李玉平,龔 寧,王永宏,馮俊濤,張 興,*
大花金挖耳細(xì)胞懸浮系的建立及黃酮類化合物的產(chǎn)生
李玉平1,2,龔 寧3,王永宏1,馮俊濤1,張 興1,*
(1.西北農(nóng)林科技大學(xué)無公害農(nóng)藥研究服務(wù)中心,陜西 楊凌 712100;2.西北農(nóng)林科技大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,陜西 楊凌712100;3.西北農(nóng)林科技大學(xué)理學(xué)院,陜西 楊凌 712100)
研究不同培養(yǎng)基、蔗糖質(zhì)量濃度、pH值、接種量、NAA、6-BA、VB1及培養(yǎng)時(shí)間對(duì)大花金挖耳細(xì)胞生長(zhǎng)和黃酮類化合物合成的影響。結(jié)果表明:NT液體培養(yǎng)基在pH5.5、蔗糖質(zhì)量濃度40g/L、接種量40g/L鮮質(zhì)量細(xì)胞、NAA 1.0mg/L+6-BA 0.2mg/L時(shí)有利于細(xì)胞的生長(zhǎng)和黃酮類化合物合成,向NT培養(yǎng)基中添加1.0~4.0mg/L VB1有抑制細(xì)胞褐化的作用,大花金挖耳懸浮細(xì)胞的生長(zhǎng)及黃酮類化合物合成隨培養(yǎng)時(shí)間的延長(zhǎng),表現(xiàn)出先升高后降低的趨勢(shì),在接種15~21d后,細(xì)胞生物量可達(dá)23.54~24.51g/L,黃酮類化合物得率為1.19%~1.23%。
大花金挖耳;懸浮培養(yǎng);生物合成;黃酮類化合物
黃酮類化合物具有抗炎、抗病毒、抗癌、降血脂、降膽固醇、保肝、抗衰老、調(diào)節(jié)內(nèi)分泌等多種功能[1-2],作為一種功能成分,國內(nèi)外對(duì)黃酮類化合物的研究開發(fā)十分活躍,但在國內(nèi)保健食品開發(fā)生產(chǎn)方面較為有限,為了進(jìn)一步提高黃酮的質(zhì)量,降低產(chǎn)品成本,有必要尋求新的黃酮藥源[2-3]。大花金挖耳(Carpesium macrocephalum Franch.et Sav)是菊科(Compositae)天明精屬多年生草本植物[4],含有黃酮、萜內(nèi)酯、甾體等多種化合物,有清熱、解毒、抗腫瘤、止血的醫(yī)療作用,并具殺蟲、除草和抑菌等農(nóng)藥活性[5-9]。利用細(xì)胞培養(yǎng)生產(chǎn)黃酮等活性物質(zhì)[10-11]是突破大花金挖耳生長(zhǎng)周期長(zhǎng)、生長(zhǎng)受到地域和環(huán)境因素的限制,解決從大花金挖耳花、果實(shí)等部位化學(xué)提取活性成分的局限性,并解決黃酮等物質(zhì)人工合成的困難[12]。有關(guān)大花金挖耳細(xì)胞懸浮培養(yǎng)的研究尚未見報(bào)道,本實(shí)驗(yàn)在前期研究的基礎(chǔ)上[13],利用愈傷組織建立大花金挖耳細(xì)胞的
懸浮培養(yǎng)體系,研究大花金挖耳懸浮培養(yǎng)細(xì)胞黃酮類化合物積累的基本條件,為進(jìn)一步研究和利用大花金挖耳懸浮培養(yǎng)體系生產(chǎn)黃酮類化合物積累基本數(shù)據(jù)。
1.1 材料與試劑
采集陜西太白山海拔1600m左右櫟林帶處的大花金挖耳(Carpesium macrocephalum Franch.et Sav) (筆者鑒定并經(jīng)中科院西北植物研究所副研究員吳正海核實(shí))果實(shí)。大花金挖耳種子萌發(fā)后,以其無菌苗的幼根誘導(dǎo)出愈傷組織[13]。
蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品 中國藥品生物制品檢定所;萘乙酸(NAA)、6-芐氨基嘌呤(6-BA) 美國Sigma公司;MS、B5和NT培養(yǎng)基中添加的蔗糖、肌醇、甘氨酸、鹽酸硫胺素(VB1)、鹽酸吡哆醇、煙酸以及各種無機(jī)鹽試劑均為分析純。
