龍可 薛耀明 沙建平 桑丹 林占
波動性葡萄糖對胰島β細胞INS-1的影響
龍可 薛耀明 沙建平 桑丹 林占
目的探討波動性葡萄糖對培養(yǎng)的胰島β細胞株INS-1細胞的損傷機制。方法實驗分5組。對照組:葡萄糖濃度為5.5 mmol/L;持續(xù)高糖組:葡萄糖濃度為16.7 mmol/L;波動性高糖組:16.7 mmo/L葡萄糖培養(yǎng)2 h 后更換葡萄糖濃度為5.5 mmo/L,繼續(xù)培養(yǎng)3 h,每天重復(fù)3 次,夜間9 h維持在5.5 mmo/L葡萄糖的培養(yǎng)基中;N-乙酰半胱氨酸(NAC,1.0 mmo/L)+高糖組;NAC+波動性高糖組。流式細胞儀檢測活性氧簇(ROS)的水平;四氮唑藍定量檢測細胞內(nèi)葡萄糖-6-磷酸脫氫酶(G6PD)的活性;同時檢測還原型輔酶Ⅱ(NADPH)的含量。結(jié)果干預(yù)72 h后,對照組、高糖組、波動性高糖組、NAC+高糖組和NAC+波動性高糖組細胞的ROS活性分別為37.77±2.31、86.97±7.97、124.27±10.04、60.92±2.61和51.47±3.36;G6PD活性分別為1.25±0.03、1.09±0.02、1.03±0.01、1.12±0.02和1.21±0.01;NADPH含量分別為(0.123±0.003)mmol/mg prot、(0.112±0.004)mmol/mg prot、(0.099±0.002)mmol/mg prot、(0.116±0.005)mmol/mg prot和(0.120±0.002)mmol/mg prot。波動性高糖組細胞ROS活性較單純高糖組顯著增加(Plt;0.01),G6PD活性和NADPH含量較單純高糖組顯著減少(Plt;0.01);加NAC共孵育使細胞的變化程度減小。結(jié)論波動性高濃度葡萄糖使培養(yǎng)的INS-1細胞氧化應(yīng)激水平增高,其機制可能是由于抗氧化酶G6PD活性降低導(dǎo)致了氧化還原的失衡。
胰腺β細胞; 活性氧; 葡萄糖-6-磷酸脫氫酶; 波動性高糖
隨著人們對糖尿病發(fā)病機制研究的不斷深入,高糖引起的氧化應(yīng)激在糖尿病發(fā)生發(fā)展中的作用備受關(guān)注[1]。與其他組織細胞相比,胰島細胞內(nèi)抗氧化物酶水平較低[2],這使其更容易受到氧化應(yīng)激攻擊。葡萄糖-6-磷酸脫氫酶(G6PD)是細胞內(nèi)關(guān)鍵的抗氧化酶,它通過調(diào)節(jié)還原型輔酶Ⅱ(NADPH)來維持細胞內(nèi)抗氧化物質(zhì)水平,協(xié)調(diào)細胞內(nèi)氧化還原的平衡。而氧化應(yīng)激歸根結(jié)底即細胞內(nèi)活性氧簇(ROS)的產(chǎn)生增多和(或)抗氧化酶的減少。最近研究表明,血糖波動比持續(xù)高血糖對糖尿病并發(fā)癥危害可能更嚴(yán)重。本實驗通過波動性葡萄糖處理培養(yǎng)的胰島β細胞,觀察波動性葡萄糖對β細胞的影響,探討其機制。
一、實驗分組及處理
大鼠胰島細胞瘤細胞株INS-1購自武漢大學(xué)細胞庫,置RPM I1640的完全培養(yǎng)基(含10 mmol/L Hepes,1 mmol/L 丙酮酸鈉,50 μmol/L β-巰基乙醇,100 U/ml青霉素和100 μg/ml的鏈霉素)常規(guī)培養(yǎng),消化收集細胞,調(diào)整細胞濃度至1×106/ml。6孔培養(yǎng)板中每孔加入1 ml細胞懸液,分5個實驗組。對照組:葡萄糖濃度為5.5 mmol/L;持續(xù)高糖組:葡萄糖濃度為16.7 mmol/L;波動性高糖組:16.7 mmo/L葡萄糖培養(yǎng)2 h后更換葡萄糖濃度為5.5 mmo/L,繼續(xù)培養(yǎng)3 h,每天重復(fù)3 次,夜間9 h維持在5.5 mmo/L葡萄糖培養(yǎng)基中[3];N-乙酰半胱氨酸(NAC,1.0 mmo/L)+高糖組;NAC+波動性高糖組。每組設(shè)3個復(fù)孔,共干預(yù)72 h。
二、檢測指標(biāo)
1.ROS測定:采用熒光探針DCFH-DA測定法。按照ROS檢測試劑盒說明書操作。取1 ml細胞懸液(gt;104)上流式細胞儀檢測,激發(fā)波長488 nm,發(fā)射波長525 nm,計算平均熒光強度(MFI)。
2.G6PD活性檢測:取1 ml細胞懸液(gt;106)至凍存管中,置液氮冷凍后37℃水浴融化,重復(fù)3次,每次間隔10 min。最后將液體轉(zhuǎn)移至1.5 ml EP管,4℃ 12 000 g離心5 min,取上清,采用四氮唑藍定量測定法檢測G6PD活性。
3.NADPH含量測定:按照文獻[4]的方法檢測,單位為mmol/mg prot。
三、統(tǒng)計學(xué)方法
一、細胞內(nèi)ROS的變化
