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        JNK信號通路參與Aβ毒性對大鼠海馬神經(jīng)元的損傷

        2010-02-27 08:12:48叢偉紅劉建勛董小霞
        中國藥理學通報 2010年8期
        關鍵詞:海馬模型

        叢偉紅,劉建勛,楊 斌,董小霞

        (中國中醫(yī)科學院西苑醫(yī)院1.實驗中心、2.病理室,北京 100091)

        老年性癡呆(Alzheimers disease,AD)典型的組織病理學改變之一是腦內(nèi)出現(xiàn)大量的老年斑(Senile plaque,SP),其核心成分是 β-淀粉樣蛋白(β-amyloid peptide,Aβ)。Aβ的多種片段在體內(nèi)外均可引起神經(jīng)元凋亡,其毒性作用可能與c-Jun氨基端激酶(c-Jun NH2-terminal protein kinase,JNK)信號轉導通路密切相關[1-2]。目前涉及JNK與Aβ神經(jīng)毒性之間關系的實驗室研究多應用原代神經(jīng)元、PC12等細胞或Tg2576、ASK1基因缺陷小鼠等轉基因動物。相較細胞、轉基因模型,正常動物腦內(nèi)注射Aβ建立模型也是研究AD生理病理變化的重要手段之一,且兼具價廉、實驗周期短的優(yōu)點。本實驗通過Aβ1-40注射大鼠雙側海馬CA1區(qū)建立毒性損傷模型,探討Aβ對海馬神經(jīng)元的影響以及神經(jīng)元凋亡上游JNK信號轉導通路在Aβ神經(jīng)毒性損傷過程中的作用。

        1 材料與方法

        1.1 動物Wistar大鼠,10只,♂,體質(zhì)量230~280 g,北京維通利華實驗動物技術有限公司提供,合格證號:SCXK(京)2006-0009。隨機分為假手術(對照)組和Aβ毒性損傷(模型)組,每組5只。

        1.2 主要試劑細胞凋亡原位檢測(TUNEL)試劑盒,購自美國Intergen公司;多聚賴氨酸、p-JNK抗體,購自美國 Santa Cruz公司;Aβ1-40(HPLC級)、SP、DAB試劑盒,購自美國Sigma公司。Aβ1-40使用前于37℃孵育48 h。

        1.3 方法

        1.3.1 Aβ毒性損傷大鼠模型的建立 參照文獻方法[3]建立Aβ毒性損傷大鼠模型,對照組注射生理鹽水。

        1.3.2 組織切片制備 Aβ1-40注射后5周,以4%水合氯醛麻醉大鼠(1 ml/100 g體重腹腔注射),左心室插管至主動脈,10%中性緩沖醛溶液灌注后取腦,切片厚5 μm,用于 HE 染色、Nissl染色、TUNEL染色和免疫組化實驗。

        1.3.3 HE染色、Nissl染色觀察海馬病理學變化及神經(jīng)元存活情況 切片按常規(guī)進行HE染色、Nissl染色,光鏡下觀察。

        1.3.4 TUNEL法檢測神經(jīng)元凋亡 切片脫蠟,蛋白酶 K(20 mg·L-1,pH 7.4 ~ 8.0)37℃ 孵育;TUNEL反應液和轉化劑-POD各37℃孵育1 h;DAB室溫孵育;蘇木精復染;IPP6.0軟件行圖像分析。不加TdT孵育為陰性對照。

        1.3.5 免疫組化法觀察海馬p-JNK陽性神經(jīng)元形態(tài)及數(shù)目 切片抗原修復,滴加封閉液、一抗(1∶200),4℃過夜。分別滴加HRP標記IgG、辣根酶標記鏈霉卵白素工作液(S-A/HRP)37℃孵育;DAB顯色,蘇木精復染;IPP 6.0軟件行圖像分析。PBS代替一抗作陰性對照。

        1.3.6 電鏡觀察海馬CA1區(qū)神經(jīng)元超微結構 迅速分離出海馬CA1區(qū),在2.5%的戊二醛溶液中預固定4 h,1%鋨酸后固定2 h,系列乙醇脫水,環(huán)氧樹脂定向包埋,切片,片厚800?,鈾-鉛雙染色。

        1.4 統(tǒng)計學處理應用 SPSS 10.0統(tǒng)計軟件對數(shù)據(jù)進行分析。數(shù)據(jù)均用±s表示,兩組間均數(shù)比較用t檢驗。

        2 結果

        2.1 海馬病理學變化及神經(jīng)元存活情況正常組大鼠海馬CA1區(qū)錐體細胞輪廓清晰,排列規(guī)則,著色均勻,核大明顯。模型組大鼠海馬多數(shù)細胞形態(tài)及染色與正常細胞類似,但細胞層數(shù)減少,排列較不規(guī)則,間隙增大,個別細胞體積變小,呈多邊形或梭形,核固縮,HE染色可見明顯增生的膠質(zhì)細胞,Nissl染色可見整個細胞深染成藍色,見Fig 1。

        Fig 1 Light micrographs of HE-stained/Nissl-stained CA1 hippocampal neurons(×400)

        2.2 海馬神經(jīng)元凋亡情況對照組大鼠海馬細胞核呈藍色,僅見極少數(shù)TUNEL陽性細胞。模型組可見較多海馬細胞核呈棕黃色、固縮,見Fig 2。

        2.3 大鼠海馬p-JNK陽性神經(jīng)元的形態(tài)及數(shù)目對照組大鼠海馬區(qū)僅見很少的p-JNK陽性神經(jīng)元。模型組部分海馬細胞體積縮小,細胞帶不連貫,可見較多的p-JNK陽性神經(jīng)元,見Fig 3。