1.2 儀器與設(shè)備
BP-190S天平 Sartorius公司;Tomy ES-315 Tomy High-Pressure Steam Sterilizer Kogyo公司;ZRD-5030全自動(dòng)鼓風(fēng)干燥箱 上海智誠分析儀器制造有限公司;HZT2雙層振蕩器 哈爾濱市東聯(lián)電子技術(shù)開發(fā)有限公司;UV1102紫外-可見分光光度計(jì) 上海天美科學(xué)儀器有限公司。
1.3 方法
硫酸鋁、沸石、十六烷基三甲溴化銨(CTMAB)、陽離子型助凝劑陽離子聚丙烯酰胺(CPAM)、鹽酸、硫酸、氫氧化鈉、重鉻酸鉀、試亞鐵靈指示劑、硫酸亞鐵銨、硫酸銀等。
1.3.1 培養(yǎng)基配制
配制MS、B5和NT三種基本培養(yǎng)基[14],各培養(yǎng)基按實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)附加激素、蔗糖,高壓滅菌前調(diào)節(jié)酸堿度,分裝于250mL三角瓶,每瓶盛100mL培養(yǎng)基,高壓121℃滅菌20min,冷卻待用。
1.3.2 懸浮細(xì)胞培養(yǎng)體系的建立
取固體培養(yǎng)基B5上繼代20d左右生長(zhǎng)旺盛、疏松、易于分散的愈傷組織接種于B5+3mg/L NAA +0.2mg/L 6-BA(蔗糖40g/L、搖床120r/min、(25±2)℃,光照度1500~2000lx、光照12h/d)液體培養(yǎng)基中進(jìn)行細(xì)胞懸浮培養(yǎng),培養(yǎng)5~6d后,培養(yǎng)液中出現(xiàn)懸浮單細(xì)胞或小細(xì)胞團(tuán)。繼代培養(yǎng)時(shí),加入等量的新鮮培養(yǎng)液,搖勻,稍靜置,待大細(xì)胞團(tuán)沉降后分瓶,不需過濾,即可得到不含大細(xì)胞團(tuán)塊的培養(yǎng)物。通過3~5次繼代培養(yǎng),即可得到含單細(xì)胞或小細(xì)胞團(tuán)的培養(yǎng)物。取上述繼代培養(yǎng)的細(xì)胞,接種于按正交表L9(34)配制的B5培養(yǎng)基(表1)中,考察蔗糖質(zhì)量濃度、激素、pH值、接種量(鮮質(zhì)量)對(duì)大花金挖耳懸浮細(xì)胞培養(yǎng)系中細(xì)胞生長(zhǎng)和黃酮類化合物合成的影響。
表1 B5培養(yǎng)基組分L9(34)正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)因素水平表Table 1 Factors and levels in the orthogonal array design for optimizing culture conditions in B5 medium
1.3.3 懸浮細(xì)胞在不同激素組合的B5、MS、NT培養(yǎng)基中懸浮培養(yǎng)的比較實(shí)驗(yàn)
在以上研究的基礎(chǔ)上,取繼代培養(yǎng)在B5+2.0mg/L NAA+0.2mg/L 6-BA(pH5.5,蔗糖40g/L)培養(yǎng)基中3代的懸浮細(xì)胞接種40g/L(鮮質(zhì)量)于不同質(zhì)量濃度NAA(1.0、2.0、3.0mg/L)和6-BA(0.1、0.2、0.3、0.4、0.8mg/L)組合的B5、MS、NT三種培養(yǎng)基中,實(shí)驗(yàn)的每種處理接種10~15瓶,測(cè)定大花金挖耳懸浮細(xì)胞培養(yǎng)系中細(xì)胞生物量和黃酮類化合物得率。
1.3.4 VB1對(duì)大花金挖耳懸浮培養(yǎng)細(xì)胞生長(zhǎng)和黃酮類化合物合成的影響
取繼代培養(yǎng)7~10d的懸浮細(xì)胞接種40g/L于已附加0.5、1.0、2.0、4.0、6.0mg/L等不同質(zhì)量濃度VB1的NT+1.0mg/L NAA+0.2mg/L 6-BA(pH5.5,蔗糖40g/L)培養(yǎng)基中,考察VB1對(duì)大花金挖耳細(xì)胞懸浮培養(yǎng)的影響。