對照組、高糖組、波動性高糖組、NAC+高糖組和NAC+波動性高糖組細胞的ROS分別為37.77±2.31、86.97±7.97、124.27±10.04、60.92±2.61和51.47±3.36,高糖組和波動性高糖組均較對照組明顯增高(Plt;0.01),同時波動性高糖組又顯著高于高糖組(Plt;0.01)。NAC+波動性高糖組較單純波動性高糖組顯著減少(Plt;0.01),但仍高于對照組(Plt;0.01,圖1)。
圖1 各組INS-1細胞內(nèi)ROS的熒光強度圖
二、G6PD和NADPH的變化
對照組、高糖組、波動性高糖組、NAC+高糖組和NAC+波動性高糖組細胞的G6PD活性分別為1.25±0.03、1.09±0.02、1.03±0.01、1.12±0.02和1.21±0.01;NADPH含量分別為(0.123±0.003)mmol/mg prot、(0.112±0.004)mmol/mg prot、(0.099±0.002)mmol/mg prot、(0.116±0.005)mmol/mg prot和(0.120±0.002)mmol/mg prot。高糖組和波動性高糖組G6PD及NADPH含量明顯低于對照組(Plt;0.01),波動性高糖組又低于高糖組(Plt;0.01),而NAC+波動性高糖組較單純波動性高糖組顯著增加(Plt;0.01)。
長期高糖引起的氧化應(yīng)激可對多種細胞造成損傷。越來越多的證據(jù)表明,糖尿病引起的氧化應(yīng)激是導(dǎo)致糖尿病及其并發(fā)癥的最根本原因。氧化應(yīng)激的重要指標(biāo)之一是ROS的大量增多。ROS是在體內(nèi)有氧代謝過程中產(chǎn)生的,是由氧激發(fā)的化學(xué)性質(zhì)十分活潑的分子,包括氧自由基和非自由基的含氧產(chǎn)物。過量的ROS會打破機體正常氧化、還原動態(tài)平衡,造成生物大分子的氧化損傷,干擾正常生命活動,即處于氧化應(yīng)激狀態(tài)[5]。
高血糖主要有兩種形式,即持續(xù)性高血糖和波動性高血糖[4]。目前許多研究都開始關(guān)注血糖波動對細胞的影響[6]。然而血糖波動對胰島β細胞毒害的研究,目前國內(nèi)外研究較少。本實驗結(jié)果顯示,與正常對照組相比,波動高濃度葡萄糖組和高糖組細胞較對照組細胞產(chǎn)生更多的ROS,提示波動高糖和高糖均可引起細胞氧化應(yīng)激的損傷,而且前者的損傷更甚。
氧化應(yīng)激的出現(xiàn)更準(zhǔn)確地說是由于細胞內(nèi)氧化、抗氧化酶水平的失調(diào)。氧化和抗氧化作用失衡所致的氧化應(yīng)激引起胰島β細胞損傷是糖尿病發(fā)生、發(fā)展的一個重要機制[7]。與其他組織細胞相比,胰島細胞內(nèi)抗氧化物酶水平較低[2],因而,在一些因素的誘導(dǎo)下,更容易發(fā)生氧化應(yīng)激反應(yīng)。葡萄糖6-磷酸脫氫酶(G6PD)是細胞內(nèi)關(guān)鍵的抗氧化酶。它通過調(diào)節(jié)細胞內(nèi)主要的還原當(dāng)量NADPH含量,對抗氧化應(yīng)激造成的損傷,并且延緩細胞的衰老[8],因此其重要性越來越受到研究者的關(guān)注。Pandolfi等[9]通過敲除細胞G6PD基因的實驗證實,G6PD敲除的細胞與內(nèi)源性G6PD水平正常的細胞相比,其對氧化應(yīng)激更加敏感、存活率及克隆效率降低。本實驗顯示,高糖組和波動性高糖組INS-1細胞內(nèi)G6PD的活性較對照組明顯下降,同時ROS增多,且波動性高糖組的變化更為顯著。提示波動的葡萄糖可能通過影響細胞內(nèi)抗氧化酶G6PD的活性,導(dǎo)致ROS的增多,從而加速細胞氧化應(yīng)激的損傷。
NAC是抗氧化劑,本實驗在高糖刺激INS-1細胞的同時加用NAC,結(jié)果細胞產(chǎn)生的ROS量顯著減少,G6PD活性和NADPH含量明顯增加,提示使用抗氧化劑干預(yù),對β細胞的損傷可起到一定的保護作用。因此在臨床控制血糖的方面,除控制代謝紊亂,降低高血糖外,更應(yīng)該堅持平穩(wěn)降糖措施。
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2008-10-23)
(本文編輯:呂芳萍)
Effectoffluctuanthighglucosetopancreaticβ-CelllinesINS-1
LONGKe,XUEYao-ming,SHAJian-ping,SONGDan,LINZhan.
DepartmentofEndocrinologyandMetabolism,NanfangHospital,SouthernMedicalUniversity,Guangzhou510515,China
XUEYao-ming,Email:yaomingnf@yahoo.com