        2.4 電鏡觀察海馬CA1區(qū)神經(jīng)元超微結構對照組大鼠海馬神經(jīng)元核膜完整光滑,核大而圓,染色質(zhì)分布均勻,線粒體等細胞器結構清晰。模型組大鼠海馬神經(jīng)元固縮,電子密度明顯升高,胞質(zhì)減少、空泡化,核膜扭曲,染色質(zhì)濃縮、邊集,核固縮。在凋亡神經(jīng)元周圍還可見膠質(zhì)細胞,其胞質(zhì)內(nèi)可見髓樣體。見Fig 4。

        3 討論

        Fig 2 Neuron apoptosis in hippocampus after Aβ injection(TUNEL staining)

        Fig 3 Immunostaining of p-JNK expression in hippocampus

        Fig 4 Electron micrographs of CA1 hippocampal neurons

        AD患者腦內(nèi)Aβ的異常沉積是神經(jīng)元變性、丟失的重要原因。Aβ在凝集過程中可通過激活小膠質(zhì)細胞和補體,釋放細胞因子和自由基等,誘發(fā)炎癥反應,促使tau蛋白異常磷酸化,導致神經(jīng)元凋亡和壞死;同時,SP內(nèi)的Aβ與炎癥反應相互激發(fā),放大凋亡信號,加重神經(jīng)元凋亡[4]。大鼠海馬注射Aβ后,HE和Nissl染色顯示海馬CA1區(qū)錐體細胞層數(shù)較對照組減少,排列松散,個別細胞固縮、深染,表明海馬神經(jīng)元數(shù)目減少、細胞狀態(tài)發(fā)生異常改變。超微結構觀察顯示明顯的凋亡特征:神經(jīng)元固縮,核膜明顯扭曲,核固縮,染色質(zhì)凝集于核膜下呈花瓣狀或團塊狀。光鏡及電鏡下還可見凋亡神經(jīng)元周圍有明顯增生的膠質(zhì)細胞,表明Aβ可同時通過膠質(zhì)細胞分泌細胞因子啟動腦內(nèi)的炎癥修復機制,加重神經(jīng)元的凋亡和壞死。TUNEL染色進一步觀察顯示,TUNEL陽性細胞數(shù)較對照組明顯增加,表明海馬區(qū)神經(jīng)元凋亡明顯增多。那么,作為神經(jīng)元外的病理成分,Aβ經(jīng)過哪條信號轉導途徑引發(fā)了細胞內(nèi)的上述變化?

        JNK信號通路被認為是一條導致細胞凋亡的重要通路,眾多神經(jīng)元凋亡的誘因如缺血/再灌注、氧化應激、炎癥介質(zhì)等均以激活的JNK作為共需元素。已知c-Jun的持續(xù)性表達和磷酸化為神經(jīng)元凋亡所必需,Aβ誘導大鼠皮質(zhì)神經(jīng)元凋亡時,c-Jun的磷酸化水平呈時間依賴性升高[5]。JNK則是c-Jun磷酸化調(diào)節(jié)的一個重要因素,是MAPK家族中唯一能夠有效磷酸化c-Jun的Ser-63和Ser-73位點的蛋白激酶,從而啟動c-Jun介導的細胞凋亡信號轉導系統(tǒng)。在AD患者腦內(nèi)發(fā)現(xiàn),Aβ沉積周圍神經(jīng)元內(nèi)的JNK信號通路被激活,同時伴有神經(jīng)元凋亡。大鼠海馬注射Aβ后,磷酸化JNK(p-JNK)陽性細胞比例較對照組明顯升高,且海馬神經(jīng)元凋亡明顯增多,同時伴有明顯增生的膠質(zhì)細胞。由于JNK活化后可直接轉錄caspase-8,啟動細胞凋亡,因而提示JNK信號通路被明顯激活,繼而參與了Aβ對海馬神經(jīng)元的毒性損傷,加速了神經(jīng)元的凋亡。

        本實驗以正常動物建立模型,證實JNK信號通路參與了Aβ毒性對神經(jīng)元的損傷作用,為應用細胞、轉基因動物以外的模型進行相關研究提供了一定的實驗依據(jù)。

        [1] Troy C M,Rabacchi S A,Xu Z,et al.β-amyloid-induced neuronal apoptosis requires c-Jun N-terminal kinase activation[J].J Neurochem,2001,77(1):157-64.

        [2] Lin A,Dibling B.The true face of JNK activation in apoptosis[J].Aging cell,2002,1(2):112-6.

        [3] 叢偉紅,劉建勛,徐 立.人參、銀杏葉提取物對淀粉樣蛋白1-40毒性損傷大鼠全腦神經(jīng)遞質(zhì)的影響[J].中國藥理學通報,2006,22(6):747-50.

        [3] Cong W H,Liu J X,Xu L.Effect of combination of extracts of ginseng and ginkgo biloba on neurotransmitters in whole brain of βamyloid peptide 1-40 treated rat[J].Chin Pharmacol Bull,2006,22(6):747-50.

        [4] Standridge J B.Vicious cycles within the neuropathophysiologic mechanisms of Alzheimer’s disease [J].Curr Alzheimer Res,2006,3(2):95-108.

        [5] Li L M,Liu Q H,Qiao J T,Zhang C.Abeta(31-35)-induced neuronal apoptosis is mediated by JNK-dependent extrinsic apoptosis pathway[J].Neurosci Bull,2009,25(6):361-6.

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