取繼代培養(yǎng)7~10d的懸浮細(xì)胞接種40g/L鮮質(zhì)量于NT+1.0mg/L NAA+0.2mg/L 6-BA(pH5.5,蔗糖40g/L)培養(yǎng)基中,在基本培養(yǎng)條件下進(jìn)行培養(yǎng),每隔3d隨機(jī)取樣1次,觀察24d,測(cè)定懸浮細(xì)胞生物量和黃酮類化合物得率。
1.3.6 細(xì)胞生物量的測(cè)定
將實(shí)驗(yàn)中不同處理懸浮培養(yǎng)20d的褐化細(xì)胞進(jìn)行抽濾,所得細(xì)胞在60℃條件下烘干至質(zhì)量恒定。以收獲時(shí)的細(xì)胞生物量作生長(zhǎng)指標(biāo),細(xì)胞凈生物量=收獲時(shí)的細(xì)胞生物量-接種時(shí)的細(xì)胞生物量。
1.3.7 培養(yǎng)物中黃酮類化合物的分析
黃酮類化合物質(zhì)量濃度采用分光光度法[15]。用蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,確定510nm為檢測(cè)波長(zhǎng),以質(zhì)量濃度C(mg/mL)對(duì)吸光度(A)進(jìn)行線性回歸,得標(biāo)準(zhǔn)曲線回歸方程C=0.0768A-0.0004,r=0.9997。將烘干的細(xì)胞粉碎,過60目篩,取細(xì)胞干粉適量,丙酮振蕩提取3次,每24h提取1次,合并3次提取液,減壓濃縮后用30%乙醇定容至0.50g/mL,吸取樣品溶液,在510nm波長(zhǎng)處測(cè)定其吸光度,根據(jù)回歸方程及測(cè)得的吸光度得出樣品中黃酮類化合物質(zhì)量濃度(C),通過公式計(jì)算出細(xì)胞生物量中的黃酮類化合物得率(X),X/%=V×
C/N×M×10-1,式中:V為提取濾液體積/mL;C為提取液中測(cè)得的黃酮類化合物質(zhì)量濃度/(mg/mL);N為供試細(xì)胞生物量/g;M為提取液稀釋的倍數(shù)。懸浮培養(yǎng)細(xì)胞黃酮類化合物(凈)產(chǎn)量/(mg/L)=黃酮類化合物得率/%×懸浮培養(yǎng)的細(xì)胞(凈)生物量/(g/L)×1000。
1.4 數(shù)據(jù)分析
采用DPS 7.05統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行單因素方差鄧肯式分析(P=0.05),以上實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
2.1 大花金挖耳細(xì)胞懸浮培養(yǎng)體系的建立
在前期研究的基礎(chǔ)上[13],以B5為基本培養(yǎng)基,研究了蔗糖質(zhì)量濃度、激素、pH值和接種量4個(gè)因素對(duì)大花金挖耳懸浮培養(yǎng)細(xì)胞的影響(表2)。結(jié)果發(fā)現(xiàn)在不同組合的培養(yǎng)基中懸浮培養(yǎng)細(xì)胞所得黃酮類化合物凈產(chǎn)量差異明顯,最高值和最低值之間相差4.3倍。從表2對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果的直觀分析可知:B因素(NAA+6-BA)對(duì)培養(yǎng)細(xì)胞所得的黃酮類化合物凈產(chǎn)量影響最大,A因素(蔗糖質(zhì)量濃度)次之,D因素(接種量)影響為第三,C因素(pH值)影響最小,根據(jù)平均值大小可知最優(yōu)組合為A1B3C3D3,即B5培養(yǎng)基中,當(dāng)蔗糖質(zhì)量濃度為40g/L,激素質(zhì)量濃度為2.0mg/L NAA+0.2mg/L 6-BA,pH5.5,接種量40g/L時(shí),最有利于懸浮培養(yǎng)細(xì)胞的生長(zhǎng)和活性物質(zhì)的形成,所得黃酮類化合物凈產(chǎn)量為147.84mg/L。