ObjectiveTo investigate the damage mechanism of fluctuant high glucose on the INS-1 cells (pancreatic β-cell lines).MethodsThe cells were divided into five groups: the control groups (A group: 5.5 mmol/L of glucose), the continuing high glucose group (B group:16.7 mmol/L of glucose), the fluctuant glucose group (C group: 16.7 mmol/L of glucose for cultivation for 2 h, then the concentration changed to 5.5 mmol/L for cultivation for 3 h, which was repeated 3 times per day; the cells were kept in the medium containing 5.5 mmol/L of glucose during night time for 9 h), the continuing high glucose plus NAC (1.0 mmo/L) group (D group), the fluctuant glucose plus NAC group (E group). The intracellular reactive oxygen species (ROS) was observed by the flow cytometry. The activity of glucose-6-phosphate dehydrogenase (G6PD) was estimated by the tetrazolium linked cytochemical method.Results72 h after intervention, the levels of ROS were 37.77± 2.31, 86.97±7.97, 124.27±10.04, 60.92±2.61 and 51.47±3.36, respectively, in A~E group; the activities of G6PD were 1.25±0.03, 1.09±0.02, 1.03±0.01, 1.12±0.02 and 1.21± 0.01, respectively; the levels of NADPH were (0.123±0.003)mmol/mg prot, (0.112±0.004)mmol/mg prot, (0.099±0.002)mmol/mg prot, (0.116±0.005)mmol/mg prot and (0.120±0.002)mmol/mg prot, respectively. The level of ROS in the cells of the fluctuant glucose group were significantly higher than that in the continuing high glucose group (Plt;0.01). The G6PD activity and NADPH was significantly lower in fluctuant high glucose group than those in the continuing high glucose group (Plt; 0.01). NAC co-cultivation decreased the extent of cell′s change.ConclusionsExposure of INS-1 to high glucose lead to increased oxidative stress, possible mechanism included decreased G6PD activity and subsequent imbalance between oxidation and reduction.
Insulin-secreting cells; Reactive oxygen species; Glucose-6-phosphate dehydrogenase; Fluctuanting high glucose
10.3760/cma.j.issn.1674-1935.2009.02.014
510515 廣州,南方醫(yī)科大學(xué)南方醫(yī)院內(nèi)分泌代謝科
薛耀明,Email: yaomingnf@yahoo.com