測(cè)定洗脫液中原花青素的含量,結(jié)果表明,原花青素主要集中在第3組洗脫液,即20~30 mL階段,此階段洗脫液中原花青素含量達(dá)到92.57%.
按1.2.8色譜條件,用HPLC法分別得到原花青素B2標(biāo)準(zhǔn)品與純化物的色譜圖(圖3、圖4).
圖3 原花青素B2標(biāo)準(zhǔn)品的HPLC圖Fig.3 HPLC spectrum of B2 standard product
圖4 原花青素純化物的HPLC圖Fig.4 HPLC spectrum of purified proanthocyanidins
根據(jù)試驗(yàn)結(jié)果,得刺葡萄籽低聚原花青素純化物中二聚體B2峰面積與質(zhì)量濃度的線性回歸方程由刺葡萄籽低聚原花青素純化物中二聚體B2峰面積與質(zhì)量濃度的標(biāo)準(zhǔn)曲線可得刺葡萄籽低聚原花青素純化物中二聚體B2的質(zhì)量濃度為40.17 μg/mL,計(jì)算可得二聚體B2含量為33.5%.同樣方法可測(cè)得溶劑法粗提所得低聚原花青素中二聚體B2的含量為9.19%.
利用大孔吸附樹(shù)脂對(duì)溶劑法所得刺葡萄籽低聚原花青素粗產(chǎn)品進(jìn)行純化.通過(guò)靜態(tài)試驗(yàn)選擇出YWD-06C樹(shù)脂為最佳吸附劑,并通過(guò)正交試驗(yàn)確定了最佳吸附條件:吸附溫度20 ℃,吸附時(shí)間6 h,溶液pH值為4;最佳解吸條件:解吸液為60%的乙醇水溶液,pH值為4,解吸時(shí)間6 h,解吸溫度25 ℃;通過(guò)動(dòng)態(tài)試驗(yàn)確定吸附速率為4 BV/h,洗脫速率為2 BV/h.刺葡萄籽低聚原花青素粗提物經(jīng)YWD-06C樹(shù)脂純化后,收集20~30 mL階段洗脫液,用鹽酸-正丁醇法測(cè)得其中原花青素含量達(dá)92.57%.用本方法純化刺葡萄籽低聚原花青素,不僅可以去除提取物中大部分雜質(zhì),提高原花青素的含量,而且可以富集原花青素純化物中的二聚體B2,葡萄籽低聚原花青素產(chǎn)品中B2含量的提高,將大大提高產(chǎn)品的抗氧化能力和藥用價(jià)值,也將大大提高產(chǎn)品的經(jīng)濟(jì)價(jià)值,因此,本純化工藝對(duì)于葡萄籽的綜合利用、對(duì)于提高葡萄籽低聚原花青素產(chǎn)品的品質(zhì)、對(duì)于提升刺葡萄深加工的價(jià)值具有非常好的應(yīng)用前景.
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