表2 B5培養(yǎng)基組分L9(34)正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果分析Table 2 L9(34) orthogonal array design arrangement and experimental results
2.2 大花金挖耳細(xì)胞懸浮培養(yǎng)系的優(yōu)化
2.2.1 B5培養(yǎng)基中激素配比對(duì)大花金挖耳細(xì)胞懸浮培養(yǎng)的影響
將繼代在B5+2.0mg/L NAA+0.2mg/L 6-BA(pH5.5,蔗糖40g/L)培養(yǎng)基中3代的懸浮細(xì)胞接種于表3所設(shè)計(jì)的一系列培養(yǎng)基上。結(jié)果表明大花金挖耳懸浮培養(yǎng)細(xì)胞在不同質(zhì)量濃度的NAA和6-BA激素組合的B5培養(yǎng)基中均可生長(zhǎng)并產(chǎn)生黃酮類化合物。高質(zhì)量濃度的NAA、6-BA不利于大花金挖耳懸浮培養(yǎng)細(xì)胞的生長(zhǎng)和黃酮類化合物的產(chǎn)生,其中懸浮培養(yǎng)于B5+3.0mg/L NAA+0.4mg/L 6-BA中的細(xì)胞生物量、黃酮類化合物得率和產(chǎn)量均低于其他處理。低質(zhì)量濃度的NAA、6-BA有利于大花金挖耳懸浮培養(yǎng)細(xì)胞的生長(zhǎng)和黃酮類化合物的產(chǎn)生,當(dāng)NAA質(zhì)量濃度為1.0mg/L、6-BA在0.1~0.3mg/L時(shí),細(xì)胞生物量在19.75~19.98g/L之間,黃酮類化合物得率最高達(dá)0.97%,黃酮類化合物產(chǎn)量最高達(dá)193.22mg/L,顯著高于其他處理。
2.2.2 MS培養(yǎng)基中激素配比對(duì)大花金挖耳細(xì)胞懸浮培養(yǎng)的影響
表3 B5培養(yǎng)基中不同激素質(zhì)量濃度組合對(duì)細(xì)胞懸浮培養(yǎng)的影響Table 3 Effect of concentrations of NAA and 6-BA in B5 medium on cell biomass and flavonoid production
表4 MS培養(yǎng)基中不同激素質(zhì)量濃度組合對(duì)細(xì)胞懸浮培養(yǎng)的影響Table 4 Effect of concentrations of NAA and 6-BA in MS medium on cell biomass and flavonoid production
表4結(jié)果表明,大花金挖耳懸浮培養(yǎng)細(xì)胞在不同質(zhì)量濃度的NAA和6-BA激素組合的MS培養(yǎng)基中均可生長(zhǎng)和產(chǎn)生黃酮類化合物。當(dāng)NAA質(zhì)量濃度為1.0mg/L時(shí),隨6-BA在0.1~0.8mg/L范圍內(nèi)質(zhì)量濃度的不斷升高,細(xì)胞生物量、黃酮類化合物得率及產(chǎn)量有先上升后下降的趨勢(shì),其中MS+ 1.0mg/L NAA+0.2mg/L 6-BA中的細(xì)胞生物量、黃酮類化合物得率及產(chǎn)量顯著高于其他處理,分別為20.54g/L、0.9891%、202.02mg/L,MS+ 1.0mg/L NAA+0.8mg/L 6-BA培養(yǎng)基中培養(yǎng)細(xì)胞的黃酮類化合物得率及產(chǎn)量最低,分別為0.7228%、113.48mg/L;當(dāng)NAA質(zhì)量濃度為2.0~3.0mg/L時(shí),隨6-BA在0.1~0.4mg/L范圍內(nèi)質(zhì)量濃度的升高,細(xì)胞生物量、黃酮類化合物得率及產(chǎn)量都有顯著下降的趨勢(shì),其中MS+ 3.0mg/L NAA+0.4mg/L 6-BA中的細(xì)胞生物量最低為14.74g/L??梢姷唾|(zhì)量濃度的NAA、6-BA有利于大花金挖耳懸浮培養(yǎng)細(xì)胞的生長(zhǎng)和黃酮類化合物的產(chǎn)生,高質(zhì)量濃度的NAA、6-BA不利于大花金挖耳懸浮培養(yǎng)細(xì)胞的生長(zhǎng)和黃酮類化合物的產(chǎn)生。
2.2.3 NT培養(yǎng)基中激素配比對(duì)大花金挖耳細(xì)胞懸浮培養(yǎng)的影響
表5 NT培養(yǎng)基中不同激素質(zhì)量濃度組合對(duì)細(xì)胞懸浮培養(yǎng)的影響Table 5 Effect of concentrations of NAA and 6-BA in NT medium on cell biomass and flavonoid production
表5結(jié)果表明,大花金挖耳懸浮培養(yǎng)細(xì)胞在1.0~3.0mg/L NAA和0.1~0.8mg/L 6-BA激素組合的NT培養(yǎng)基中均可生長(zhǎng)和產(chǎn)生黃酮類化合物。較低質(zhì)量濃度的NAA、6-BA有利于大花金挖耳懸浮培養(yǎng)細(xì)胞的生長(zhǎng)和黃酮類化合物的產(chǎn)生,在NT+1.0mg/L NAA+0.1~0.3mg/L 6-BA培養(yǎng)基中,細(xì)胞收獲量保持在22.67~23.56g/L,顯著高于NT+1.0mg/L NAA+0.4~0.8mg/L 6-BA,其中NT+ 1.0mg/L NAA+0.2mg/L 6-BA培養(yǎng)基中細(xì)胞黃酮類化合物得率及產(chǎn)量分別達(dá)1.22%、283.95mg/L,顯著高于所有處理;高質(zhì)量濃度的NAA、6-BA不利于大花金挖耳懸浮培養(yǎng)細(xì)胞的生長(zhǎng)和黃酮類化合物的產(chǎn)生,其中NT+ 3.0mg/L NAA +0.4mg/L 6-BA和NT+1.0mg/L NAA +0.8mg/L 6-BA培養(yǎng)基中懸浮培養(yǎng)細(xì)胞生物量、黃酮類化合物得率及產(chǎn)量低于其他處理。綜合分析可知NT+1.0mg/L NAA+0.2mg/L 6-BA最有利于大花金挖耳懸浮培養(yǎng)細(xì)胞的生長(zhǎng)和黃酮類化合物的產(chǎn)生。
2.3 VB1對(duì)大花金挖耳懸浮培養(yǎng)細(xì)胞生長(zhǎng)和黃酮類化合物合成的影響
圖1 VB1質(zhì)量濃度對(duì)懸浮培養(yǎng)細(xì)胞生長(zhǎng)(a)和黃酮類化合物合成(b)的影響Fig.1 Effect of VB1concentration in NT medium on cell biomass and flavonoid production
由圖1可知,向NT培養(yǎng)基中添加0.5、1.0、2.0、4.0、6.0mg/L VB1時(shí),發(fā)現(xiàn)當(dāng)VB1在0.5~6.0mg/L范圍內(nèi)變化時(shí),細(xì)胞凈生長(zhǎng)量先升后降,VB1在1.0~4.0mg/L范圍內(nèi),細(xì)胞凈生長(zhǎng)量維持在21.62~22.34g/L,以含2.0mg/L VB1的培養(yǎng)基中細(xì)胞凈生長(zhǎng)量最高,可達(dá)22.34g/L,NT培養(yǎng)基中隨VB1質(zhì)量濃度的增加,黃酮類化合物得率先升后降,含1.0~4.0mg/L VB1的培養(yǎng)基細(xì)胞黃酮類化合物得率穩(wěn)定在1.22%左右,含過高或過低質(zhì)量濃度VB1的培養(yǎng)基對(duì)細(xì)胞生長(zhǎng)和黃酮類化合物合成都不利,1.0~4.0mg/L VB1的培養(yǎng)基有抑制細(xì)胞褐化的趨勢(shì),有利于大花金挖耳懸浮培養(yǎng)細(xì)胞繼代培養(yǎng)。
2.4 大花金挖耳懸浮培養(yǎng)細(xì)胞生長(zhǎng)和黃酮類化合物形成的時(shí)間進(jìn)程
由圖2可知,在NT培養(yǎng)基中懸浮培養(yǎng)的大花金挖耳細(xì)胞生長(zhǎng)和黃酮類化合物的合成大致呈S形,大花金挖耳黃酮類化合物的積累和細(xì)胞生長(zhǎng)具有偶聯(lián)的特性,
第0~3天為滯后生長(zhǎng)期,細(xì)胞生物量低,3~15d為快數(shù)生長(zhǎng)期,細(xì)胞生物量和黃酮類化合物得率逐漸升高,15~21d為靜止期,細(xì)胞生長(zhǎng)緩慢,黃酮類化合物得率變化較穩(wěn)定,細(xì)胞生物量為23.54~24.51g/L,黃酮類化合物得率為1.19~1.23%,黃酮類化合物產(chǎn)量達(dá)279.90~301.77mg/L,21~24d為衰亡期,細(xì)胞生物量和黃酮類化合物得率開始下降。
圖2 懸浮培養(yǎng)細(xì)胞生長(zhǎng)和黃酮類化合物合成累積曲線Fig.2 Curves of suspension cell growth and flavonoides accumulation in NT medium
不同種類的培養(yǎng)基對(duì)植物培養(yǎng)細(xì)胞生長(zhǎng)和次生產(chǎn)物的形成有很大的影響[16]。培養(yǎng)基一方面要滿足植物細(xì)胞的生長(zhǎng),同時(shí)還要使細(xì)胞能合成和積累多的次生產(chǎn)物。研究表明大花金挖耳懸浮培養(yǎng)細(xì)胞在MS、B5、NT三種培養(yǎng)基中均能生長(zhǎng)并合成活性物質(zhì),這與3種培養(yǎng)基組分大致相似有關(guān),其中NT培養(yǎng)基較MS和B5培養(yǎng)基更有利于大花金挖耳細(xì)胞生長(zhǎng)和活性物質(zhì)的生物合成,可能與NT培養(yǎng)基的總氮水平低于MS,硝態(tài)氮與銨態(tài)氮的配比低于B5有關(guān);另外,已知KH2PO4、MgSO4等在細(xì)胞培養(yǎng)及微生物發(fā)酵中的初生、次生代謝發(fā)揮著重要的作用[17],高質(zhì)量濃度的MgSO4和KH2PO4也可能是NT較MS和B5培養(yǎng)基較有利于大花金挖耳細(xì)胞生長(zhǎng)和活性物質(zhì)的生物合成原因。以上說明了對(duì)大花金挖耳細(xì)胞培養(yǎng)的培養(yǎng)基組分進(jìn)行進(jìn)一步優(yōu)化的必要性。
懸浮培養(yǎng)是植物細(xì)胞大規(guī)模培養(yǎng)的基礎(chǔ)[18],而愈傷組織高產(chǎn)系在進(jìn)入懸浮培養(yǎng)后有可能出現(xiàn)次生代謝物合成能力的降低、消失等不穩(wěn)定現(xiàn)象[19],因此建立并優(yōu)化培養(yǎng)條件是得到穩(wěn)定高產(chǎn)懸浮系的首要任務(wù)。本研究以產(chǎn)生黃酮類化合物能力較強(qiáng)的大花金挖耳根源愈傷組織為材料[13],以正交試驗(yàn)的方法研究了蔗糖質(zhì)量濃度、激素、pH值、接種量等培養(yǎng)條件對(duì)大花金挖耳細(xì)胞懸浮培養(yǎng)的綜合影響,進(jìn)而進(jìn)行了不同培養(yǎng)基和激素組合及添加VB1對(duì)大花金挖耳懸浮培養(yǎng)細(xì)胞生長(zhǎng)和黃酮類化合物的合成的影響,研究發(fā)現(xiàn)NT培養(yǎng)基中附加低質(zhì)量濃度的NAA 1.0mg/L和6-BA 0.2mg/L對(duì)大花金挖耳細(xì)胞生長(zhǎng)和次生代謝物的合成均有促進(jìn)作用,實(shí)驗(yàn)所建立的大花金挖耳細(xì)胞懸浮系在0~24d的培養(yǎng)時(shí)間內(nèi)細(xì)胞生長(zhǎng)和黃酮類化合物的合成大致呈S形,其中接種后第15~21天細(xì)胞生物量為23.54~24.51g/L,黃酮類化合物得率為1.19%~1.23%,黃酮類化合物產(chǎn)量達(dá)279.90~301.77mg/L,上述研究可為下一步提高大花金挖耳懸浮培養(yǎng)生產(chǎn)黃酮類化合物的能力的生理生化調(diào)控提供參考。
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Optimization of Cell Suspension Culture of Carpesium macrocephalum for Flavonoid Production
LI Yu-ping1,2,GONG Ning3,WANG Yong-hong1,F(xiàn)ENG Jun-tao1,ZHANG Xing1,*
(1. Research and Development Center of Bioratioual Pesticide, Northwest A&F University, Yangling 712100, China;
2. College of Life Sciences, Northwest A&F University, Yangling 712100, China;3. College of Sciences, Northwest A&F University, Yangling 712100, China)
The goal of the present study was to optimize the culture conditions for the establishment of suspension cell lines from Carpesium macrocephalum callus. The effects of medium type, concentrations of sucrose, VB1, NAA and 6-BA, initial pH value, inoculum quantity and culture time on cell biomass and flavonoid production were examined. The optimal conditions for culture in NT liquid medium conducive to both cell growth and flavonoid production were as follows: initial pH, 5.5, inoculum quantity, 40 g/L; NAA concentration, 1.0 mg/L; and 6-BA concentration, 0.2 mg/L. Cell browning was inhibited by adding 1.0-4.0 mg/L of VB1. Both the growth of Carpesium macrocephalum cells and the synthesis of flavonoids trended to first ascend and then descent with prolonged culture time. A cell biomass ranging from 23.54 to 24.51 g/L was achieved at 15-20 d post-inoculation, and the yield of flavonoids was between 1.19% and 1.23%.
Carpesium macrocephalum;cell suspension culture;biosynthesis;flavonoid
R284.2
A
1002-6630(2010)21-0239-05
2010-02-26
國家自然科學(xué)基金項(xiàng)目(30971934);“十五”國家科技攻關(guān)重大專項(xiàng)(2002BA516A04)
李玉平(1970—),男,副教授,博士,主要從事藥用植物資源研究。E-mail:liyuping1970@nwsuaf.edu.cn
*通信作者:張興(1952—),男,教授,博士,主要從事生物農(nóng)藥研究。E-mail:zhxing1952@126.com